质粒提取试剂配制和操作步骤试剂配制(小量)1. 1M（M代表摩尔浓度即mol∕L）NaOH (400ml ): 分子量为40，秤取16g NaOH, 溶于400ml DDW中2. 2M Tris-HCl (500ml): 分子量为121.14, 秤取121.14g Tris,放入干净的500ml烧杯中，加400 ml DDW，置于搅拌器上搅拌溶解，用HCl调节pH值为8.0（首先直接加12M的浓盐酸约20ml，接近8.0时再用1M HCl 调节）, 定容至500ml，4℃保存3. 10%SDS (200ml): 称量20gSDS,放入干净的烧杯中，加100 ml DDW，定容到200ml，室温保存SDS具有较强的刺激性，称量时一定带好口罩，动作轻柔）4. Buffer P1 (500ml): 用50ml离心管量取10ml 0.5M的EDTA，然后量取12.5ml 2M 的Tris-HCl，放入干净的烧杯中，加入300ml DDW,置于搅拌器上搅拌溶解，用HCl调节pH值为8.0（大约加12M的浓盐酸1ml ），定容至500ml，4℃保存5. Buffer P2（100ml）: 20ml 1M NaOH和10ml 10%SDS放入200ml的玻璃瓶中，然后加入70ml DDW，混匀，室温放置过夜，使其自溶，最后室温保存。
注：不需要定容，严格按步骤操作)6. Buffer P3 (500ml) ： 秤取147.21g乙酸钾，溶于300ml DDW中，置于搅拌器上搅拌溶解，用冰醋酸调节pH值为5.5，（约加80–100ml冰醋酸）, 定容至500ml，4℃保存7. Buffer QBT（500ml）：分别称取NaCl 21.915g, MoPS 5.23g, 放于干净的500ml烧杯中，加入300ml DDW,置于搅拌器上搅拌溶解，用1M NaOH调节pH值为7.0（约加10–15ml NaOH）,然后加入75ml 异丙醇，定容至500ml，4℃保存8. Buffer QC（500ml）：分别称取NaCl 29.22g, MoPS 5.23g,放于干净的500ml烧杯中，加入300ml DDW,置于搅拌器上搅拌溶解，用1M NaOH调节pH值为7.0（约加9ml NaOH,然后加入75ml 异丙醇，定容至500ml，4℃保存9. Buffer QF（500ml）：称取NaCl 36.525g, 量取2M Tris-HCl 12.5ml,放于干净的500ml烧杯中，加入300ml DDW，置于搅拌器上搅拌溶解，用1M NaOH调节pH值为8.5 （约加0.1ml NaOH），然后加入75ml异丙醇，定容至500ml ，4℃保存。
10. 配制RNase: (1) 将RNase粉末溶于10mM的乙酸钾（即Buffer P3），配制成浓度为10mg/ml的溶液2) 将配好的RNase溶液100℃加热10min, 随后冷却至室温3) 用1M 的Tris-HCl调节pH值至7.4，大约需要0.1体积的Tris-HCl4) 分装RNase溶液于1.5ml EP管中，-20℃保存试剂配制(大量)1. 1M NaOH (400ml ): 分子量为40，秤取16g NaOH, 溶于400ml DDW中2. 2M Tris-HCl (500ml): 分子量为121.14, 秤取121.14g Tris,溶于400 ml DDW中，用HCl调节pH值为8.0, 定容至500ml3. Buffer P2（1000ml）: 称取10g SDS, 放入1000ml的玻璃瓶中，然后加入750ml DDW，最后加入200 ml 1M的NaOH，混匀，室温放置过夜，使其自溶注：不需要定容，严格按步骤操作)4. Buffer P1 (1000ml): 用50ml离心管量取20ml 0.5M的EDTA，然后量取25ml 2M 的Tris-HCl，加入700ml DDW, 用HCl调节pH值为8.0，定容至1000ml。
5. Buffer P3 (1000ml) ： 秤取294.42g乙酸钾，溶于800ml DDW中，用冰醋酸调节pH值为5.5，定容至1000ml6. Buffer QBT（1000ml）：分别称取NaCl 43.83g, MoPS 10.46g, 加入600ml DDW, 用NaOH调节pH值为7.0，然后加入150ml 异丙醇，定容至1000ml7. Buffer QC（1000ml）：分别称取NaCl 58.44g, MoPS 10.46g, 加入600ml DDW, 用NaOH调节pH值为7.0，然后加入150ml 异丙醇，定容至1000ml8. Buffer QF（1000ml）：称取NaCl 73.05g, 量取2M Tris-HCl 25ml, 加入800ml DDW，用NaOH调节pH值为8.5，然后加入150ml 异丙醇，定容至1000ml9. 配制RNase: (1) 将RNase粉末溶于10mM的乙酸钾（即Buffer P3），配制成浓度为10mg/ml的溶液2) 将配好的RNase溶液100℃加热10min, 随后冷却至室温3) 用1M 的Tris-HCl调节pH值至7.4，大约需要0.1体积的Tris-HCl。
4) 分装RNase溶液于1.5ml EP管中，-20℃保存操作步骤准备工作：• 大提质粒的前两天用50ml离心管摇菌，在5-7ml加有氨苄抗生素AMP的LB液体培养基中挑菌，37℃下摇菌12-16h• 大提质粒前一天将50ml离心管摇好的菌液500ml大三角瓶中加入含有氨苄抗生素AMP的LB液体培养基200ml，37℃下摇菌12-16h1. 沉淀菌液：向离心机配套的50 ml离心管中，加入30 ml菌液，6000 g离心10min, 大约沉淀菌液200 ml注意：配平离心管，离心时要在离心管壁和盖上都做好标记，且离心时写字的管壁侧朝向外，以便容易找到沉淀物)离好一管，取回弃去上液保留沉淀物，再反复离心直到所有200ml菌液全部离完），打开盖倒置吸水纸上控干2. 溶解沉淀: 量取10 ml Buffer P1, 加入100μl RNase A, 混匀后，加入到离心沉淀的菌中，用振荡器充分溶解菌液沉淀（可用15ml离心管量取， Buffer P1 加入沉淀离心管是管口不要接触，以防互相污染）3. 加入10 ml Buffer P2，液体呈现蓝色，轻轻混匀，使其充分反应，冰上放置2-3min即可。
此步主要是碱裂解细菌，使其中的蛋白质和DNA变性，反应时间不能太长，否则容易使大肠杆菌的基因组DNA断裂成小片段，污染质粒DNA）4. 加入10 ml 预冷的Buffer P3，轻轻颠倒混匀，直到蓝色全部消失，出现白色蛋白沉淀，冰上放置20min此步发生酸碱中和反应，pH值降低，使变性的DNA双链结构恢复，其中的SDS可以充分与蛋白质结合，使其析出）5. 20 min后，6000 g 4℃离心25min同时，向柱子中加入5ml Buffer QBT，使其全部流过柱子，平衡柱子如果是重复使用的柱子，先使其中的HCl全部流尽，然后加满DDW清洗2遍柱子，最后再加入Buffer QBT平衡柱子6. 剪一小块纱布，折叠4层，放于柱子上部将离心后的液体缓慢倒入纱布中，最后挤压纱布使其中的液体全部直接过滤到柱子中，使其充分流过柱子如果此步不只1个质粒时，挤压不同质粒的纱布时，一定要换手套，避免污染质粒）7. 清洗柱子: 液体全部流过柱子后，向柱子中直接加满Buffer QC，使其全部流过柱子，清洗2遍，弃去废液8. 洗脱质粒: 向柱子中加15ml Buffer QF，靠重力作用使其全部通过柱子，收集洗脱液。
注：要收集到一个新的管中)9. 沉淀质粒：向收集的液体中，加入0.7倍体积（即10.5 ml）异丙醇，轻轻混匀，6000 g 4℃离心25 min异丙醇可以充分沉淀质粒，但同时会沉淀很多盐分）10. 清洗质粒：离心后，注意质粒贴壁的方向，应从其侧面倒掉废液然后加入10 ml 70%的乙醇，轻轻晃动（不能用枪吹散，否则会损失很多质粒）11. 沉淀质粒：6000 g 4℃离心10min，轻轻吸弃废液，将质粒开盖晾置，使乙醇充分会发质粒中的乙醇会影响后续反应中的酶活性）12. 溶解质粒：用300ulDDW或TE溶解步骤11中的质粒，转移到新的1.5mlEP管中，做好标记，检测浓度13. 柱子回收: (1) 先用自来水冲洗柱子内外；(2) 再用蒸馏水和DDW冲洗柱子内外，最后加满DDW，使其全部通过柱子，清洗2次3) 向柱子中加满1 M HCl，柱子底部盖上盖子，顶部用封口膜封上，室温放置过夜HCl可充分降解DNA）。