【最新word论文】应用寡核苷酸芯片进行HLA-DQA1位点基因分型【医学专业论文】

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1、1应用寡核苷酸芯片进行 HLA-DQA1 位点基因分型作者:王彤,王天骄,何群,张玉魁,马佳明,侯伟建,王绍成,潘忠诚,赵雨杰【摘要】为了构建 HLA-DQA1 位点寡核苷酸分型芯片并籍此建立一种应用于HLA 系统基因分型的集成化技术平台,在多态性集中的 HLA-DQA1 第二外显子区域,自行设计一套寡核苷酸分型探针;采用本实验室自建的方法,制成寡核苷酸芯片。提取的基因组 DNA 以组间特异性引物,单侧引物荧光标记,行不对称扩增。杂交后扫描检测分析杂交信号,确定 HLA 等位基因型;分型结果以标准 DNA 和PCR 产物测序检测。结果表明:100 例样本芯片分型全部成功,其中 50 例标准DN

2、A 与其模板相符,另 50 例临床样本中随机选取的 10 例与其测序结果相符,其中 2 例分型结果不完全;重复杂交实验中,位点重现率 95%。结论:研制的 HLA-DQA1 等位基因分型芯片,其准确性和重现性理想,且操作简便、快捷,有广泛的应用前景。【关键词】基因分型HLA-DQA1GenotypingbyUsingOligonucleotideMicroarraysAbstractInordertofabricatetheHLA-DQA1genotypingchipanddevelopanintegrated,paralleltechnicalplatformtotypeHLAsystem,

3、apairofprimersandasetofprobesweredesignedaccordingtothesequencesofHLA-DQA1exon2,wherethepolymorphismisconcentrated.Theoligonucleotidechipwasmadewiththemethodsdevelopedinourlaboratory.ThetargetDNAwasasymmetricallyamplifiedwiththelabeledsenseprimer.Thesignalswerescannedandanalyzedafterthehybridization

4、betweenmicroarrayandPCRproduct.Thealleletypesofthesampleswereidenlified.TheresultwasverifiedbythestandardDNAandDNAsequencing.Theresultsshowedthatthegenotypingwassuccessfullycarriedoutin50standardDNAsamplesand50clinicalsamples.Amongthem,resultsofthe50standardDNAsamplesmatchedtheirtemplates.Intheother

5、50samples,resultsoftherandomlyselected10matchedtheirsequencingresultsexceptthattwoofthemgottheincompletelyresult.Inreproducibletests,thesignalreappearratewas95%.ItisconcludedthatHLA-DQA1genotypingbyusingourarraysystemissimpleandconvenientwithsatisfiedaccuracyandreproducibility.KeywordsHLA-DQA1;genot

6、ype;oligonucleotidechip组织配型的情况是影响器官移植成活率的关键因素,同时,特定的 HLA 基因2座位还和某些疾病相关联,因此 HLA 的分型工作亦受到广泛重视。到目前为止,国内外的 HLA 的分型研究仍多集中于 A、B、DR 位点。近年来,组成较为复杂的型位点因与疾病有较多关联而多有报道。其中 DQ 位点与扩张性心肌症1 ,病毒性乙型肝炎2 ,糖尿病3,4 ,银屑病5等多种疾病的罹患率及预后相关。1996 年,HLA-DQ 也被定义为移植抗原6 。目前,HLA 分型有血清学分型和基因分型,后者更具优势和发展前途。对基因分型国际上推荐使用 PCR-SSP 和 PCR-SS

7、OP 方法,但两者在设计或操作上略显繁琐。基因芯片的问世为 HLA 分型工作提供了新的思路,基因芯片的高通量、集成化和并行检测等优势使其极为适用于复杂的 HLA 遗传系统。国内外在这方面的报道很多,但尚没有成熟的分型产品问世,也未见临床大规模应用的报道。本研究使用自行构建的寡核苷酸芯片(oligonucleotidemicroarrays) ,对 HLA-DQA1位点进行基因分型检测,旨在建立一套成熟的分型技术,用于复杂的 HLA 系统的分型研究。材料和方法DNA 样本50 例临床样本采自中国医科大学附属第一医院,50 例标准 DNA 样品由中国刑警学院法医系法医学教研室提供7 。主要试剂及仪

8、器手臂分子氨基丙基三乙氧基硅烷(APTES)(Sigma 公司),PCR 试剂盒及相关试剂(Promega 公司),鲑鱼精 DNA(Sigma 公司) ,其他化学试剂均为分析纯。PCR扩增仪(BiometraPersonalPCRsystem,USA) ,生物芯片点样仪(MG600,BioRobotics,England),激光共聚焦扫描仪(GeneTACTMLSIV,GenomicSolutionsInc.USA)引物及探针根据 GenBank 数据库新近公布的 HLA-DQA1 等位基因序列,在多态性集中的exon2 保守区及变异区分别设计 1 对引物及 16 条特异性分型探针,交由上海生

9、物工程公司合成,并在正义链引物 5端作 FITC 标记,序列如下:P1(+)Exon2:5-TGTATTACATGGGAATATGTGATTTTAGA-3;P2(-)Exon2:5-CAGGGGTTGGAAATGTCCAC-3,并在各探针 5端做氨基修饰。各组探针的序列见附表。全血基因组 DNA 的提取改良的酚/氯仿法:1ml 抗凝的外周血,896g 离心 5 分钟,分离中层白细胞后,传统酚/氯仿/异丙醇法8抽提 DNA,-20保存。3PCR 扩增与产物标记扩增体系 20l,含基因组 DNA1l。以组间特异性引物,行 120 不对称扩增。扩增条件 965 分钟,9630 秒,5940 秒,72

10、40 秒,35 个循环。产物以聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)检测。载片制备本室自建流程。市售玻片(20mm20mm)于铬酸溶液中浸泡 12 小时以上,蒸馏水洗净,1NNaOH 浸泡 1 小时,丙酮化 3 分钟。浸入手臂分子溶液(2%氨基丙基三乙氧基硅烷,以 95%丙酮溶解)10 分钟,丙酮清洗,104烤干后,5%戊二醛中浸泡过夜。寡核苷酸微阵列的制备以预先摸索好的条件,将 16 条寡核苷酸探针以探针缓冲液重悬至80mol/L,与同等浓度的阳性对照探针(全序列匹配的反义链引物) 、阴性对照无关探针(与目标序列同源性低于 50%) 、空白对照探针缓冲液,共同加入 384孔板。启动生物芯片点样仪,制

11、成预先设计好的微阵列。点样中注意保湿,点样后 37水化过夜,80烤干,备用。Table.Probesequences(略)封闭与核酸杂交按本室方法9 。取制备好的寡核苷酸芯片,用前以 0.1%SDS 洗去多余的未共价结合的探针。浸入 5二乙胺(0.01MPB,pH=9) ,室温封闭 30 分钟,充分洗净吹干。PCR 产物加杂交液(鲑鱼精 DNA10g/ml)按 11 稀释混匀,取8l 覆盖于各微阵列,加放硅烷化盖片。置入湿度适宜的杂交舱中 55保温 30秒。洗涤与检测分析取出杂交芯片,冲去盖片。用预热至 60的洗液(1SSC/0.1%SDS,0.5SSC/0.1%SDS,0.1SSC)行梯度洗

12、涤,用 ddH2O 洗净,吹干。使用激光共聚焦扫描仪检测,CCD 成像软件分析杂交信号,确定样本的基因型。结果基因组 DNA 的获取及靶基因的扩增基因组 DNA 的浓度为 100-200ng/l。A260/280 值 167-2.05,纯度均50。PCR 产物经 PAGE 检测,可见扩增条带清晰,特异性理想,对称产物长度 538bp,与设计相符。4寡核苷酸芯片的分型100 份样品分型全部成功。其中 50 份标准样品分型结果与其模板全部相符。另 50 份临床血样随机抽取 10 份进行 PCR 产物测序,2 份分型结果不完全相符(测序确定其为复合型,分别为 0301/04,04/06;基因芯片分型

13、为单纯型,即0301,04),另 8 例正确。图 A,B,C 示 1 例选择测序的临床样本。分型结果的稳定性为验证芯片的稳定性及重现率,随机选取 10 份样品重复 5 次杂交实验。16个分型位点中,2 份样品完全重复,3 份可重复 15 个分型位点,5 份重复 14 个分型位点。重现率 95%。讨论HLA 复合体遗传区位于 6P21.31,长约 3600kb,约占人类基因组总长度的1/3000。第十三届国际组织相容性专题会议确定已发现的 HLA 等位基因达到1340 个。HLA 血清学分型多用微量淋巴细胞毒实验,在 20 世纪 80 年代中期之前是 HLA 研究的重点,其检查类抗原经济有效,但

14、在检测类抗原时却遇到了困难:一方面类抗原在未激活 T 细胞上不表达,需分离纯化 B 细胞;另一方面类抗原多由双座位等位基因构成复杂的多态性,使得准确判定相应等位基因产物的抗原特异性十分困难。Opelz 等10曾将来自 58 个移植中心的 4000 份冰冻组织标本进行回顾性分析,发现血清学方法分型 HLA-A、HLA-B 错误率 4%-9.2%,而 HLA-DR 分型错误率高达 25%。因此类抗原多不采用血清学分型。目前,HLA 基因分型国际上推荐使用 PCR-SSP 和 PCR-SSOP。Bunce 等11用 188个引物,经 144 次 PCR 建立一步法 PCR-SSP,成功地对 HLA-

15、、类所有抗原进行了分型。该方法特异性较高,但主要依赖于 PCR 技术,操作略显繁琐,且结果分析非常复杂。PCR-SSOP 因具有灵敏度高、误差率小、样本量少的优点,是现今国内外分型应用最多的方法。但该法选择的支持介质是膜12或微滴定板13 ,对于 HLA 复杂的等位基因,不具有集成化的优势。基因芯片作为“20 世纪影响最为深远的科学技术手段之一” ,非常适合分型复杂的 HLA 系统,已引起众多科研机构的关注。但各家在制作分型芯片时方法差别相当大,表明基因芯片的技术流程还需要标准化。国际上对实质性器官移植通用“六抗原无错配”标准,即 HLA-A、-B、-DR在供受者中无错配,记为“0AgMM”

16、14 。而 HLA-DQA1,-DQB1 及-DRB1 的连锁不平衡导致在限定人群中产生预期的抗原系。如大多白种人供受 HLA-A、-B、-DRB1 匹配者,HLA-DQB1 及 HLA-DQA1 也同样匹配15 。本研究所采用的 HLA-DQA1 位点的探针组合,尚属中等分辨率检测,若进行高分辨率检测,还需要设计更多的探针及进行探针的优化。而 HLA 基因分型的要求则视用途而定,就临床实质性组织器官移植而言,采用中分辨率的分型条件是最佳选择。因高分辨度将增加分型所需的时间和费用,且不易寻找到匹配的供者。但法医学上的个人鉴定则不同,确定唯一的等位基因型是其目的。本室研制的寡核苷酸芯片制作相对简单,易于操作,且稳定性好,特异性和灵敏度都能满足基因分型的需要,故适合5器官移植前的组织配型及疾病相关基因型检测等临床应用。在多次实验中,体会到探针连接,即水化的步骤至关重要,它对实验结果影响很大。水化过程中应注意保湿,

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