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1、14食安（1）班 赖玉健 6 孙涵治 9 杨泽杰 4 熊渠 5 14食安（5）班 李炽斌 0菠萝蛋白酶的提取、初步分离纯化及活性测定14食安（1）班 杨泽杰摘要：本文结合考马斯亮蓝G250染色法，研究了不同纯化方法，包括硫酸铵沉淀法、透析法，对菠萝蛋白酶活性的影响。实验结果表明，两种纯化方法都能有效纯化菠萝蛋白酶，但是会对菠萝蛋白酶的活性造成一定的损失。关键词：菠萝蛋白酶 沉淀法 透析法 纯化 酶活性前 言菠萝蛋白酶（Bromelain，EC 3.4.22.3）简称菠萝酶，是从凤梨属植物菠萝中提取的一组复合的半胱氨酸巯基蛋白水解酶，它广泛存在于菠萝的果实、芽、叶、茎。菠萝蛋白酶属于糖蛋白，是由
2、巯基蛋白酶和非蛋白酶组分构成的复杂复合物，因含有一个不稳定的游离巯基，所以菠萝蛋白酶极易被氧化而使其酶活下降。菠萝蛋白酶的相对分子质量大约为33 000，等电点 9.55，最适pH在7.1左右，在偏酸环境下酶活下降较快，碱性环境能延缓失活。菠萝蛋白酶的温度的最稳定范围是5565。金属盐离子中NaCl、KCl对酶活的影响不是很大，维生素C、半胱氨酸、硫代硫酸钠、2-巯基乙醇是菠萝蛋白酶的稳定剂，EDTA能通过螯合对酶活有影响的金属离子而保护菠萝蛋白酶，有机溶剂中甲醇、乙醇、乙二醇对酶活损失较大。在食品工业中菠萝蛋白酶作为一种食品添加剂，能分解蛋白质、肽、酯和酰胺等，可用于肉质嫩化、水解蛋白、啤酒
3、澄清、干酪生产等。在医药上它可以治疗水肿及多种炎症，它能帮助迅速结痂，对正常组织无害，不影响植皮，适用于中小面积深度烧伤的治疗。1 实验材料与仪器1.1 实验材料与试剂1.1.1 实验材料 新鲜菠萝（3个），透析袋1.1.2 实验试剂（1）盐析粗提液0.1mo1/L pH 7.8磷酸缓冲液配制（PBS）（配4 000mL），0.01mo1/L pH 7.8磷酸缓冲液配制（PBS）（配4 000mL）（2）酶活力测定试剂1酪蛋白（进口分装）（配100mL），激活剂含20mmo1L半胱氨酸-盐酸盐、1mmo1/L EDTA-Na2 (乙二胺四乙酸二钠) ，10三氯乙酸(TCA) 1.2 实验仪器和
4、用品1.2.1 实验仪器HJ-6多头磁力搅拌器：常州国华电器有限公司MC-H18S012多功能红外炉：广东美的生活电器制造有限公司DS-1高速组织捣碎机：上海标本模型厂GKC110R2可控硅恒温水浴锅：赏花锦屏仪器仪表有限公司TD5M低速离心机：长沙湘智离心机仪器有限公司TDL-60B台式离心机：上海安亭科学仪器厂722型可见分光光度计：上海舜宇恒平科学仪器有限公司UV5100B型紫外可见分光光度计：上海元析仪器有限公司PL1502-S电子天平：梅特勒-托利多仪器（上海）有限公司BS110S分析天平北京赛多利斯天平有限公司BCD-539WT冰箱：青岛海尔股份有限公司1.2.2 实验用品（1）以
5、组为单位的用品 大试管18mm200 mm（10支）、试管架（2个）、烧杯（50mL1，100mL2， 200mL1）、滴管（2支）、玻璃棒（2支）、移液管（5mL1，1mL2，0.1mL1，0.2 mL1）、漏斗（3个）、量筒 （100mL1）、研钵、白瓷板、纱布、滤纸、蒸馏水瓶、洗耳球、标签纸、橡皮筋。（2）全班共用的用品试剂瓶（1000mL7，250mL3，60mL20）、烧杯（1000mL4）、塑料烧杯（2000mL2）、量筒 （500mL2，1000mL2）、广泛pH试纸、剪刀、电炉和锅、蒸馏水容器、透析袋（截留相对分子质量8 00014 000）。2 实验方法2.1 菠萝蛋白酶的粗
6、酶提取称取菠萝皮材料30g，将菠萝皮在清水中洗净，沥干，切成小段后置于超高速搅拌机中，加入约60mL预冷的0.1mo1/L pH 7.8 PBS，持续搅拌1015min至粉碎，搅拌完成后用4层纱布过滤，得到滤液后，用冷冻离心机于4C 3000rpm离心6min，弃沉淀，即得到菠萝蛋白酶粗提液，测定粗提液的体积、蛋白质含量和酶活性1。2.2 盐析根据附录的“硫酸铵饱和度计算表”，按30%硫酸铵饱和度计算在上述酶提取液中需添加的固体硫酸铵量，称取固体硫酸铵于研钵中，研磨呈粉末，慢慢小量分次向酶提取液中添加固体硫酸铵，边加边搅拌，使溶液最终硫酸铵饱和度为30%，放置于冰水混合物（4）30min 后，
7、酶蛋白沉淀析出，4C 4000rpm离心10min，收集沉淀， 加入0.1mo1/L pH 7.8 PBS约15mL至完全溶解，测定其体积、蛋白质含量和酶活性2。2.3 透析 将溶解液装入2.5 cm8cm透析袋（预先将透析袋在蒸馏水中煮沸30min）中，于 500mL 烧杯中，在磁力搅拌器搅拌下用蒸馏水透析，15min换水一次，换水34次后，检查SO42-是否已被除净（检查的方法是：取2mLBaCl2溶液放入一支试管，滴加23滴透析外液至试管中，若出现白色沉淀，表示SO42- 未除净，若无沉淀出现，表示透析完全）。若透析液有沉淀，将透析液用滤纸过滤，测定过滤液的体积、蛋白质含量和酶活性3。2
8、.4 酶活性测定方法取2支试管，设置一支为实验对照，三支为平行样品。取0.1mL酶液，加入0.9mL激活剂，加入37预热的1%酪蛋白溶液1mL，准确反应10min，加入10%三氯乙酸3mL反应终止酶反应。对照管先加入10%三氯乙酸溶液，后加酪蛋白溶液，其它与测定管相同。离心（3000r/min，5min）或过滤，清液于280nm波长下测定光吸收值。酶活单位定义：在上述条件下 ，每10min增加0.001个光吸收值为1个酶单位（U）。实验步骤按照表格中完成。试剂(ml)对照组平行样品1平行样品2平行样品3TCA3酶液0.10.10.10.1激活剂0.90.90.90.9酪蛋白111137C准确反
9、应10minTCA333A280nm OD值2.5 蛋白质含量测定方法2.5.1 标准曲线的绘制01000g/mL标准曲线的绘制：另取6支试管编号，按下表加入试剂。管号1234 5 6 1000g/mL牛血清白蛋白（mL）蒸馏水（mL）蛋白质浓度（g/mL）01.000. 20. 82000. 40. 64000. 6 0. 8 1.00. 4 0. 2 0 600 800 1000得到从1到6号管的牛血清白蛋白溶液浓度分别为0、200、400、600、800、1000g/mL，准确吸取各管溶液0.lmL，加入5ml考马斯亮蓝溶液，摇匀，静置2min，测定595nm吸光值，绘制0-1000g/
10、mL标准曲线。2.5.2 样品的测定准确吸取样品溶液0.1mL放入具塞刻度试管中，与步骤 2.5.1 操作相同，测得样品的光吸收值A595nm。3 实验结果与分析3.1 蛋白质含量计算由标准曲线可查出相应的蛋白浓度（mg/mL），可按如下公式计算出样品中蛋白含量。样品蛋白含量(g/g鲜重)=查出的蛋白提取液浓度（g/mL）定容体积(mL)样品重量(g)3.2 酶活力计算最后酶活结果取3次重复实验的平均值。酶液活力（U/mL）=A280nm0.0010.1稀释倍数3.3 酶比活的计算酶比活（U/mg蛋白）=酶活力/酶蛋白质含量3.4 酶纯化过程中回收率计算回收率（%）=（纯化酶总活力/粗酶液总活
11、力）100= （纯化酶活力纯化酶液体积）/（粗酶活力粗酶体积）1003.5 酶纯化倍数的计算纯化倍数=纯化酶比活力/粗酶比活力3.6 实验结果3.6.1 蛋白质含量3.6.1.1 绘制标准曲线根据标准曲线测量数据管号1234 5 6 1000g/mL牛血清白蛋白（mL）蒸馏水（mL）蛋白质浓度（g/mL）吸光度/A01.0000. 20. 82000.2030. 40. 64000.3160. 6 0. 8 1.00. 4 0. 2 0 600 800 1000 0.491 0.631 0.633绘制标准曲线如下：3.6.1.2 蛋白质含量组别粗酶盐析透析吸光度/A0.3610.2860.22
12、8蛋白质浓度mg/mL0.4400.3520.272总体积/mL36.0017.0017.00蛋白质含量/mg 15.8405.9844.624样品蛋白含量=15.840mg20.00g=0.792mg/g(鲜重)3.6.2 酶活力组别对照组平行样品1平行样品2平行样品3均值A280mm OD值粗酶00.4570.5870.6190.554A280mm OD值盐析00.8460.4880.5030.612A280mm OD值透析00.4610.4590.4730.464透析酶液活力(U/mL)=A280mm0.0010.1稀释倍数=4640U/mL粗酶酶液活力(U/mL)=A280mm0.0010.1稀释倍数=5540U/mL盐析酶液活力(U/mL)=A280mm0.0010.1稀释倍数=6120U/mL3.6.3 酶活比透析酶活比（U/mg蛋白）=酶活力酶蛋白质含量=46400.2295=20217.86(U/mg蛋白)粗酶酶活比（U/mg蛋白）=酶活力酶蛋白质含量=55400.792=6994.95(U/mg蛋白)盐析酶活比（U/mg蛋白）=酶活力酶蛋白质含量=61200.2975=20571.43(U/mg蛋白)3.6.4 酶纯化回收率盐析回收率（%）=（盐析纯化酶总
