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1、临床标本的正确采集,汉滨区第一医院检验科王涛 2012.06.1,护士,检验,病人,医生,实验室检测分析前 质量控制,质量是科室的生命 质量是学科建设的根本 质量是科室管理的要素,全面质量管理体系的建立是质量管理的核心,质量是科室的生命 质量是学科建设的根本 质量是科室管理的要素,全面质量管理体系的建立是质量管理的核心,质量,全面质量管理体系的概念,用系统学的理论对实验的全过程进行分析，找出影响检验结果质量的各个环节，并制定措施加以控制。为保证检验报告满足用户的质量要求，把实验室的组织机构工作程序、职责、质量活动过程和各类资源、信息等协调统一起来，而形成的有机整体。,分析前程序pre-exam
2、ination procedures,按照时间的顺序，从临床医生开出医嘱开始，到分析检验程序启动时终止的步骤，包括检验申请、患者准备、原始样品的采集、标本运送到实验室并在实验室内进行传输。 摘自ISO15189医学实验室质量与能力的专用要求，3.10节,临床检验科全面质量管理系统,生物学因素的影响及其控制,妊 娠,性别,人种,年龄,生物属性,生物属性因素的质量控制,以上这些生物学影响因素是不可避免的，医生在评价病人结果时，一定要结合年龄、人种、性别等生物学特征。 对于妊娠期病人一定要考虑其孕周。,生物学影响因素及其控制,饮食：标准餐后，甘油三脂增加50%，胆红素、糖增加15%，丙氨酸转移酶增加
3、10%，总蛋白、白蛋白增加5% 运动：剧烈运动后，K+、Na+、Ca+2尿酸、尿素等指标增加WBC可高达1.5109/L以上，MPC也有明显增加,起居习惯,起居习惯因素的质量控制,为了避免对实验结果的误差，将避免剧烈活动，禁食12h后采血作为标准。,生物学影响因素及其控制,生物属性因素的质量控制,生物属性因素的质量控制,刺激物和成瘾药物影响的控制 .医生应嘱咐病人采血前切勿喝茶或咖啡，勿吸烟喝酒 .尽量了解病人对刺激物（烟、酒、茶或咖啡）和成瘾性药物的接触史，供评价检验结果时参考。,生物属性因素的质量控制,采血因素的影响及其控制 生物周期的影响 线性时间影响年龄 周期性影响：季节循环、月经周期
4、、昼 夜节律,生物属性因素的质量控制,采血尽可能在上午7-9时进行 采血前病人禁食12h（受饮食影响的项目） 采血尽可能安排在其它检查和治疗前进行 药物监测时要根据药物浓度峰值期和标定期采血化验单注明采血时间,采血因素的质量控制,采血姿势和止血带的影响卧位、坐位、立位不同姿势采集之标本，检验结果不同，正常人立位血浆总量比卧位减少12%左右，引起Hb、WBC、RBC、HCT、脂类、蛋白等值变化。止血时间过长会引起凝血系统变化，反复攥拳会使血钾升高。,采血因素的影响与控制,采血姿势和止血带因素的质量控制 尽量统一采血姿势 尽量使用止血带在1min内采血，勿让患者反复攥拳运动 当需要重复使用止血带时
5、，应使用另一手臂。,生物学影响因素及其控制,溶血对检验结果的影响 血细胞成份的释放对结果的影响 血细胞成份对检验方法的影响,采血因素的影响与控制,产生溶血的原因 采血时的一些不良习惯和传统器具的影响 混匀含添加剂的试管时用力过猛或运输动作过大 穿刺处酒精未干 注射器与针头不紧产生气泡 试管质量粗糙，运输过程中挤压血细胞造成溶血,生物学影响因素及其控制,溶血因素造成误差的控制 溶血的标本不能使用 实验发现溶血标本要排除体内溶血的可能 规范采血步骤，改正不良采血习惯 使用真空采血系统 妥善处理溶血标本,生物学影响因素及其控制,采血量的影响 采血量与抗凝剂的比例对凝血实验的影响 抗凝剂对CBC的影响
6、,采血因素的影响与控制,采血量因素的质量控制推荐使用真空采血系统， 保证血液和抗凝剂的最佳比例,生物学影响因素及其控制,液标本的运输、存储及预处理采血完成后，应尽量减少运输和储存时间，尽快处理，尽快送检储存时间过长可引起：细胞代谢、蒸发作用、升华作用、化学反应，酶活性失活，微生物降解，渗透作用，光学作用、气体扩散。,生物学影响因素及其控制,不同条件下保存血浆对因子，的影响,不同条件保存下对APTT的影响,27,标本放置时间是影响结果的重要因素,影响: PH:酸碱 酮体:乙酰乙酸丙酮 胆红素胆绿素 尿胆原尿胆素葡萄糖、蛋白分解,细胞破坏,28,解放军总医院,原则：新鲜尿液且留尿后越早检查越好,规
7、定: 留取尿液后2h之内检查,运输因素引起的误差控制 采用封闭的真空采血系统，避免运送的危险 不能及时送检，1h内分离血样 CBC检查，2h内推片，8h完成分类24h完成细胞计数,生物学影响因素及其控制,贮存血样时，应遵循以下原则。 （1）为了防止蒸发，血样应贮存在封闭的容器中。 （2）贮存的温度越低，血样保存的时间越长。有些检验指标，血样不能深冷冻。如：EDTA抗凝全血，做脂蛋白电泳 的血清或血浆，脂蛋白X及低度密度脂蛋白-胆固醇的血清或血浆。纤维蛋白单体阳性血浆等。 （3）惰性分离介质能够提高血清和血浆的产量，而且可以让血清保留在原管中。,生物学影响因素及其控制,贮存血样时，应遵循以下原则
8、 （4）血样保存时应竖直放置，以加快凝血。 （5）避免晃动血样，产生溶血。 （6）贮存注意避光，尽量隔绝空气。 （7）血样深冷冻再溶液解后，应重新混匀几次，防止检测物质分布不均。 （8）推荐贮存期限：生化检验，免疫学检验，4贮存一周；血液学检验，室温1天；PT冰箱424小时，APTT46h；毒理检验，冰箱贮存6周。,生物学影响因素及其控制,标本的保存时间与温度,血样预处理未加抗凝剂的血液在30-60min内凝血，析出血清。含凝血酶的真空管，采血后5min析出血清。血凝完全后，应在1000-1200r下离心10-15min。对于血液凝固检验，应在2000r下离心15min。制成的血清或血浆不可以
9、再次离心，毛细管血样可以用微量离心机离心，通常在6000-15000r下离心90s即可。,生物学影响因素及其控制,一、各种真空采血管用途,优点,1、安全：易于彻底销毁，减少医源性传染病。 2、方便：一次静脉穿刺可采集多管标本，减少不必要的重复操作，省时省力，减轻病人痛苦，容易混匀。 3、形势需要：与发达国家接轧，发达国家已有长达60年的使用经验，国内二级以上医院已经采用。 4、标识清楚，满足不同标本采集的需求。,红头管（橘红管）,用于生化、免疫等一般检验。,标有3、4、5ml刻度。,一般采血3ml。 橘红管含有促凝剂，抽血时混匀几次。(在冬天或急诊时使用，促进血液尽快凝固，便于血清分离),蓝头
10、管,0.2ml3.8%枸椽酸钠抗凝管。 用于血凝三项(PT、APTT、FIB)检验。 D-二聚体需另抽一管 精确采血至2ml刻度（静脉血1.8ml+0.2ml抗凝剂）。 1：9。 颠倒混匀5次以上。,黑头管,0.32ml3.8%枸椽酸钠抗凝管 用于ESR检验。 精确采血至第1条标志线（上，0.2ml抗凝剂 +静脉血1.28ml）。 缓缓颠倒混匀5次以上。 负压较强，可在第2条标志线时迅速拨管。,紫头管,血常规：静脉血0.5-1.0ml。 EDTAK2抗凝。 颠倒混匀5次以上或弹拨混匀。,绿头管,主要用于HLA-B27测定。 采血1ml 肝素抗凝管。 真倒混匀5次以上。,,动脉采血法血气分析血气
11、分析是医学上常用于判断机体是否存在酸碱平衡失调以及缺氧和缺氧程度等。 酸碱度(pH)，二氧化碳分压(PCO2) ，二氧化碳总量(TCO2)，氧分压（PO2），氧饱和度(SatO2)，实际碳酸氢根（AB），剩余碱（BE），阴离子隙（AG）， 肝素抗凝动脉血2ml，抽血后要求严加密封，不能接触空气，立即送检，天热可放冰箱中，并记录当时患者体温。,,普通注射器法 1、部位选择 桡动脉：穿刺点在前臂掌侧腕关节上2cm动脉搏动明显处股动脉： 腹股沟扪及搏动最明显处 2、局部消毒：直径大于10cm 3、抽吸肝素：抽吸0.5ml入注射器内，湿润注射 器内壁后，余液去掉。,,,4、穿刺抽血 戴无菌手套，用左手
12、的食指、中指固定好穿刺的动脉。右手持注射器，在两指之间垂直或与动脉走向呈40刺入动脉，见有鲜红色回血，右手固定穿刺针的方向及深度，左手以最快速度抽取血液。 5、拔针按压 抽血毕，迅速拔针，同时用无菌纱布加压穿刺点止血510min 6、处理标本 立即将针头斜面刺入无菌软木塞内，以隔绝空气，连同验单立即送检。 7、整理记录,,实施(常规消毒皮肤，带无菌手套，铺无菌孔巾 ),,实 施(拔出针头，局部加压不少于5min)。,,动脉血气分析针,,动脉血气分析针的优点：1、螺口乳头2、预设采血量3、自动排气装置 4、预置足量固体钙平衡肝素锂抗凝剂 5、针塞,,采集血标本的注意事项： 1、严禁在输液、输血的
13、针头处抽取血标本，以免影响检验结果。应在对侧肢体采取。2、血培养瓶抗凝管干燥试管3、有出血倾向者，谨慎应用动脉采血，并注意延长压迫止血的时间。,二、采血步骤,真空管采血步骤,1、常规消毒，取下采血针护套，持采血针（黑色柄）穿刺静脉，回血,2、将采血针另端（黄色座）拔支护套，然后刺入真空管，采血至需要量（3ml）,3、如需多管采血，可再接入所需的真空管,4、含抗凝剂采血管，采血后应及时颠倒混匀5次，动作要轻缓,5、采血结束：先拨真空管，后自病人肘部拨去针头，止血,多管采血顺序： 普通红头管蓝头管其它管,三、几点注意事项：,1、特殊病人静脉采血应远离输液端。 2、蓝头管、黑头管采血量必须精确。 3
14、、蓝头管采血尽量放在第2位(红头管之后)。 4、抗凝管至少颠倒缓缓混匀5次以上，紫头管采因采血较少可轻轻弹拨混匀。,四、真空采血管应用总结,各种真空管使用汇总,各类微生物培养标本的采集,1 血（骨髓）培养标本的采集：严格以无菌操作抽取血液（骨髓），精确而迅速地将标本注入血培养瓶内，并轻轻摇匀，以防凝固，血液量应相当于培液的十分之一，一般成人以10ml为宜，骨髓量一般为12ml。新生儿1-2ml，为提高检出率，应在病人用药前或发热高峰时采取标本。,2 尿液培养标本采集： 一般采集清晨中段尿，嘱患者用肥皂水及温开水洗外阴部及尿道口，用无菌纱布拭干，令其排尿，开始排出之尿弃去，而后采集中段尿于无菌培
15、养杯内送检，送检量以5-10ML为佳。双侧肾盂尿，由专科医师采集，标记清楚左、右，以免混淆误诊。,3 粪便培养标本采集： 一般细菌培养，挑取粪便粘液、脓血部分，液态便应挑取絮状物。无法获取粪便时，可采取直肠拭子，将棉棒用生理盐水或甘油缓冲盐水湿润，之后插入肛门内4-5cm，轻轻转动一圈取出。标本留取后，应及时送检；防止尿液混入，以防降低检出阳性率。特殊培养应与实验室联系，按有关规定留取标本。,4 痰液及支气管分泌物标本的采集： 5.4.1 采集痰液标本以清晨为好，嘱患者先用温开水漱口数次，以除去口腔内大部分杂菌，然后用力咳出气管深部的痰液一口，吐入无菌培养皿内，立即送检。,检验与护理的勾通,谢谢！,
