《RT-PCR技术简介-GeneLife》由会员分享，可在线阅读，更多相关《RT-PCR技术简介-GeneLife（12页珍藏版）》请在金锄头文库上搜索。
1、RT-PCR实验方法简介杨文斌RT-PCR定义： 是指对组织或细胞的总RNA进行抽提，把RNA反 转录为cDNA，然后设计目的基因引物进行PCR， 琼脂糖电泳并数码拍照，分析电泳条带灰度值， 判断目的基因mRNA转录水平的相对量的变化。 RT-PCR流程简介一、抽提RNA： 1、防止RNA酶污染 180的高温下干烤6hr以上； 0.1% DEPC水浸泡或用氯仿冲洗； 去污剂洗涤，双蒸水冲洗； 溶液皆用0.1% DEPC水配置，试剂应为新开封或RNA 专用； 操作人员戴手套； 器械专用。 2、材料的准备 组织及细胞最好为新鲜的，或者在70条件 下保存半年以下； 尽量避免材料的冻融 。 3、确认R
2、NA的质量 检测RNA溶液的吸光度：OD260/OD280=1.82.0 RNA的电泳图谱：28S和18S条带明亮、清晰、指条带边缘清晰，并且28S 的亮度在18S条带的两倍以上。二、反转录： 单管一步法反转录和PCR反应在一个管子中完成 ，得到的全部cDNA 产物都一起经PCR扩增 ，灵敏度更高，但是容易相互干扰 。 两步法 反转录和P CR分开做，PCR取反转录反应产物的1/10进行 ，更为灵活而且严谨，但是灵敏度不如前者高。 三、PCR： 1、参照基因 PCR参照基因一般选择看家基因（长表达、高表达量 的基 因），常用18S、actin、bubulin、GAPDH，其中 ACTIN最为普
3、遍；参照基因与目的基因在同一个管子内进行PCR反应的情况 下，称之为内参；参照基因与目的基因在不同管子内反应成为外参；由于内参可能与目的基因竞争模板及酶，或造成其它干扰 ，外参的应用较为普遍。 2、目的基因 PCR典型的引物18到24个核苷长，引物需要足够长，保证序列独特性，并降低序列存在于非目的序列位点的可能性。 RT-PCR实例： 1、实验材料：拟南芥野生型Ws及突变体m1、m2花序 2、实验目的：分析m1、m2与野生型花序中G1基因的表 达的差异 3、实验步骤： 设计ACTIN及G1基因的引物； 分别抽取野生型Ws及突变体m1、m2花序RNA， DNase I处理，以尽量去除基因组DNA
4、； 电泳检测，估计RNA总量； 取1ug左右的RNA进行反转录； 取反转录好的cDNA总量的1/10（10ul反转录体积则取 1ul），稀释10倍（稀释至10ul），取1/10（1ul）为模 板，用ACTIN引物、普通PCR体系、2025个循环、 以基因组DNA为对照（因为引物跨内含子，所以基因 组DNA扩增出的条带大小与cDNA扩增出的条带大小 不同，以去除残留的基因组DNA的影响）做PCR； 取等量产物电泳，根据电泳条带的亮度调整模板量（ 如m1的亮度为Ws的2倍，则下次PCR时m1的模板为 0.5ul），直到电泳亮度基本一致，可认为此时所取的 不同体积的野生型Ws及突变体m1、m2模板里RNA的 含量基本相同。 以G1基因引物，按调好的模板体积做PCR，电泳。 根据电泳条带的亮度比较野生型Ws及突变体m1、m2 中G1基因的表达差异。谢 谢！北京基莱生物科技研究中心 2006年12月 制作
