SDS-PAGE实验步骤

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1、试剂:1. 5x 样品缓冲液( 10ml):0.6ml 1mol/L 的 Tris-HCl (Tris-HCl缓冲液( 0.05mol/L ,25)50ml 0.1mol/L 三羟甲基氨基甲烷(Tris)溶液与x ml 0.1mol/L 盐酸混匀后,加水稀释至 100ml)(pH6.8),5ml 50% 甘油,2ml 10% 的 SDS ,0.5ml 巯基乙醇, 1ml 1%溴酚蓝,0.9ml蒸馏水。可在 4保存数周,或在 20保存数月。H2. 凝胶贮液:在通风橱中,称取丙烯酰胺30g,甲叉双丙烯酰胺0.8g,加重蒸水溶解后,定容到100ml。过滤后置棕色瓶中,4保存,一般可放置1 个月。3.

2、 pH8.9 分离胶缓冲液: Tris 36.3g ,加 1mol/L HCl 48ml ,加重蒸水 80ml使其溶解,调 pH8.9,定容至 100ml, 4保存。4. pH6.7 浓缩胶缓冲液: Tris 5.98g ,加 1mol/L HCl 48ml ,加重蒸水 80ml使其溶解,调 pH6.7,定容至 100ml, 4保存。5 v) L: Q, N7 5. TEMED (四乙基乙二胺)原液。; _ Z0 Z1 g V( M# p* t/ O6. 10%过硫酸铵(用重蒸水新鲜配制)。+ q! c* B0 a+ p1 j+ k, I6 G h1 d7. pH8.3 Tris-甘氨酸电极缓

3、冲液:称取Tris 6.0g,甘氨酸 28.8g,加蒸馏水约 900ml,调 pH8.3 后,用蒸馏水定容至1000ml。置 4保存,临用前稀释10倍。8. 考马斯亮蓝 G250染色液:称 100mg考马斯亮蓝 G250 ,溶于 200ml 蒸馏水中,慢慢加入 7.5ml 70%的过氯酸,最后补足水到250ml,搅拌 1 小时,小孔滤纸过滤。: s! o# E e% W. hSDS-PAGE 凝胶的有效分离范围丙烯酰胺浓度(%)1512.5107.55.0线性分离范围15-435kDa15-60kDa18-75kDa30-120 kDa60-212 kDa器材) 2 q c$ 7 M$ U*

4、s4 e a样品制备将蛋白质样品与 5X样品缓冲液 (20ul 5ul )在一个 Eppendorf 管中混合。 放入100加热 510min,离心,取上清点样。* t( A) i; a“ ( g电泳8 l# j“ s) S! j. b1. 将玻璃板、样品梳、 Spacer 用洗涤剂洗净,用ddH2O冲洗数次,再用乙醇擦拭,晾干;4 * P# j2 G: h: G% M 2 6 u2. 将两块洗净的玻璃板之间加入Spacer,装好玻璃板;3. 按如下体积配制 10分离胶 8.0 ml ,混匀;1 ; _5 w2 n: F C# c“ / ?ddH2O 3.0 ml 1.0 mol/LTris-

5、HCl pH=8.8 2.1 ml; K7 Q1 n4 |7 6 R+ 30% Acr-Bis 2.8 ml 10% SDS 80 ul 10%AP 56 ul4 q- . o9 s“ p5 A“ A: k4 N1 V“ TEMED 6 ul$ r, Q8 l( m/ l; j* * A: $ ? y4. 向玻璃板间灌制分离胶,立即覆一层重蒸水,大约20 min 后胶即可聚合;) 5. 按如下体积配制 6浓缩胶 3.0 ml ,混匀;ddH2O 2.0 ml 1.0 mol/LTris-HCl pH=6.8 400 ulQ1 n4 |7 6 R + 30% Acr-Bis 600 ul 10%

6、 SDS 36 ul 10%AP 24 ul4 q- . o9 s“ p5 A“ A: k4 N1 V“ TEMED 4 ul$ r, Q8 l( m/ l; j* * A: $ ? y6. 将上层重蒸水倾去,滤纸吸干,灌制浓缩胶,插入样品梳;7. 装好电泳系统,加入电极缓冲液,上样20 l;- Q4 Y3 p5 e6 O3 Y0 8. 稳压 200V,溴酚蓝刚跑出分离胶时,停止电泳,约需45 min 1hr;P7 E9 t C试剂配制步骤0 T2 o- m! n* Y3 C1. 固定液:冰醋酸 : 甲醇: 水(10:20:70 )2. 电泳后的凝胶用 510 倍体积固定液在室温下固定,酸性固

7、定液扩散后可使凝胶中的溴酚蓝变黄。蓝色全部消失后,继续固定5min。为防止凝胶破裂,在进行此步骤之前可将凝胶浸泡于含20% 甲醇、 30% 甘油的溶液中过夜。& A4 Q: Y# - E9 V- 3. 将凝胶标记好方向后放在保鲜膜或玻璃纸上面,上面放一张比凝胶四周长出12cm的 Whatman 3MM 滤纸。4. 另将一张滤纸放在凝胶干燥器上。将Whatman 3MM 滤纸/ 凝胶/ 保鲜膜或玻璃纸,放在凝胶干燥器上的滤纸上面,保鲜膜或玻璃纸在最上面。6 j1 “ _ e1 ( y$ J0 l5. 放下凝胶干燥器的盖子,抽真空使凝胶四周封闭以干燥凝胶,干燥时间常由厂家提供,一般 0.75mm厚

8、凝胶干燥 2h,如 5065可加快干燥进程。/ Y7 n0 L% B6 6. 释放真空。如加热状态下干燥,则先停止加热并自然冷却10min 后再释放真空。二蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶中电泳时,它的迁移取决于它所带电荷以及分子大小和形状等因素。1967 年 Shapiro 等人发现,如果在聚丙烯酰胺系统中加入阴离子去污剂十二烷基磺酸钠(SDS ),大多数蛋白质能与SDS 按一定比例结合,即每克蛋白质结合1.4g 的 SDS 复合物都带上相同密度的负电荷,它的量大大超过了蛋白质分子原有的电荷量,因而消除了蛋白质原有的电荷差别,使蛋白质分子电泳的迁移率主要取决于本身的分子量,而与蛋白质所带的电荷无关,在

9、一定条件下,蛋白质的分子量的对数与电泳迁移率间呈负相关。操作步骤1、凝胶制备:用两块电泳玻璃板制成垂直板槽(不能漏胶),垂直放置。将配制好的分离胶溶液倒入,滴加入无离子水,待凝胶聚集后,倒出无离子水,用吸水纸吸干,倒入浓缩胶,再插入梳子。2、上样:分别取样品若干ml 于离心管中, 按 1/1 1/5 比例加入5 样品缓冲液, 再沸水浴中加热35min ,取出待用。用微量注射器分别吸取不超过30l 不同浓度的标准蛋白样品和试验样品注入样品槽。 点样结束后,调节电泳仪电流到10mA(23mA/em ),保持电流稳定不变,当溴酚蓝迁移到离分离胶底12cm 时,即可停止电泳。3、染色:电泳完毕后, 取出凝胶板, 浸入染色液中, 在 37温箱中保温过夜。倒掉染色液, 24h 后,即可看到清晰的蛋白质条带。

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