【最新】花青素层析纯化方法综述

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1、两种主要花青素分离纯化方法1. 组合柱层析色谱法、HPLC 分析Li Rui1等 X-5 树脂和 Sephadex LH-20 结合的方法 从 V. uliginosum berry里分离纯化得到 11 种花青素和两种多酚。具体操作方法:25 mL 提取液过 X-5树脂(乙醇,0.5%TFA 处理),然后用 0.5 % TFA (v/v)去离子水冲洗 2 次去除多糖,有机酸等水溶性杂质;接着多酚由乙酸乙酯洗脱回收,0.5% TFA (v/v)乙醇洗脱 4 次回收得到花青素。浓缩得到的花青素采用 Sephadex LH-20 色谱柱进一步纯化,采用含有 0.5% TFA 的 30%乙醇水溶液为洗

2、脱溶剂。洗脱下来的片段采用分光光度法在 525nm 处检测。每部分洗脱液在 35 oC 真空下旋转蒸发(RE-52AA, Yarong, Shanghai, China) 至干燥,然后再用 0.5% TFA (v/v) 溶液溶解,分析前-20 oC 下保存。分析方法为 HPLCDAD-ESI-MS 和 MS/MS王二雷2等也分别采用组合层析和半制备型高效液相色谱的方法从野生蓝莓中分离得到高纯度的花青素混合物和单体。利用 UV-vis 和高效液相色谱对花青素含量进行检测,利用 HPLC 和 HPLC-DAD-ESI-MS/MS 对纯化样品中的花青素进行种类鉴定。首先,将野生蓝莓粗提液用乙酸乙酯萃

3、取 4 次,将萃取之后的水相上Amberlite XAD-7HP (2060 目, Sigma-Aldrich)阳离子交换柱( 2.6 cm 50 cm) 。然后用 2 L 含 0.01% HCl 的去离子水以 1 mL/min 的流速冲洗柱子,以去大部分的除多糖,有机酸,蛋白和离子。用 1 L 35%的酸化乙醇溶液(0.01% HCl)做为洗脱液,流速为 1.5 mL/min 进行洗脱。根据柱中颜色边界层以及在 520 nm处的 UV-vis 检测结果进行洗脱液的收集,再浓缩(不超过 40 oC) ,冷冻干燥制得花青素粗提物。用 300 mL 6080% 乙醇溶液 (0.01% HCl)将弱

4、极性的花青素和其他酚类进行完全洗脱,备用。然后,取 0.1 g 经上一步树脂纯化的色素粗提物用 20 mL 去离子水溶解,上 Sephadex LH-20 层析柱(1.0 cm 60 cm; Sigma Chemical Co., St. Louis,MO, USA) ,用 1 L 25% 乙醇溶液(0.01%HCl)以 1.2 mL/min 的流速洗脱,并用 10 mL 试管收集洗收集不同组分,分别浓缩、冷冻干燥制得蓝莓花青素纯化样品。最后,为了得到花青素的单体,将 LH-20 分离得到的各部分样品经半制备型高效液相色谱进一步纯化,得到高纯度的花青素单体。研究优点:此采用采用乙醇,乙酸乙酯,

5、盐酸等无毒或低毒溶剂,取代了常规的剧毒有机溶剂比如甲醇,丙酮,三氟乙酸等。同样的 Giuliana Catalano3, Luis Cabrita4, Zhaoqi Zhang5等人也采用Amberlite XAD-7 树脂和 Sephadex LH-20 柱层析的方法分别从毛野豌豆的花瓣、蓝莓和荔枝果皮中分离得到花青素;王峰6采用柱层析法对黑花生衣色素进行分离纯化,方法流程为:黑花生衣50%甲醇(含 0.1%三氟醋酸)浸提浓缩乙酸乙酯萃取脱有机溶剂XAD-7HP 大孔树脂纯化 聚酰胺纯化葡聚糖凝胶 LH-20 纯化 得到两种色素单体;Gary R. Takeoka7等从黑豆中用固相萃取(硅藻

6、土)和制备型 HPLC 法分离得到了 3 种花青素。2. 高速逆流色谱和柱层析结合法Andreas8等人采用 Amberlite XAD-7 树脂和高速逆流层析(HSCCC)的方法从玫瑰茄,紫甘蓝,黑醋栗,黑果梨等中分离得到多种花青素,并对其抗氧化性能进行测试筛选。具体过程为:先用 Amberlite XAD-7 层析柱 (50 cm*4 cm, Fluka Chemie, Buchs, Switzerland) 对花青素粗提液进行初步纯,洗脱液组成为甲醇/乙酸(19:1, v/v)。洗脱液在真空下浓缩,然后冷冻干燥保存。接着采用高速逆流色谱进一步纯化,高速逆流色谱设备配备 3 个串联的制备线

7、圈(d=2.6 mm, V= 850 mL) ,转速为 1000 rpm,所用的溶剂体系组成为叔丁基甲醚 /正丁醇/ 乙腈/水(2:2:1:5 ) ,并用三氟乙酸酸化,流速为 5 mL/min,之前冷冻干燥的花青素产品用 1:1 体系的轻相和重相溶解,由环式注射器进样。HPLC-DAD, TLC, ESI-MS/MS 和 1H NMR 分析方法用来检测分离的花青素的纯度及分子式。Koichi9等建立了一套高速逆流色谱分离方法实现了花青素的纯化分离。两相溶剂系统的优选。Bo Li10等采用高速逆流色谱和 C18 反向色谱连用的方法从黑米中分离得到纯度高达 94.38% 的 Cyanidin-3-

8、O-d-glucoside 花青素。具体方法:(1)LCUVMS/MS( LC/MSD trap-Liquid Chromatography/Mass Spectrometer Detector ion trap) 液相色谱/质谱联用仪离子阱方法鉴定花青素种类,设备:Agilent 1100 series(Palo Alto, CA, USA)配备 ESI(electrospray ionization source)电喷射粒子化器和一个 DAD(diode-array detector)二极管阵列检测器;所用分离柱材料为 YMC ODS-AQ 柱 (3 m, 150 mm4.6 mm i.d

9、., Kyoto, Japan).流动相 A 为甲酸/( 8.5:91.5, v/v),B 相甲酸/ 甲醇/乙腈/ 水(8.5:22.5:22.5:41.5, v/v/v/v)。(2)HPLC 法对高速逆流色谱两相溶剂系统的优选。根据分配系数(K )所用两相溶剂系统的组成为:水-正丁醇-叔丁基甲基醚-乙腈-三氟乙酸。最佳比例根据分配系数 K 和固定相的保留比例确定。(3)经高速逆流分离得到的产品进一步用反向 C18 色谱进一步纯化,得到花青素单体。YMC PACK ODS-AQ C18 column (50 m, 50 cm3 cm i.d.), 洗脱剂为含 0.1% TFA 的 22%甲醇,

10、流速为 2 mL/min。 (4)最后再由核磁的碳普氢普确认所分离物质。参考文献1 Li, R., Wang, P., Guo, Q.Q. and Wang, Z.Y., Anthocyanin composition and content of the Vaccinium uliginosum berry, Food Chemistry, 2011, 125(1), 116-120.2 Wang, E.L., Yin, Y.G., Xu, C.N. and Liu, J.B., Isolation of high-purity anthocyanin mixtures and monome

11、rs from blueberries using combined chromatographic techniques, Journal of Chromatography A, 2014, 1327(31), 39-48.3 Catalano, G., Fossen, T., and Andersenc, .M., Petunidin 3-O-Rhamnopyranoside-5-O-glucopyranoside and other anthocyanins from flowers of vicia villosa, Journal of Agricultural and Food

12、Chemistry, 1998, 46 (11), 45684570.4 Cabrita, L., Frystein , N., Andersenc, .M., Anthocyanin trisaccharides in blue berries of vaccinium padifolium, 2000, 69(1), 33-36.5 Zhang, Z.Q., Pang, X.Q, Yang, C., Jia, Z.L. and Jiang, Y.M., Purification and structural analysis of anthocyanins from litchi peri

13、carp, Food Chemistry, 2004, 84(4), 601604.6 张天佑,王晓编著 . 高速逆流色谱技术. 北京:化学工业出版社,2011. 7 陈鹏. 天然产物中抗氧化活性成分的高速逆流色谱分离研究D, 浙江大学,2014.8 Degenhardt, A., Knapp, H., and Winterhalter, P., Separation and purification of anthocyanins by high-Speed countercurrent chromatography and screening for antioxidant activit

14、y, Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2000, 48(2), 338-43. 9 Li, B., Du, W.K., Qian, D.Y., Du and Q.Z., Combination of high-speed countercurrent chromatography and reversed phase C18 chromatography for large-scale isolation of cyanidin-3-O-D-glucoside from black rice bran extract, Industria

15、l Crops and Products, 2012, 37(1), 88-92.10 Schwarz, M., Hillebrand, S., Habben, S., Degenhardt, A. and Winterhalter, P., Application of high-speed countercurrent chromatography to the large-scale isolation of anthocyanins, Biochemical Engineering Journal, 2003, 14(3), 179189.11 Torskangerpolla, K., Choub, E. and Andersenc, .M., Separation of acylated anthocyanin pigments by high speed ccc, 2001, 24(11-12), 1791-1799.12 易建华,潘毛头和朱振宝,高速逆流色谱分离纯化紫甘蓝花色苷,食品与机械,2012,26(8) ,129-133.

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