实验三 酵母RNA的提取及含量测定.doc

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1、华南师范大学实验报告学生姓名 吴志军 学 号 20082502046 专 业 生物工程 年级、班级 08工程1班 课程名称 下游技术 实验项目 酵母RNA提取 实验类型 验证 设计 综合 实验时间 2011年 10月 17 日实验指导老师 江学文 实验评分 实验三 酵母RNA的提取及含量测定一、实验目的与要求1、了解并掌握稀碱法提取RNA的原理和方法。2、熟悉和掌握紫外吸收法测定核酸含量原理和操作方法,3、熟悉紫外分光光度计的基本原理和使用方法。二、实验原理由于RNA的来源和种类很多,因而提取制备方法也很各异。一般有苯酚法、去污剂法和盐酸胍法。其中苯酚法又是实验是最常用的。组织匀浆用苯酚处理并

2、离心后,RNA即溶于上层被酚饱和的水相中,DNA和蛋白质则留在酚层中。向水层加入乙醇后,RNA即以白色絮状沉淀析出,此法能较好的除去DNA和蛋白质。上述方法提取的RNA具有生物活性。工业上常用稀碱法和浓盐法提取RNA,用这两种方法所提取的核酸均为变性的RNA,主要用作制备核苷酸的原料,其工艺比较简单。浓盐法使用10%左右氯化钠溶液,90提取3-4h,迅速冷却,提取液经离心后, 上清液用乙醇沉淀RNA。稀碱法使用稀碱使酵母细胞裂解,然后用酸中和,除去蛋白质和菌体后的上清液用乙醇沉淀RNA或调pH2.5利用等电点沉淀。 酵母含RNA达2.67-10.0%,而DNA含量仅为0.03-0.516%,为

3、此,提取RNA多以酵母为原料。核酸、核苷酸及其衍生物的分子结构中的嘌呤、嘧啶碱基具有共轭双健系统(-C=C一C=C-),能够强烈吸收250-280nm 波长的紫外光。核酸(DNA,RNA)的最大紫外吸收值在260nm 处。遵照Lambert-Beer 定律,可以从紫外光吸收值的变化来测定核酸物质的含量。在不同pH 溶液中嘌呤、嘧啶碱基互变异构的情况不同,紫外吸收光也随之表现出明显的差异,它们的摩尔消光系数也随之不同。所以,在测定核酸物质时均应在固定的pH溶液中进行。核酸的摩尔消光系数(或吸收系数),通常以()来表示,即每升含有一摩尔核酸磷的溶液在260nm 波长处的消光值(即光密度,或称为光吸

4、收)。核酸的摩尔消光系数不是一个常数,而是依赖于材料的前处理、溶液的pH 和离子强度发生变化。RNA 溶液(pH = 7.0)的()= 7 700-7 800,RNA 的含磷量为9.5%,含1g /mL RNA 溶液的光密度为0.022-0.024。因此,测定未知浓度的DNA(RNA)溶液的光密度OD260nm,即可计算测出其中核酸的含量。该法简单、快速、灵敏度高,如核酸3g/mL 的含量即可测出。对于含有微量蛋白质和核苷酸等吸收紫外光物质的核酸样品,测定误差较小。蛋白质由于含有芳香族氨基酸,因此也能吸收紫外光。通常蛋白质的吸收高峰在280nm 波长处,在260nm 波长处的吸收值仅为核酸的十

5、分之一或更低,故核酸样品中的蛋白质含量较低时对核酸的紫外测定影响不大。三、主要仪器和试剂啤酒酵母粉0.04M NaOH溶液95%乙醇、乙醚、酸性乙醇溶液:30mL乙醇加0.3mL HCl。紫外分光光度计离心机真空干燥箱三角瓶、烧杯水浴锅四、实验步骤1、称5g干酵母粉悬浮于30mL 0.04M NaOH溶液中,并在研钵中研磨均匀。2、悬浮液转入三角烧瓶,沸水浴加热30min,冷却,转入离心管,3000转/分,离心15分钟后,将上清慢慢倾入10mL酸性乙醇,边加边搅动。3、加毕,静置,待RNA沉淀完全后,3000r/min离心3min。弃去上清液。用95乙醇洗涤沉淀两次。4、再用乙醚洗涤沉淀一次后

6、,用乙醚将沉淀转移至布氏漏斗抽滤,沉淀在空气中干燥。称量所得RNA粗品的重量,5、纯度测定:将样品配制成含550g核酸/mL的溶液,于紫外分光光度计上测定260nm和280nm吸收值,计算核酸浓度和两者吸收比值。五、计算: O.D260为260nm 波长处的光密度读数;L为比色杯的厚度,一般为1或0.5;0.024为1gRNA/mL的光密度;0.020为1gDNA/mL的光密度。六、实验结果与分析各小组测得的实验数据如下表:组别稀释倍数吸光值(OD260)116667倍0.523212500倍0.593314000倍0.474412500倍0.574512500倍0.605其中本小组为第5小组

7、,稀释倍数为12500倍,测得的吸光值(OD260)为0.605。将酵母粉处理后得到的沉淀的重量为:0.46g。滤纸滤纸+沉淀沉淀重量(g)0.30400.76040.4564其中RNA粗品占沉淀的70%,杂质占沉淀的30%,故RNA粗品的重量为:0.460.7=0.322g。纯度测定结果为:RNA浓度(ug/g)=RNA纯品的质量(ug)=RNA浓度RNA粗品的重量=故甘酵母粉中RNA含量(%)=2.02%分析:实验的结果测出RNA的含量为2.02%,其RNA的含量偏低。造成这种结果的原因主要是由于对物料进行转移的时候损失的,同时测量光度值的时候造成的误差也是造成RNA含量少的原因。七、思考

8、题1.破酵母细胞时为什么要在沸水浴中进行?答:由于酵母细胞外有一层厚厚的细胞壁,而RNA存在于细胞质中,所以必需将酵母细胞的细胞壁研磨破碎后才能提取出RNA。加入NaOH之后水浴煮沸30min的作用是促进细胞壁变性,使类脂、甘露聚糖、葡聚糖等成分部分分解,使蛋白质变性,从而使细胞破裂,RNA则从细胞中分离出来。另外细胞中含有多种分解RNA的酶类(如RNase等),为了避免RNA在提取过程中被降解,得到较为完整的RNA分子,破碎酵母细胞时应在沸水中进行,这样可以使细胞中降解RNA的蛋白酶类活性受到抑制甚至变性失活,从而起到保护RNA分子的作用。2.为什么用酵母作为实验原料?如何使RNA从酵母中释

9、放出来?RNA的等电点是多少?答:酵母繁殖快,生长周期短;其细胞质中的核酸大部分是RNA,而DNA很少;RNA提取液与菌体分离比较容易,因此酵母是提取RNA的好材料。工业上将RNA从细胞中释放出来主要有三种方法,包括稀碱法、浓盐法和自溶法。(1)稀碱法是在一定的碱浓度下,使构成细胞壁的蛋白质、脂肪及糖的化合物得到水解,从而破坏细胞壁,使RNA从细胞中释放出来,该方法属于化学破壁法。(2)浓盐法是基于改变酵母细胞的渗透压,是细胞自身破裂而释放出RNA,即利用高浓度的盐(10% NaCl)在90100C条件下改变了细胞膜通透性,并将核蛋白体解离成RNA和蛋白质而使 RNA释放到盐溶液中。同时,90

10、100C的高温可破坏磷酸单酯酶和磷酸二酯酶的活力,避免RNA的降解。该方法属于物理化学破壁法。(3)自溶法是利用某些酵母菌种在发酵结束后,细胞中的溶酶体膜破裂,使得溶酶体中的水解酶释放到细胞之中,利用菌体自身的酶系将细胞溶解,从而释放出RNA。通常自溶法的菌浓度为2%,PH值9.510,自溶温度以6065C为宜。RNA的等电点为PH2.5。根据核酸在等电点溶解度最小的性质,将溶液在低温下调pH至2.02.5,RNA则以白色絮状沉淀形式从盐溶液中析出。再次离心,固液分离,便可获得RNA粗产品。3 为什么用稀碱溶液可以使酵母细胞裂解?答:酵母菌的细胞壁呈“三明治”结构外层为甘露聚糖,内层为葡聚糖,

11、中间层为一层蛋白质分子(包括多种酶类),此外细胞壁壁上还含有少量的类脂和几丁质。稀碱溶液能够对酵母菌细胞壁和细胞膜上的脂类起到抽提作用,脂类发生皂化反应从而被分解,使细胞穿孔。同时细胞壁的聚糖成分在碱液中会部分水解,蛋白质(包括多种酶类)也会发生变性,从而增加酵母细胞的通透性,酵母细胞原生质膜失去选择透过性,细胞就破裂使RNA流出。4.核酸的溶解性质是什么?常用什么试剂分离沉淀核酸?答:核酸是具有极性的高分子物质,根据相似相溶原理,DNA和RNA都是微溶于水,其钠盐在水中的溶解度较大。它们可溶于2-甲氧乙醇,也可溶于10%左右的氯化钠溶液,但不溶于乙醇、乙醚和氯仿等一般有机溶剂,尤其是在50%左右的乙醇溶液中溶解度很小。因此,常用乙醇从溶液中沉淀核酸,当乙醇浓度达50%时,DNA就沉淀出来,当乙醇浓度达75%时RNA也沉淀出来。

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