《EP_7.0_2.6.12_非无菌产品的微生物限度检查》由会员分享,可在线阅读,更多相关《EP_7.0_2.6.12_非无菌产品的微生物限度检查(11页珍藏版)》请在金锄头文库上搜索。
1、欧洲药典7.02.6.12非无菌产品的微生物限度检查:微生物计数试验1. 简介:该法所描述的是在需氧条件下生长的嗜温性细菌和真菌类微生物的定量检测。设计该试验的最初目的是为了确定一种物质或制剂是否符合微生物质量的既定标准。如果是 这种目的,则需要遵从下面的说明,包括所需样品数,从而根据下面所提到的方法来进行结果解 释。该法不适用于包含微生物作为活性成分的产品。如果与药典的等效性作了相关说明,可以使用自动收集法作为替代法。2. 般步骤设计方法时所用条件要避免外在微生物对待测产品的污染。必须釆取措施,使其不影响任何 待测微生物。如果待测产品有抗菌活性,必须将这种活性去除或中和掉。如果因此使用了灭活
2、剂,必须证 明它们对微生物的高效性和无毒性。如果在样品制备中加了表面活性剂,必须证明它们对微生物的无毒性和与灭活剂的兼容性。3. 计数方法按规定用微孔滤膜法或平板计数法。MPN法对微生物测定来说是最不精确的方法,但如果某些产品所含微生物的量极少,则该法是最合适的。方法选择基于下列因素:如产品的特性和所要求的微生物限量。所选方法必须能够测定充足 的样品从而来判断其是否符合标准。所选方法的适用性必须建立。4. 促生长实验、计数法的适用性和阴性对照4-1总则该试验检测产品中微生物的检测能力必须被验证。如果测试条件改变或产品改变,必须证实方法的适适用性,因为这些改变可能影响试验的最 终结果。4-2试验
3、菌株的准备使用测试菌株标准稳定的悬浮液或按下面方法制备。使用批菌种培养技术(seed-lot systems)使得用于接种的微生物从最初的主批种子传代不多于5次。细菌和真菌试验株的生长分别见表2612-2。使用氯化钠蛋白胨(pH 7.0)缓冲液或pH 7.2的磷酸缓冲液制作试验用悬浮液。对于黑曲霉菌需要加入0.05%聚山梨醇酯80到缓冲液中。在两小时内使用该菌悬液或2-8 C下可保存24小时。作为一种可替代的制备方法,稀释含有黑曲霉菌或枯草芽孢杆菌的新鲜悬浮液,该悬浮液中 加有营养细胞,从而可以制得一种稳定的孢子悬浮液,对于接种试验来说需要将该孢子悬浮液调整到一个合适的体积下。该孢子悬浮液可以
4、在2-8 C保存至已经验证的期限。4-3阴性对照为了验证试验条件,必须使用特定的稀释液作为阴性对照来替代测试液。在该阴性对照品中 必须没有微生物生长。按“5项的方法检测样品时,同样需要对照组。如果阴性对照试验失败的话需要分析原因。4-4促生长培养基测试每一批准备好的培养基,每一批培养基,要么为脱水培养基要么含有所述成分。用表2.6.12-1中所描述的少量微生物(不多于100CFU )接种到含有大豆蛋白胨消化肉汤的液体/平板和大豆蛋白胨消化琼脂上,对每一种使用各自的含有培养基的液体/平板。用表2.6.12-2中所描述的少量微生物(不多于100CFU )接种到沙氏-葡萄糖琼脂平板,对每一种微生物使
5、用含各自培养基的平板。接种条件见表2.6.12-1。对固体培养基而言,以标准接种物来说,所得的生长值不超过计算值的两倍。与用先前的测 试方法和验证的批培养基所得的测试结果相比,新制备的接种物将会出现微生物的生长值。与用 先前的测试方法和验证的批培养基所得的测试结果相比,如果微生物生长清淅可见,则液体培养 基是合适的。表2.6.12.-1-微生物制备和使用微生物受试菌株制备促生长在产品存在的情况下的计数方法的适应性需氧菌总数总酵母菌 和霉菌数需氧菌总数总酵母菌和 霉菌数金黄色葡萄球 菌如:ATCC6538NCIMB9518CIP4.83NBRC13276酪蛋白大豆 消化琼脂或 酪蛋白大豆 消化肉
6、汤30-35 C18-24小时酪蛋白大豆消 化琼脂或酪蛋 白大豆消化肉 汤100CFU30-35 CW3天酪蛋白大豆消化 琼脂/MPN酪蛋白 大豆消化肉汤100CFU30-35 Cw沃铜绿假单胞菌酪蛋白大豆酪蛋白大豆消酪蛋白大豆消化如:消化琼脂或化琼脂或酪蛋琼脂/MPN酪蛋白酪蛋白大豆白大豆消化肉大豆消化肉汤ATCC 9027消化肉汤汤100CFUNCIMB 862630-35 C100CFU30-35 CCIP 82.11818-24小时30-35 C3天NBRC13275W3天枯草杆菌酪蛋白大豆酪蛋白大豆消酪蛋白大豆消化如:消化琼脂或化琼脂或酪蛋琼脂/MPN酪蛋白酪蛋白大豆白大豆消化肉大豆
7、消化肉汤ATCC 6633消化肉汤汤100CFUNCIMB 805430-35 C100CFU30-35 CCIP 52.6218-24小时30-35 C沃NBRC 3134W3天白色念珠菌沙氏葡萄糖酪蛋白大豆消沙氏葡萄酪蛋白大豆消化沙氏葡萄糖如:琼脂或沙氏化琼脂糖琼脂琼脂琼脂葡萄糖肉汤100CFU100CFU100CFU100CFUATCC 1023120-25 C30-35 C20-25 C30-35 C20-25 CNCPF 3179IP 48.72NBRC 15942-3天W5天W5天5天MPN :不能适用5天黑曲霉菌沙氏葡萄糖酪蛋白大豆消沙氏葡萄酪蛋白大豆消化沙氏葡萄糖如:琼脂或马铃
8、化琼脂糖琼脂琼脂琼脂薯葡糖萄糖100CFU100CFU100CFU100CFUATCC 16404琼脂30-35 C20-25 C30-35 C20-25 CIMI14900720-25 CW5天W5天5天5天IP 1431.835-7天或能达NBRC 9455到有很好的MPN : 不适用芽孢形成4-5对于待测产品合适的计数方法4-5-1样品制备:样品制备方法选择依赖于待测产品的物理特性。如果下述方法均不合适的话, 可选用替代方法。水溶性产品:溶解或稀释(通常1:10的稀释液)待测产品于氯化钠蛋白胨 (pH 7.0)缓冲液,PH7.2 的磷酸缓冲液或酪蛋白大豆消化肉汤。如有必要,调节pH 6-
9、8。如果必要可用相同稀释液进一步稀释。不溶于水的非脂类产品:使待测物(通常以1 : 10稀释制备)悬浮在 pH7.0的缓冲氯化钠蛋白胨 溶液,pH7.2的磷酸缓冲液或酪蛋白大豆消化肉汤中。加入如 1g/l的聚山梨醇酯80表面活性剂 使几乎能润湿的物质悬浮。如有需要,调节pH为6-8。如果必要可用相同稀释液进一步稀释脂类产品:将受检产品溶解在豆蔻酸异丙脂中,通过过滤或把产品与最小需要量的无菌聚山梨醇酯80或与其他的非抑制表面活性剂混合进行灭菌,如果需要,加热到不超过40C,或者在特殊情况下不超过45C。仔细混合且如有必要在水浴中保温。加足量预热的所选稀释液来制备原产品的1: 10的稀释溶液。仔细
10、混合同时在所需的最短时间内保温来形成乳状液。可以使用含有合适浓度的无菌聚山梨醇酯 80或其它的非抑制无菌表面活性剂来制备一系列的十倍稀释液。液体或固体的气溶胶:将产品在无菌条件下转移到一个膜过滤装置或者一个无菌容器中来进一步 取样。或使用总含量或使用每个容器剂量确定的量。透皮贴剂。去掉透皮贴剂的保护层(“隔离衬垫”)并把它们向上贴在无菌玻璃或塑料盘上。用无菌多孔物质例如无菌纱布来覆盖粘贴面,避免透皮贴剂粘在一起并把透皮贴剂转移到含有如聚山梨醇酯80和/或卵磷脂的灭活剂的所选适当体积的稀释液中。至少用力振摇制备溶液30分钟。4-5-2接种和稀释:加上述制备的样品(4-5-1)到一个控制的(不含待
11、测物质)足够量的微生物混悬溶液中来获得一个不超过100CFU的接种液。接种液的体积不能超过稀释产品的体积的1%。为说明产品的可接受微生物回收率,实验中应该使用制备样品的最低可能稀释因子。如果因 为抗微生物活性或者差的溶解性而不可能做到,需要进一步探索合适的方案。如果样品的生长抑 制不可避免,在中和、稀释或过滤后可加入微生物混悬液。4-5-3中和/去除抗微生物活性把根据4-5-2所述稀释制备的样品和按照4-5-4中所述步骤培养的微生物数和与对照制备中回收的微生物数作比较。如果生长被抑制(抑制因子大于2),修改计数测试的方法来保证结果的有效性。修改可能包括,如,(1)稀释液或培养基体积的增加,(2
12、)特殊的或一般的中和剂与稀释液的结合,(3)膜过滤,或(4)上述措施的组合。中和剂:中和剂可被用来中和抗菌剂的活性(表2.6.12.-2)。可在灭菌前加入到所选稀释液或更好的培养基中。如果使用的话,它们的功效和对微生物无毒性必须通过使用中和齐师不使用产品 的空白实验进行说明。表2612.-2干扰物质的一般中和剂干扰物质可能的中和方法戊二醛,汞硫酸氢钠(亚硫酸氢钠)酚,醇,醛,山梨酸酯稀释乙醛甘氨酸季铵化合物(QACs),对羟基本甲酸酯(对羟基 苯甲酸酯),二-二双胍类卵磷脂QACs ,碘,对羟基苯甲酸酯聚山梨醇酯汞剂硫乙醇酸盐汞剂,卤素,醛硫代硫酸盐EDTA (乙二胺四乙酸盐)Mg2+或 Ca
13、2+若没有合适的中和方法,可认为分离接种微生物失败归因于产品自身的杀菌活性。这说明产 品不可能被上述微生物污染。然而,产品可能只对其中一些有抑制作用,而对其他一些测试菌株 没有作用或菌株没有代表性。然后,以微生物生长和标准所允许的最高浓度系数进行试验。4-5-4.产品存在情况下微生物的回收率对以上列出的微生物进行单独的试验。仅对加入的测试菌微生物进行计数。4-5-4-1.膜过滤:使用孔径不大于 0.45的滤膜过滤。选择滤膜材料类型时,要求滤膜对微生物的滞留能力不受到待测样品成份的影响。每种上述微生物使用一张滤膜。将适量按4-5-1至4-5-3制备的样品(含1g产品,若预期CFU较大,则小于1g
14、)用膜过滤, 立即过滤并用适量稀释液冲洗滤膜。将膜转移到酪蛋白大豆消化琼脂表面上,以确定厌氧菌总数(TAMC)。将滤膜转移到沙氏葡糖琼脂上,以确定总酵母菌/霉菌数(TYMC )。按表2.6.12-2接种,进行计数。4-5-4-2.平板计数法:至少在对各培养基使用两次平板计数法,对结果取平均值。4-5-4-2-1.倾注培养法在直径9cm的培养皿中,加入1ml按4-5-1至4-5-3法制备的样品以及15-20ml酪蛋白大豆消 化琼脂或沙氏葡糖琼脂。培养基温度均不超过45C。若使用更大的培养皿,则琼脂的量也要相应增加。对于表2.6.12.-2中列出的每种微生物,至少要使用2个培养皿。根据表2.6.12.-2进行培养。取各培养基的菌落数的算术平均值计算原接种物的CFU。4-5-4-2-2.表面涂布法在各直径9cm的培养皿中加入15-20ml酪氨酸大豆消化琼脂或沙氏葡糖琼脂,放置使其凝固。培养基温度均不超过 45C。若使用更大的培养皿,则琼脂的量也要相应增加。在层流通风柜或培 养箱中干燥。对于表 2612.-2中列出的