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1、一）实验原理双缩脲（NH3CONHCONH3）是两个分子脲经 180左右加热，放出一个分子氨后得到的产 物。在强碱性溶液中，双缩脲与 CuSO4 形成紫色络合物，称为双缩脲反应。凡具有两个酰 胺基或两个直接连接的肽键，或能过一个中间碳原子相连的肽键，这类化合物都有双缩脲 反应。紫色络合物颜色的深浅与蛋白质浓度成正比，而与蛋白质分子量及氨基酸成分无关，故可 用来测定蛋白质含量。测定范围为 110mg 蛋白质。干扰这一测定的物质主要有：硫酸铵、 Tris 缓冲液和某些氨基酸等。此法的优点是较快速，不同的蛋白质产生颜色的深浅相近，以及干扰物质少。主要的缺点 是灵敏度差。因此双缩脲法常用于需要快速，但
2、并不需要十分精确的蛋白质测定。（二）试剂与器材1.试剂：（1）标准蛋白质溶液：用标准的结晶牛血清清蛋白（BSA）或标准酪蛋白，配制成 10mg/ml 的标准蛋白溶液，可用 BSA 浓度 1mg/ml 的 A280 为 0.66 来校正其纯度。如有需 要，标准蛋白质还可预先用微量凯氏定氮法测定蛋白氮含量，计算出其纯度，再根据其纯 度，称量配制成标准蛋白质溶液。牛血清清蛋白用 H2O 或 0.9%NaCl 配制，酪蛋白用 005N NaOH 配制。（2）双缩脲试剂：称以 1.50 克硫酸铜（CuSO45H2O）和 6.0 克酒石酸钾钠 （KNaC4H4O64H2O） ，用 500 毫升水溶解，在搅
3、拌下加入 300 毫升 10% NaOH 溶液，用水 稀释到 1 升，贮存于塑料瓶中（或内壁涂以石蜡的瓶中） 。此试剂可长期保存。若贮存瓶中 有黑色沉淀出现，则需要重新配制。2.器材：可见光分光光度计、大试管 15 支、旋涡混合器等。（三）操作方法1.标准曲线的测定：取 12 支试管分两组，分别加入 0，0.2，0.4，0.6，0.8，1.0 毫升的标 准蛋白质溶液，用水补足到 1 毫升，然后加入 4 毫升双缩脲试剂。充分摇匀后，在室温 （2025）下放置 30 分钟，于 540nm 处进行比色测定。用未加蛋白质溶液的第一支试管 作为空白对照液。取两组测定的平均值，以蛋白质的含量为横座标，光吸
4、收值为纵座标绘 制标准曲线。2、样品的测定：取 23 个试管，用上述同样的方法，测定未知样品的蛋白质浓度。注意样 品浓度不要超过 10mg/ml。三、Folin酚试剂法（Lowry 法）（一）实验原理这种蛋白质测定法是最灵敏的方法之一。过去此法是应用最广泛的一种方法，由于其试剂 乙的配制较为困难（现在已可以订购） ，近年来逐渐被考马斯亮兰法所取代。此法的显色原 理与双缩脲方法是相同的，只是加入了第二种试剂，即 Folin酚试剂，以增加显色量，从 而提高了检测蛋白质的灵敏度。这两种显色反应产生深兰色的原因是：在碱性条件下，蛋 白质中的肽键与铜结合生成复合物。Folin酚试剂中的磷钼酸盐磷钨酸盐被
5、蛋白质中的 酪氨酸和苯丙氨酸残基还原，产生深兰色（钼兰和钨兰的混合物） 。在一定的条件下，兰色 深度与蛋白的量成正比。Folin酚试剂法最早由 Lowry 确定了蛋白质浓度测定的基本步骤。以后在生物化学领域得 到广泛的应用。这个测定法的优点是灵敏度高，比双缩脲法灵敏得多，缺点是费时间较长， 要精确控制操作时间，标准曲线也不是严格的直线形式，且专一性较差，干扰物质较多。 对双缩脲反应发生干扰的离子，同样容易干扰 Lowry 反应。而且对后者的影响还要大得多。 酚类、柠檬酸、硫酸铵、Tris 缓冲液、甘氨酸、糖类、甘油等均有干扰作用。浓度较低的 尿素（0.5%） ，硫酸纳（1%） ，硝酸纳（1%）
6、 ，三氯乙酸（0.5%） ，乙醇（5%） ，乙醚（5%） ， 丙酮（0.5%）等溶液对显色无影响，但这些物质浓度高时，必须作校正曲线。含硫酸铵的 溶液，只须加浓碳酸钠氢氧化钠溶液，即可显色测定。若样品酸度较高，显色后会色浅， 则必须提高碳酸钠氢氧化钠溶液的浓度 12 倍。进行测定时，加 F olin酚试剂时要特别小心，因为该试剂仅在酸性 pH 条件下稳定，但上 述还原反应只在 pH=10 的情况下发生，故当 Folin 一酚试剂加到碱性的铜蛋白质溶液中 时，必须立即混匀，以便在磷钼酸磷钨酸试剂被破坏之前，还原反应即能发生。此法也适用于酪氨酸和色氨酸的定量测定。此法可检测的最低蛋白质量达 5mg
7、。通常测定范围是 20250mg。（二）试剂与器材1.试剂（1）试剂甲：（A）10 克 Na2CO3，2 克 NaOH 和 0.25 克酒石酸钾钠（KNaC4H4O64H2O） 。溶解于 500 毫升蒸馏水中。（B）0.5 克硫酸铜（CuSO45H2O）溶解于 100 毫升蒸馏水中，每次使用前，将 50 份 （A）与 1 份（B）混合，即为试剂甲。（2）试剂乙：在 2 升磨口回流瓶中，加入 100 克钨酸钠（Na2WO42H2O）,25 克钼酸钠 （Na2MoO42H2O）及 700 毫升蒸馏水，再加 50 毫升 85%磷酸，100 毫升浓盐酸，充分混 合，接上回流管，以小火回流 10 小时，
8、回流结束时，加入 150 克硫酸锂（Li2SO4） ，50 毫 升蒸馏水及数滴液体溴，开口继续沸腾 15 分钟，以便驱除过量的溴。冷却后溶液呈黄色 （如仍呈绿色，须再重复滴加液体溴的步骤） 。稀释至 1 升，过滤，滤液置于棕色试剂瓶中 保存。使用时用标准 NaOH 滴定，酚酞作指示剂，然后适当稀释，约加水 1 倍，使最终的 酸浓度为 1N 左右。（3）标准蛋白质溶液:精确称取结晶牛血清清蛋白或 g球蛋白，溶于蒸馏水，浓度为 250 mg/ml 左右。牛血清 清蛋白溶于水若混浊，可改用 0.9 % NaCl 溶液。2.器材（1）可见光分光光度计（2）旋涡混合器（3）秒表（4）试管 16 支（三）
9、操作方法1.标准曲线的测定：取 16 支大试管，1 支作空白，3 支留作未知样品，其余试管分成两组， 分别加入 0，0.1，0.2，0.4，0.6，0.8，1.0 毫升标准蛋白质溶液（浓度为 250mg/ml） 。用 水补足到 1.0 毫升，然后每支试管加入 5 毫升试剂甲，在旋涡混合器上迅速混合，于室温 （2025）放置 10 分钟。再逐管加入 0.5 毫升试剂乙（Folin酚试剂） ，同样立即混匀。 这一步混合速度要快，否则会使显色程度减弱。然后在室温下放置 30 分钟，以未加蛋白质 溶液的第一支试管作为空白对照，于 700nm 处测定各管中溶液的吸光度值。以蛋白质的量 为横座标，吸光度值
10、为纵座标，绘制出标准曲线。注意：因 Lowry 反应的显色随时间不断加深，因此各项操作必须精确控制时间，即第 1 支 试管加入 5 毫升试剂甲后，开始计时，1 分钟后，第 2 支试管加入 5 毫升试剂甲，2 分钟后 加第 3 支试管，余此类推。全部试管加完试剂甲后若已超过 10 分钟，则第 1 支试管可立即 加入 0.5 毫升试剂乙，1 分钟后第 2 支试管加入 0.5 毫升试剂乙，2 分钟后加第 3 支试管， 余此类推。待最后一支试管加完试剂后，再放置 30 分钟，然后开始测定光吸收。每分钟测 一个样品。进行多试管操作时，为了防止出错，每位学生都必须在实验记录本上预先画好下面的表格。 表中是
11、每个试管要加入的量（毫升） ，并按由左至右，由上至下的顺序，逐管加入。最下面 两排是计算出的每管中蛋白质的量（微克）和测得的吸光度值。2.样品的测定：取 1 毫升样品溶液（其中约含蛋白质 20250 微克） ，按上述方法进行操作， 取 1 毫升蒸馏水代替样品作为空白对照。通常样品的测定也可与标准曲线的测定放在一起， 同时进行。即在标准曲线测定的各试管后面，再增加 3 个试管。如上表中的 8、9、10 试管。根据所测样品的吸光度值，在标准曲线上查出相应的蛋白质量，从而计算出样品溶液的蛋白质浓度。注意，由于各种蛋白质含有不同量的酪氨酸和苯丙氨酸，显色的深浅往往随不同的蛋白质 而变化。因而本测定法通常只适用于测定蛋白质的相对浓度（相对于标准蛋白质） 。
