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1、实验一实验一 细菌基因组细菌基因组DNADNA的提取的提取一、实验原理1、核酸的分类l DNA 主要存在于细胞核的染色体中。核外也有少量DNA ，如线粒体DNA（mtDNA），叶绿体DNA（ cpDNA），质粒DNA。l RNA存在于细胞质中，如mRNA, rRNA, tRNA等。l 除上述DNA，RNA外，还有非细胞形式存在的病毒和 噬菌体，其或只含DNA，或只含有RNA。l分离纯化核酸总的原则：应保证核酸一级结构的完整性；排除其它分子的污染。l核酸纯化应达到的要求：核酸样品中不应存在对酶有抑制作用的有机溶剂和过高 浓度的金属离子；其它生物大分子的污染应降低到最低程度；排除其它核酸分子的污染
2、。2、核酸制备的一般原则一、实验原理l核酸制备时应注意的事项:尽量简化操作步骤，缩短提取过程。减少化学因素对核酸的降解。减少物理因素对核酸的降解：机械剪切力和高温防止核酸的生物降解。 3、核酸制备的一般原则一、实验原理l核酸制备的步骤：破碎细胞破碎细胞提取提取纯化纯化I.材料准备II.破碎细胞或包膜内容物释放III.核酸分离、纯化IV.沉淀或吸附核酸，并去除杂质V.核酸溶解在适量缓冲液或水中l核酸酶的抑制和抑制剂降低温度，改变pH及盐的浓度，都利于对核酸酶 活性的抑制，但均不如利用核酸酶抑制剂更有利，当 然，几个条件并用更好。对于DNA，抑制DNase活力很容易，但防止机械 张力拉断则更重要。
3、对于RNA，因分子较小，不易被机械张力拉断， 但抑制RNase活力较难，故在RNA提取中设法抑制 RNase更重要。4、核酸制备的一般方法和原理一、实验原理l核酸酶的抑制和抑制剂DNase抑制加入少量金属离子螯合剂，如0.01 mol/L EDTA 或柠檬酸钠，DNase基本可以全部失活。 去垢剂、蛋白变性剂及DNase抑制剂也可使 DNase失活。l核酸酶的抑制和抑制剂RNase抑制操作要带手套。所有器皿要严格消毒，试剂处理低温操作在分离过程中要加入一定的RNase抑制剂。 l核酸制备中常用的去垢剂核酸本身带负电荷，结合带正电荷的蛋白质。用 于核酸提取的去垢剂，一般都是阴离子去垢剂 ，去垢剂
4、的作用：1溶解膜蛋白及脂肪，使细胞膜破裂；2溶解核糖体上面的蛋白质，使其解聚，将核酸 释放出来；3对RNase、DNase有一定的抑制作用。如：SDS、脱氧胆酸钠、4-氨基水杨酸钠、萘-1.5-二磺酸钠 、三异丙基萘磺酸钠l核酸制备中常用的蛋白质变性剂 蛋白质变性剂的作用：1.使蛋白质变性、沉淀，从核酸提取液中分离除去，以防造 成蛋白污染。2.使蛋白质变性，故可使核糖体解聚释放出核酸。3.某些蛋白质变性剂也有抑制RNase活性和破裂细胞的作用 。如：苯酚、氯仿、盐酸胍、DEPCl核酸制备中常用的酶DNaseRNase蛋白酶K溶菌酶 l核酸提取的一般过程 1）破碎细胞（防止核酸酶的作用）微生物：
5、溶菌酶、SDS裂解。高等植物：捣碎器破碎、液氮研磨。酶法：蛋白酶，如胰蛋白酶， 冰冻法：反复冻融或液氮冻后组织捣碎 。动物：液氮处理后用匀浆器破碎。细胞器DNA：首先纯化细胞器。以上处理时均要同时加入核酸酶抑制剂l核酸提取的一般过程 2）破碎抽提核酸除去杂质1首先使脱氧核糖核蛋白、核糖体、病毒的核蛋白与 其它成分分离2使核酸与蛋白质分离3除去脂类 4多糖的除去l核酸提取的一般过程3）核酸的纯化根据所需核酸的性质和特点除去其它核酸污 染,并除去提取过程中的系列试剂(盐、有机溶剂 等）杂质，最后得到均一的核酸样品。 4）核酸样品的保存 核酸保存的主要条件是温度和介质温度：4（5）最佳和最简单-70
6、是长期保存的良好温度，为一次性保存-20保存保存介质： TE缓冲溶液(最常用) TE缓冲液被用于DNA的 稳定和储存10mmol/L Tris-Cl pH8.01mmol/L EDTA pH8.0二、材料、设备及试剂 菌种 ：DBT降解菌 设备 ：eppendorf管、微量取液器(20l,200l,1000l)， 台式 高速离心机， 涡旋振荡器 试剂：LB液体培养基 、裂解液（40mMTris-醋酸，20mM醋酸钠 ,1mMEDTA,1%SDS,pH8.0）、5M NaCl 、Tris-饱和酚、氯仿、 RNA酶A 、无水乙醇 1、1.5ml菌液（每组两管）4 12000rpm离心30sec，
7、弃去上清，倒置试管于吸水纸上吸干。 2、每管加入400l裂解液，用移液枪枪头反复抽吸辅 助裂解，37 水浴30min。 3、每管加入132l的5M NaCl溶液，颠倒试管，充分混 匀后，13000rpm离心15min。用粗口的枪头（用剪刀剪 去1ml枪头的尖端）小心取出上清液转倒两支新的 eppendorf管中。 4、加入等体积的饱和苯酚/氯仿，充分混匀后， 12000rpm离心3min，离心后的水层如混浊则说明仍含 有蛋白质，则需将上清液转入新的试管，重复上述步骤 直到水层透明，水层和酚层之间不再白色沉淀物为止（ 约2次）。三、操作步骤5、将上层清液转入新的eppendorf管，加等体积的氯
8、仿，混匀 后13000rpm离心3min，除去苯酚。6、小心吸出上清液转入新的eppendorf管，用预冷的两倍体积 的无水乙醇沉淀，放置20冰箱30min，然后13000rpm离心 15min，可见白色丝状沉淀物。7、小心吸出液体，弃上清液，用预冷的400l 70乙醇洗涤2 次，室温干燥后，用50lTE （含20g/ml的Rnase）溶解DNA ，20冰箱放置备用。 四、注意事项四、注意事项材料准备材料准备 最好使用新鲜材料，低温保 存的样品材料不要反复冻融 提取血液基因组DNA时，要 选择有核细胞（白细胞） 组培细胞培养时间不能过长 ，否则会造成DNA降解 含病毒的液体材料DNA含量 较少
9、，提取前先富集四、注意事项四、注意事项细胞裂解细胞裂解 材料应适量，过多会影响裂解，导致DNA量 少，纯度低 针对不同材料，选择适当的裂解预处理方式 ： 植物材料液氮研磨 动物组织匀浆或液氮研磨 组培细胞蛋白酶K 细菌溶菌酶破壁 酵母破壁酶或玻璃珠 高温温浴时，定时轻柔振荡四、注意事项四、注意事项核酸分离、纯化核酸分离、纯化 采用吸附材料吸附的方式分离DNA时，应提 供相应的缓冲体系 采用有机（酚/氯仿）抽提时应充分混匀，但 动作要轻柔 离心分离两相时，应保证一定的转速和时间 针对不同材料的特点，在提取过程中辅以相 应的去杂质的方法四、注意事项四、注意事项核酸沉淀、溶解核酸沉淀、溶解 当沉淀时
10、间有限时，用预冷的乙醇或异丙醇沉淀， 沉淀会更充分 沉淀时加入1/10体积的NaAc（pH5.2，3M），有利 于充分沉淀 沉淀后应用70的乙醇洗涤，以除去盐离子等 晾干DNA，让乙醇充分挥发（不要过分干燥） 若长期储存建议使用TE缓冲液溶解 TE中的EDTA能螯和Mg2+或Mn2+离子，抑制DNase pH值为8.0，可防止DNA发生酸解 1.DNA中含有蛋白、 多糖、多酚类杂质2.DNA在溶解前，有 酒精残留，酒精抑 制后续酶解反应3.DNA中残留有金属 离子1.重新纯化DNA，去 除蛋白、多糖、多酚 等杂质2.重新沉淀DNA，让 酒精充分挥发3.增加70乙醇洗涤 的次数（2-3次）五、五
11、、DNADNA提取常见问题提取常见问题q问题一：DNA样品不纯，抑制后续酶解和PCR反应。原 因对 策1.材料不新鲜或反复冻 融2.未很好抑制内源核酸 酶的活性3.提取过程操作过于剧 烈，DNA被机械打断4.外源核酸酶污染5.反复冻融1.尽量取新鲜材料，低温保存材料避 免反复冻融2.液氮研磨或匀浆组织后，应在解冻 前加入裂解缓冲液3.在提取内源核酸酶含量丰富的材料 的DNA时，可增加裂解液中螯合剂 的含量4.细胞裂解后的后续操作应尽量轻柔5.所有试剂用无菌水配制，耗材经高 温灭菌6.将DNA分装保存于缓冲液中，避免 反复冻融q问题二：DNA降解对 策原 因五、五、DNADNA提取常见问题提取常
12、见问题1.实验材料不佳或量少2.破壁或裂解不充分3.沉淀不完全4.洗涤时DNA丢失1.尽量选用新鲜（幼嫩）的材 料2.动植物要匀浆研磨充分；G 菌、酵母裂解前先用生物酶 或机械方式破壁3.高温裂解时，时间适当延长 （对于动物细胞、细菌可增 加PK的用量）4.低温沉淀，延长沉淀时间5.加辅助物，促进沉淀6.洗涤时，最好用枪头将洗涤 液吸出，勿倾倒q问题三：DNA提取量少对 策原 因五、五、DNADNA提取常见问题提取常见问题1简要叙述酚氯仿抽提体系后出现的现 象及其成因。2.沉淀时为什么要用无水乙醇？基因工程教学网站： http:/210.32.200.206/gene六、问题与讨论六、问题与讨论
