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1、CFUCFU (Colony-Forming Units) 经 培 养 所 得 菌 簇 形 成 单 位 的 英 文 缩 写 。 cfu:colony formine unit,菌 落 形 成 单 位 ，将 稀 释 后 的 一 定 量 的 菌 液 通 过 浇 注 或 涂 布 的 方 法 ， 让 其 内 的 微 生 物 单 细 胞 一 一 分 散 在 琼脂 平 板 上 ， 待 培 养 后 ， 每 一 活 细 胞 就 形 成 一 个 菌 落 。 意 思 就 是 每 毫 升 菌 液 中 含 有 多 少 单 细 胞 ！传 统 上 就 叫 “个 ”。 但 是 ， 我 们 知 道 ， 一 个 菌 落 并 不
2、 一 定 是 一 个 细 菌 所 生 成 ， 也可 能 是 由 一 簇 细 菌 （ 一 个 细 菌 团 ） 所 生 成 ， 这 时 候 再 叫 “个 ”就 不 太 准 确 啦 ， 准 确 的叫 法 就 是 “菌 落 形 成 单 位 ”， 英 文 缩 写 “CFU”。 就 像 “公 斤 ”和 “千 克 ”， 只 是 叫法 不 同 ， 数 量 上 没 有 变 化 。 cfu 代 表 “colony forming units”。 cfu/mL 指 的 是 每 毫 升 样 品 中 含 有 的 细 菌 群落 总 数一 显微镜直接计数法（一）目的要求1明确血细胞计数板计数的原理。2掌握使用血细胞计数板进
3、行微生物计数的方法。（二） 基本原理显微镜直接计数法是将小量待测样品的悬浮液置于一种特别的具有确定面积和容积的载玻片上(又称计菌器)，于显微镜下直接计数的一种简便、快速、直观的方法。目前国内外常用的计菌器有：血细胞计数板、Peteroff-Hauser 计菌器以及 Hawksley 计菌器等，它们都可用于酵母、细菌、霉菌孢子等悬液的计数，基本原理相同。后两种计菌器由于盖上盖玻片后，总容积为 0.02mm3，而且盖玻片和载波片之间的距离只有 0.02mm，因此可用油浸物镜对细菌等较小的细胞进行观察和计数。除了用这些计菌器外，还有在显微镜下直接观察涂片面积与视野面积之比的估算法，此法一般用于牛乳的
4、细菌学检查。显微镜直接计数法的优点是直观、快速、操作简单。但此法的缺点是所测得的结果通常是死菌体和活菌体的总和。目前已有一些方法可以克服这一缺点，如结合活菌染色微室培养（短时间）以及加细胞分裂抑制剂等方法来达到只计数活菌体的目的。本实验以血球计数板为例进行显微镜直接计数。另外两种计菌器的使用方法可参看各厂商的说明书。用血细胞计数板在显微镜下直接计数是一种常用的微生物计数方法。该计数板是一块特制的载玻片，其上由四条槽构成三个平台；中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半，每一边的平台上各列有一个方格网，每个方格网共分为九个大方格，中间的大方格即为计数室。血细胞计数板构造如图 l5-1。计数室的刻度一般
5、有两种规格，一种是一个大方格分成 25个中方格，而每个中方格又分成 16 个小方格(图 152)；另一种是一个大方格分成 16 个中方格，而每个中方格又分成 25 个小方格，但无论是哪一种规格的计数板，每一个大方格中的小方格都是 400 个。每一个大方格边长为 lmm，则每一个大方格的面积为 lmm2，盖上盖玻片后，盖玻片与载玻片之间的高度为 0.lmm，所以计数室的容积为 0.lmm3(万分之一毫升)。计数时，通常数五个中方格的总菌数，然后求得每个中方格的平均值，再乘上 25 或 16，就得出一个大方格中的总菌数，然后再换算成 lml 菌液中的总菌数。设五个中方格中的总菌数为 A，菌液稀释倍
6、数为 B，如果是 25 个中方格的计数板，则1mL 菌液中的总菌数=A/525104B=50000AB（个）同理，如果是 16 个中方格的计数板，1mL 菌液中的总菌数=A/516104B=32000AB（个）（三）器材1菌种 酿酒酵母2仪器或其他用具 血细胞计数板，显微镜，盖玻片，无菌毛细滴管。（四）操作步骤l菌悬液制备以无菌生理盐水将酿酒酵母制成浓度适当的菌悬液。2镜检计数室在加样前，先对计数板的计数室进行镜检。若有污物，则需清洗，吹干后才能进行计数。3加样品将清洁干燥的血细胞计数板盖上盖玻片，再用无菌的毛细滴管将摇匀的酿酒酵母菌悬液由盖玻片边缘滴一小滴，让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自动进入
7、计数室，一般计数室均能充满菌液。取样时先要摇匀菌液；加样时计数室不可有气泡产生。4显微镜计数加样后静止 5min，然后将血细胞计数板置于显微镜载物台上，先用低倍镜找到计数室所在位置，然后换成高倍镜进行计数。调节显微镜光线的强弱适当，对于用反光镜采光的显微镜还要注意光线不要偏向一边，否则视野中不易舌清楚计数室方格线，或只见竖线或只见横线。在计数前若发现菌液太浓或太稀，需重新调节稀释度后再计数。一般样品稀释度要求每小格内约有 510 个菌体为宜。每个计数室选 5 个中格(可选 4 个角和中央的一个中格)中的菌体进行计数。位于格线上的菌体一般只数上方和右边线上的。如遇酵母出芽，芽体大小达到母细胞的一
8、半时，即作为两个菌体计数。计数一个样品要从两个计数室中计得的平均数值来计算样品的含菌量。5清洗血细胞计数板使用完毕后，将血细胞计数板在水龙头用水冲洗干净，切勿用硬物洗刷，洗完后自行晾干或用吹风机吹干。镜检，观察每小格内是否有残留菌体或其他沉淀物。若不干净，则必须重复洗涤至干净为止。（五）实验报告l结果将结果记录于下表中。A 表示五个中方格中的总菌数；B 表示菌液稀释倍数。 各中格中菌数 A B 二室平均值 菌数/ml1 2 3 4 5 第一室 第二室 （一）目的要求学习平板菌落计数的基本原理和方法。（二） 、基本原理平板菌落计数法是将待测样品经适当稀释之后，其中的微生物充分分散成单个细胞，取一
9、定量的稀释样液接种到平板上，经过培养，由每个单细胞生长繁殖而形成肉眼可见的菌落，即一个单菌落应代表原样品中的一个单细胞。统计菌落数，根据其稀释倍数和取样接种量即可换算出样品中的含菌数。但是，由于待测样品往往不易完全分散成单个细胞，所以，长成的一个单菌落也可来自样品中的 23 或更多个细胞。因此平板菌落计数的结果往往偏低。为了清楚地阐述平板菌落计数的结果，现在已倾向使用菌落形成单位(colony-forming units，cfu)而不以绝对菌落数来表示样品的活菌含量。平板菌落计数法虽然操作较繁，结果需要培养一段时间才能取得，而且测定结果易受多种因素的影响，但是，由于该计数方法的最大优点是可以获
10、得活菌的信息，所以被广泛用于生物制品检验(如活菌制剂)，以及食品、饮料和水(包括水源水)等的含菌指数或污染程度的检测。（三）器材1菌种 大肠杆菌菌悬液。2培养基 牛肉膏蛋白胨培养基。3仪器或其他用具 lm1 无菌吸管，无菌平皿，盛有 4.5ml 无菌水的试管，试管架，恒温培养箱等。（四）操作步骤l编号取无菌平皿 9 套，分别用记号笔标明 10-4、10-5、10-6。(稀释度)各 3 套。另取 6 支盛有4.5mL 无菌水的试管，依次标是 10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6。2稀释用 lmL 无菌吸管吸取 lmL 已充分混匀的大肠杆菌菌县液(待测样品)，精确地放 0.5
11、ml 至10-1 的试管中，此即为 10 倍稀释。将多余的菌液放回原菌液中。将 10-1 试管置试管振荡器上振荡，使菌液充分混匀。另取一支 lml 吸管插入 10 1 试管中来回吹吸菌悬液三次，进一步将菌体分散、混匀。吹吸菌液时不要太猛太快，吸时吸管伸人管底，吹时离开液面，以免将吸管中的过滤棉花浸湿或使试管内液体外溢。用此吸管吸取 10-1 菌液 lmL，精确地放 0.5mL 至 10-2 试管中，此即为 100 倍稀释。其余依次类推，整个过程如图 15-3 所示。放菌液时吸管尖不要碰到液面，即每一支吸管只能接触一个稀释度的菌悬液，否则稀释不精确，结果误差较大。3，取样用三支 1mL 无菌吸管
12、分别吸取 10-4、10-5 和 10-6。的稀释菌悬液各 lmL，对号放入编好号的无菌平皿中，每个平皿放 0.2mL。不要用 lmL 吸管每次只靠吸管尖部吸 0.2mL 稀释菌液放入平皿臼，这样容易加大同一稀释度几个重复平板间的操作误差。4倒平板尽快向上述盛有不同稀释度菌液的平皿中倒入融化后冷却至 45左右的牛肉膏蛋白胨培养基约 15 毫升/平皿，置水平位置迅速旋动平皿，使培养基与菌液混合均匀，而又不使培养基荡出平皿或溅到平皿盖上。由于细菌易吸附到玻璃器皿表面，所以菌液加入到培养皿后，应尽快倒入融化并于已冷却至 45左右的培养基，立即摇匀，否则细菌将不易分散或长成的菌落连在一起，影响计数。待
13、培养基凝固后，将平板倒置于 37恒温培养箱中培养。5计数培养 48h 后，取出培养平板，算出同一稀释度三个平板上的菌落平均数，并按下列公式进行计算，每毫升中菌落形成单位(cfu)=同一稀释度三次重复的平均菌落数稀释倍数5。一般选择每个平板上长有 30300 个菌落的稀释度计算每毫升的含菌量较为合适。同一稀释度的三个重复对照的菌落数不应相差很大，否则表示试验不精确。实际工作中同一稀释度重复对照平板不能少于三个，这样便于数据统计，减少误差。由 10-4、10-5、10-6 三个稀释度计算出的每毫升菌液中菌落形成单位数也不应相差太大。平板菌落计数法，所选择倒平板的稀释度是很重要的。一般以三个连续稀释
14、度中的第二个稀释度倒平板培养后所出现的平均菌落数在 50 个左右为好，否则要适当增加或减少稀释度加以调整。平板菌落计数法的操作除上述倾注倒平板的方式以外，还可以用涂布平板的方式进行。二者操作基本相同，所不同的是后者先将牛肉膏蛋白胨培养基融化后倒平板，待凝固后编号，并于 37左右的温箱中烘烤 30min，或在超静工作台上适当吹干，然后用无菌吸管吸取稀释好的菌液对号接种于不同稀释度编号的平板上，并尽快用无菌玻璃涂棒将菌液在平板上涂布均匀，平放于实验台上 2030min，使菌液渗入培养基表层内，然后倒置 37的恒温箱中培养 2448h。涂布平板用的菌悬液量一般以 0.1ml 较为适宜，如果过少菌液不易涂布开，过多则在涂布完后或在培养时菌液仍会在平板表面流动，不易形成单菌落。五、实验报告1结果2将培养后菌落计数结果填入下表2思考题(1)为什么融化后的培养基要冷却至 45左右才能倒平板?(2)要使平板菌落计数准确，需要掌握哪几个关键?为什么?(3)试比较平板菌落计数法和显微镜下直接计数法的优缺点及应用。(4)当你的平板上长出的菌落不是均匀分散的而是集中在一起时，你认为问题出在哪里?(5)用倒平板法和涂布法计数，其平板上长出的菌落有何不同?为什么要培养较长时间(48h)后观察结果?
