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1、实验二 质粒DNA电泳鉴定 生物技术制药实验 武汉大学药学院实验教学中心 生物技术实验室 主讲教师：刘永梅 刘永平 实验目的 u 掌握琼脂糖凝胶电泳分离DNA的原理； u 学习琼脂糖凝胶电泳的操作方法 实验原理及背景知识简介 电泳是分离和纯化DNA片段的最常用技术。如DNA制备、浓度测定、目的 DNA片段分离，重组子的酶切鉴定等均需要电泳完成。 根据分离的DNA大小及类型的不同，DNA电泳主要分两类： 聚丙烯酰胺凝胶电泳 适合分离1kb以下的片段，最高分辨率可达1bp，也用 于分离寡核苷酸，在引物的纯化中也常用此中凝胶进行纯化，也称PAGE纯 化。 琼脂糖凝胶电泳 可分离的DNA片段大小因胶浓
2、度的不同而异，胶浓度为 0.50.6%的凝胶可以分离的DNA片段范围为20bp50kb。电泳结果用 溴化乙锭（EB）染色后可直接在紫外下观察，并且可观察的DNA条带浓度 为纳克级，而且整个过程一般1小时即可完成。由于该方法操作的简便和快 速，在基因工程中较常用。 琼脂糖凝胶电泳 琼脂糖是一种线性多糖聚合物。 浓度越高，孔隙越小，其分辨能力就越强。 琼脂糖浓度琼脂糖浓度(%)(%)线型线型DNADNA分子的分离范围分子的分离范围(Kb)(Kb) 0.30.35 56060 0.60.61 12020 0.70.70.80.81010 0.90.90.50.57 7 1.21.20.90.96 6
3、 1.51.50.20.23 3 12.012.00.10.12 2 分离原理 DNA分子在碱性环境中带负电荷，在外加电场作用下向正极泳动 DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时，有电荷效应与分子筛效应。不同 的DNA，分子量大小及构型不同，电泳时的泳动率就不同，从而分 出不同的区带 琼脂糖凝胶电泳法分离DNA，是利用分子筛效应，迁移速度与分子 量的对数值成反比关系 可依据DNA分子的大小使其分离 DNA分子在高于等电 点的PH溶液中带负电 荷，在电场中向正极 移动。在一定电场强 度下，DNA分子的迁 移速度与相对分子质 量的对数成反比。 电泳原理 DNA电泳影响因素（一） u DNA分子大小 DNA
4、分子越大在胶中的摩擦阻力就越大，泳动 也越慢，迁移速率与线状DNA分子质量的对数值成反比。 u DNA分子构型 构型不同，电泳时受到的阻力不同，导致泳动 速率的不同。常规电泳中质粒DNA分子的3种构型泳动速率： 超螺旋最快、线状分子次之，开环分子最慢。 u 胶浓度 对于同种DNA分子胶浓度越高，电泳速率越慢。浓度 较稀的胶线性范围较宽，而浓的胶对小分子DNA片段呈现较好 的线性关系。所以常规实验中对于小片段DNA分子的分离采用 高浓度的胶分离（有时甚至用2的凝胶），而对于分离大片 段则用低浓度的凝胶。 DNA电泳影响因素（二） o电场强度 一般约为5V/cm。分辨率不高。在精确测定DNA分子大
5、小时 ，应降低电压至1V/cm。电场强度偏高，分离的线性范围变窄，也会大 量产热导致DNA片段的降解。选择合适电压，如对于大片段DNA的分离 可选择较低电压进行（在Southern杂交中的DNA电泳），避免托尾现象 的产生；而对于小分子DNA，由于其在凝胶中的快速扩散会导致条带模 糊，可选用相对较高的电压以缩短电泳时间。 o溴化乙锭 EB，具有扁平结构，能嵌入到DNA碱基对间，对线状分子与开 环分子影响较小而对超螺旋态的分子影响较大。当DNA分子中嵌入的EB 分子逐渐增多时，原来为负超螺旋状态的分子开始向共价闭合环状转变， 电泳迁移速度由快变慢；当嵌入的EB分子进一步增加时，DNA分子由共 价
6、闭合环状向正超螺旋状态转变，这时电泳迁移速率又由慢变快。这个临 界点的游离EB质量浓度为0.1g/ml0.5g/ml，即电泳时所加的浓 度。对于特殊电泳，消除此因素影响可采用电泳后染色。 o 电泳缓冲液 目前有3种缓冲液适用于天然双链DNA的 电泳：TAE、TBE和TPE，其组成及特点见表2.2。一 般常用的DNA电泳选用TAE较多，其电泳时间较快， 而且成本比较低，但是其缓冲容量较低，需经常更换电 泳液。 DNA电泳影响因素（三） 琼脂糖凝胶电泳中常用的缓冲液 Tris-硼酸（TBE） Tris-乙酸（TAE） Tris-磷酸（TPE） 电泳指示剂溴酚兰在碱性液体中呈紫兰色，一般与 蔗糖、甘
7、油或聚蔗糖400组成上样缓冲液。 作用： 增加样品比重，以确保DNA均匀沉入加样孔内。 形成肉眼可见的指示带，预测核酸电泳的速度和位置。 使样品呈色，使加样操作更方便。 上样缓冲液 溴化乙锭（EB） 是一种荧光染料，EB分子可嵌入核酸双链的碱基对之间，在紫 外线激发下，发出红色荧光。其荧光强度与DNA的含量成正比 。据此可粗略估计样品DNA浓度。 琼脂糖凝胶EB染色，肉眼可见核酸电泳带，其DNA量一般5ng 。 核酸染色剂 注意事项： EB是致癌物质，切勿用手接触，更不要污染环境。 实验材料及器材 提取的大肠杆菌质粒DNA 电泳仪，水平凝胶电泳槽和梳子及其制胶模块，电子天平，凝 胶成像系统，移
8、液器，枪头，三角瓶，点样板，微波炉等 琼脂糖，TAE电泳缓冲液， 载样缓冲液（Loading buffer ），EB存储液，电泳级琼脂糖粉，DNA分子量标准 微波炉 溶胶用 实验仪器 凝胶电泳仪 及电泳槽 凝胶成像 系统 实验准备工作 o 配制TAE电泳缓冲液（50储存液，pH约8.5： Tris碱 242g，57.1ml冰乙酸，37.2g Na2EDTA.2H2O，dd water 定容至1L） o 1000溴化乙锭储存液（0.5mg/ml：50mg溴化 乙锭溶于100mL dd water，4C避光储存） o 10加样缓冲液（20% Ficoll 400，0.1mol/L Na2EDTA
9、pH8.0，1.0% SDS，0.25%溴酚蓝 ）； o 1.5ml离心管、移液器吸头灭菌。 实验步骤（一）制胶 u（1）称取0.5g琼脂糖粉，放入三角瓶，加入50ml TAE电泳缓 冲液(1)，微波1min煮沸。50ml 制备两块小胶。（注意观察烧 瓶中的琼脂糖粉末，待完全熔化后停止微波炉） u（2）平衡凝胶槽，放好两侧挡板，调节好梳子与底板的距离（ 一般高出底板0.51mm）。 o（3）铺板：在溶解好的凝胶中加入终浓度为0.5ug/ml 的溴化 乙锭水溶液，轻轻混匀，待冷至50左右倒入凝胶槽，胶厚一般 为58mm。静置10-20min。 o（4）待胶彻底凝固后，去掉两侧挡板，将凝胶放入盛有
10、电泳液 的槽中（加样孔朝向负极端，DNA由负极向正极移动），使液面 高出凝胶23mm，小心拔出梳子。 实验步骤（二）点样 o（5）剪1片光面纸（或封口膜），将DNA样品与6加样缓 冲液5：1混合。若样品浓度较高，可加蒸馏水稀释。如3l 蒸馏水、1l 10加样缓冲液，再加入2l质粒DNA溶液 制成6l DNA样品。 o（6）将混合好的样品3-5 l加入凝胶的凹孔中，同时加入 1.5-3l DNA分子量标准物。加样时持移液器的手以肘部 固定在桌上，用另一只手扶住这只手的手腕，以减少移液 器的抖动。看到蓝色的样品吸管尖头伸进加样孔后（不能 伸得太深，以免穿破凝胶的底部）缓缓将蓝色的样品压入 加样孔中
11、。切不可使蓝色样品流到孔外。 实验步骤（三）电泳分离及结 果观察 o（7）根据电泳槽的长度把电泳仪的电压调至 170V(10V/cm)，注意正负电极的位置连接正确 。 o（8）打开电源开关，样品将形成一条蓝色的横带 向前移动。电泳将进行约30min。 o（9）据指示染料移动的位置，确定电泳是否终止 。当蓝色的溴酚蓝迁移到距凝胶边缘1cm时，关 闭电源。 o（10）将凝胶放紫外灯下观察并拍照，时间不宜 太长。 DNA电泳图谱 常用DNA分子量标准物样品电泳结果 注意事项 1 倒胶时把握好胶的温度，不要高于60 ，否则温度太高会使 制板变形；倾倒速度不能过快，避免气泡的产生。 2 胶一定要凝固好才能拔梳子，方向一定要竖直向上，不要弄坏 点样孔 3 点样时枪头下伸，点样孔内不能有气泡，缓冲液不要太多 4 EB有毒，操作时需带手套，切勿用手直接接触，更不能污染环 境，用过的胶勿乱扔 5 紫外线照射不要太久 思 考 o 影响本实验结果的因素有哪些？ o 画出电泳图谱，分析观察到的结果。 知识回顾知识回顾 Knowledge Knowledge ReviewReview
