SDS-PAGE电泳过程中常见问题以及解决方法

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1、SDSPAGE电泳过程中常见问题以及解决方法 几乎所有蛋白质电泳分析都在聚丙烯酰胺凝胶上进行,而所有条件 总要确保蛋白质解离成单个多肽亚基并进可能减少其相互间的聚集,最 常用的就是SDSPAGE电泳技术,关于大家在此过程中经常遇到的问题 进行一些讨论: Q:SDSPAGE电泳的基本原理? A:SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,是在聚丙烯酰胺凝胶系统中引进SDS(十 二烷基硫酸钠), SDS会与变性的多肽,并使蛋白带负电荷,由于多肽 结合SDS的量几乎总是与多肽的分子量成正比而与其序列无关,因此SDS 多肽复合物在丙稀酰胺凝胶电泳中的迁移率只与多肽的大小有关,在达 到饱和的状态下,每克多肽可与1.4g

2、去污剂结合。当分子量在15kDa到 200kDa之间时,蛋白质的迁移率和分子量的对数呈线性关系,符合下 式:logMW=K-bX,式中:MW为分子量,X为迁移率,k、b均为常数,若 将已知分子量的标准蛋白质的迁移率对分子量对数作图,可获得一条标 准曲线,未知蛋白质在相同条件下进行电泳,根据它的电泳迁移率即可 在标准曲线上求得分子量。 Q:配胶缓冲液系统对电泳的影响? A:在SDSPAGE不连续电泳中,制胶缓冲液使用的是TrisHCL缓冲系 统,浓缩胶是pH6.7,分离胶pH8.9;而电泳缓冲液使用的Tris甘氨酸 缓冲系统。在浓缩胶中,其pH环境呈弱酸性,因此甘氨酸解离很少,其 在电场的作用下

3、,泳动效率低;而Cl离子却很高,两者之间形成导电性 较低的区带,蛋白分子就介于二者之间泳动。由于导电性与电场强度成 反比,这一区带便形成了较高的电压剃度,压着蛋白质分子聚集到一 起,浓缩为一狭窄的区带。当样品进入分离胶后,由于胶中pH的增加, 呈碱性,甘氨酸大量解离,泳动速率增加,直接紧随氯离子之后,同时 由于分离胶孔径的缩小,在电场的作用下,蛋白分子根据其固有的带电 性和分子大小进行分离。所以,pH对整个反应体系的影响是至关重要 的,实验中在排除其他因素之后仍不能很好解决问题的情况,应首要考 虑该因素。 Q:样品如何处理? A:根据样品分离目的不同,主要有三种处理方法:还原SDS处理、非还

4、原SDS处理、带有烷基化作用的还原SDS处理。 1、还原SDS处理:在上样buffer中加入SDS和DTT(或巯基乙醇)后, 蛋白质构象被解离,电荷被中和,形成SDS与蛋白相结合的分子,在电 泳中,只根据分子量来分离。一般电泳均按这种方式处理,样品稀释适 当浓度,加入上样Buffer,离心,沸水煮5min,再离心加样。 2、带有烷基化作用的还原SDS处理:碘乙酸胺的烷基化作用可以很好的 并经久牢固的保护SH基团,得到较窄的谱带;另碘乙酸胺可捕集过量的 DTT,而防止银染时的纹理现象。100ul样品缓冲液中10ul 20的碘乙 酸胺,并在室温保温30min。 3、非还原SDS处理:生理体液、血清

5、、尿素等样品,一般只用1SDS沸 水中煮3min,未加还原剂,因而蛋白折叠未被破坏,不可作为测定分子 量来使用。 Q:SDS-PAGE电泳凝胶中各主要成分的作用? A:聚丙烯酰胺的作用:丙烯酰胺为蛋白质电泳提供载体,其凝固的好坏 直接关系到电泳成功与否,与促凝剂及环境密切相关; 制胶缓冲液:浓缩胶选择pH6.7,分离胶选择pH8.9,选择TrisHCl系 统,具体作用后面介绍; TEMED与AP:促凝作用,加速聚丙烯酰胺的凝固; 十二烷基硫酸钠(SDS):阳离子去污剂,作用有四:去蛋白质电荷、 解离蛋白质之间的氢键、取消蛋白分子内的疏水作用、去多肽折叠。 Q:提高SDS-PAGE电泳分辨率的途

6、径? A:1、聚丙烯酰胺的充分聚合,可提高凝胶的分辨率。建议做法:待凝 胶在室温凝固后,可在室温下放置一段时间使用。忌即配即用或4冰 箱放置,前者易导致凝固不充分,后者可导致SDS结晶。一般凝胶可在 室温下保存4天,SDS可水解聚丙烯酰胺。 2、一般常用的有氨基黑、考马斯亮蓝、银染色三种染料,不同染料又 各自不同的染色方法,具体可参照郭尧君编著的蛋白质电泳技术手 册P82-103。 Q:“微笑”(两边翘起中间凹下)形带原因? A:主要是由于凝胶的中间部分凝固不均匀所致,多出现于较厚的凝胶 中。 处理办法:待其充分凝固再作后续实验。 Q:“皱眉”(两边向下中间鼓起)形带原因? A:主要出现在蛋白

7、质垂直电泳槽中,一般是两板之间的底部间隙气泡 未排除干净。 处理办法:可在两板间加入适量缓冲液,以排除气泡。 Q:为什么带出现拖尾现象? A:主要是样品融解效果不佳或分离胶浓度过大引起的。 处理办法:加样前离心;选择适当的样品缓冲液,加适量样品促溶剂; 电泳缓冲液时间过长,重新配制;降低凝胶浓度。 Q:为什么带出现纹理现象? A:主要是样品不溶性颗粒引起的。 处理办法:加样前离心;加适量样品促溶剂。 Q:什么是“鬼带”,如何处理? A:“鬼带”就是在跑大分子构象复杂的蛋白质分子时,常会出现在泳 道顶端(有时在浓缩胶中)的一些大分子未知条带或加样孔底部有沉 淀,主要由于还原剂在加热的过程中被氧化

8、而失去活性,致使原来被解 离的蛋白质分子重新折叠结合和亚基重新缔合,聚合成大分子,其分子 量要比目标条带大,有时不能进入分离胶。但它却于目标条带有相同的 免疫学活性,在WB反应中可见其能与目标条带对应的抗体作用。 处理办法:在加热煮沸后,再添加适量的DTT或Beta巯基乙醇,以补充 不足的还原剂;或可加适量EDTA来阻止还原剂的氧化。 Q:为什么溴酚蓝不能起到指示作用? A:我们在实验中常会遇到溴酚蓝已跑出板底,但蛋白质却还未跑下来 的现象。主要与缓冲液和分离胶的浓度有关。 处理办法:更换正确pH值的Buffer;降低分离胶的浓度。 Q:为什么电泳的条带很粗? A:电泳中条带很粗是常见的事,主

9、要是未浓缩好的原因。 处理办法:适当增加浓缩胶的长度;保证浓缩胶贮液的pH正确 (6.7);适当降低电压; Q:为什么电泳电压很高而电流却很低呢? A:这种现象一般初学者易出现。比如电压50v以上,可电流却在5mA以 下。主要是由于电泳槽没有正确装配,电流未形成通路。包括:a.内外 槽装反;b.外槽液过少;c.电泳槽底部的绝缘体未去掉(比如倒胶用的 橡胶皮)。 处理办法:电泳槽正确装配即可。 Q:浓缩胶与分离胶断裂、板间有气泡对电泳有影响吗? A:这主要出现在初学者中,一般对电泳不会有太大的影响。前者主要 原因是拔梳子用力不均匀或过猛所致;后者是由于在解除制胶的夹子 后,板未压紧而致空气进入引起的。

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