种子实验手册.doc

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1、种子实验手册一、种子样品的抽取(1)四分法 将种子均匀地倒在光滑清洁的桌面上,略成正方形。把种子充分混拌均匀,然后将种子铺成正方形,大粒种子厚度不超过10cm,中粒种子厚度不超过5cm,小粒种子厚度不超过3cm,用分样板沿对角线将种子分成四个三角形,将对顶的两个三角形的种子装入容器中,取余下的两个对顶三角形种子两次混合,按前法继续分取,直至多于送检样品数量为止。二、种子生物学特性测定1、种子净度的测定目前,净度的分析主要以手工操作为主,常用仪器为手持放大镜、筛子和吹风机等。净度测定时,关键是准确地判断出纯净种子、废种子及夹杂物三种成分。具体方法是:将净度测定样品倒在玻璃板上或桌面上,仔细观察并

2、区分出纯净种子、废种子及夹杂物三种成分。并分别称重,将结果记录附表。分类的标准如下:纯净种子:完整的、没有受伤害的、发育正常的种子;发育不完全的种子和不能识别的空粒;虽已破口或发芽,但仍具有发芽能力的种子。带翅的种子中,凡加工时种翅容易脱落的,其纯净种子是指除去种翅的种子;凡加工时种翅不易脱落的,则不必除去,其纯净种子包括留在种子上的种翅。壳斗科的种子应把壳斗与种子分开,把壳斗归为夹杂物。废种子:能明显识别的空粒、腐坏粒、已萌芽因而显然丧失发芽能力的种子;严重损伤(超过原大小一半)的种子和无种皮的裸粒种子。夹杂物:不属于纯净种子的其它树种的种子;叶片、磷片、苞片、果皮、种翅、壳斗、种子碎片、土

3、块和其他杂质;昆虫的卵块、成虫、幼虫和蛹。如果原测定样品重减去纯净种子、废种子及夹杂物三种成分总重量其差距不超过附表规定时,即可计算净度,否则重做。表1 净度分析样品的总体及各个组成成分的称量精度测定样品重,g称量至小数位数1.0000以下41.0009.999310.0099.992100.0999.911000或1000以上0表2测定净度的容许误差测定样品最大容许误差5克以下0.025100.0511500.10511000.201011500.501512001.00大于2001.50表3 两次测定的平均数容许差距两次测定的平均数容许差距50%100%50%99.95100.000.00

4、0.040.1699.9099.940.050.090.2499.8599.890.100.140.3099.8099.840.150.190.3599.7599.790.200.240.3999.7099.740.250.290.4299.6599.690.300.340.4699.6099.640.350.390.4999.5599.590.400.440.5299.5099.540.450.490.5499.4099.490.500.590.5899.3099.390.600.690.6399.2099.290.700.790.6799.1099.190.800.890.7199.009

5、9.090.900.990.7598.7598.991.001.240.8198.5098.741.251.490.8998.2598.491.501.740.9798.0098.241.751.991.0497.7597.992.002.241.0997.5097.742.252.491.1597.2597.492.502.741.2097.0097.242.752.991.2696.5096.993.003.491.3396.0096.493.503.991.4195.5095.994.004.491.5095.0095.494.504.991.5794.0094.995.005.991.

6、6893.0093.996.006.991.8192.0092.997.007.991.9391.0091.998.008.992.0590.0090.999.009.992.1588.0089.9910.0011.992.3086.0087.9912.0013.992.4784.0085.9914.0015.992.6282.0083.9916.0017.992.7680.008.9918.0019.992.8878.0079.9920.0021.992.9976.0077.9922.0023.993.0974.0075.9924.0025.993.1872.0073.9926.0027.9

7、93.2670.0071.9928.0029.993.3365.0069.9930.0034.993.4460.0064.9935.0039.993.5550.0059.9940.0049.993.65计算方法一般进行净度的测定按下列公式计算:净度 =纯净种子重量/(纯净种子重量+夹杂物重量+异类种子重量) 100%2、果实解剖结构 将风干果实浸水12h后,使用单面刀片解剖,进行解剖结构观察。另将果皮在沸水中蒸沸约45 min以促其软化;将煮沸后的果皮与未处理的种皮分别置于2.5%戊二醛中固定,经系列丙酮脱水,转入乙酸异戊酷后,进行临界点干燥,喷金,在扫描电子显微镜下观察果皮结构和种皮表皮结构

8、特征,并进行记录和拍照。3、果实大小的测定 用游标卡尺分别测量果实的纵径和横径长度,其中以果实的两次垂直横径的平均值作为所测果实的横径。测定样品采用四分法抽取,每次测定数量为100粒。4、种子形态使用游标卡尺测量新鲜种子(即刚成熟新鲜采集的种子)的横轴、纵轴长度及种子厚度(单位均为cm),每组100粒,计算平均值,重复三次。5、种子千粒重采用四分法测量种子的千粒重,每次取种子100粒称重,重复8次。种子千粒重(g)=(MI+MZ+MS)*1/8*10(注:式中MI、MZ、MS为每次测量的100粒种子的重量,单位为g)。6、种子含水率检测取净种后待测的新鲜种子200粒称重后,放入85烘箱烘干,第

9、一天每隔4h取出迅速称重,以后几天每12h称重一次,直到种子重量恒定,三个重复,取三次重复的平均值(单位为g)计算新鲜种子含水率。7、种子种皮透性测定取净种后待测的新鲜种子,分为完整种子和破皮种子(夹破)两种处理,每种处理三个重复,每个重复50粒种子称重后放入室温下清水中浸泡,第一天每隔2h取出用滤纸吸干表面水分后迅速称重,以后几天每12h测定一次,直到种子吸水达到饱和,每种处理取三次重复的平均值(单位为g)计算完整种子和破皮种子的吸水速率。8、种子生活力检测取新鲜种子于50温水中浸泡48h后,纵向剖开,以不损伤胚而暴露胚为佳。再以0.5%的TTC染液在30的恒温箱中黑暗染色12h,检查胚和胚

10、乳的着色情况以检测种f的生活力,设置重复3次,每重复50粒。四唑染色法介绍:应用2,3,5-三苯基氯化(或溴化)四唑(2,3,5-triphenyl tetrazolium chloride of bromide)的无色溶液作为指示剂,这种指示剂被种子吸收,在种子组织内与活细胞的还原过程起反应,生成一种红色而稳定的不扩散物质,即三苯基甲肤(triphenyl formazan),染色的是活细胞,未染色的为死细胞。使用氯化(或溴化)四唑的水溶液,浓度随树种而略有不同,见表中的规定。如果所使用蒸馏水的pH值不在6.57.5范围之内,可将四唑溶于缓冲溶液。缓冲溶液的配制方法如下:溶液a-在1 000

11、ml水中溶解9.078g磷酸二氢钾(KH2PO4);溶液b-在1 000ml水中溶解11.876g磷酸氢二钠(Na2 H2PO4o2H2O),或9.472g磷酸氢二钠(Na2 H2PO4)。取溶液a 2份和溶液b 3份混合,配成缓冲溶液。在该缓冲溶液里溶解准确数量的四唑盐,以获得正确的浓度。例如,每100ml缓冲溶液中溶入1g四唑盐即得1%浓度的溶液。最好随配随用。剩余的溶液可在短期内贮于低温15的黑暗条件下。这种溶液可以在室温下保存几个月。取胚:剥去外种皮和内种皮,尽量不使胚乳受到损伤,剥去种皮的种子,先放入盛有清水或垫有湿沙布的器皿中,全部剥完后再放入四唑溶液中,使溶液淹没种胚,上浮者要压

12、沉。挑出空粒、腐坏粒和有病虫害的种粒,并计入附表中。染色:染色时放在黑暗处,保持温度在2530左右最为适宜。染色时间因树种而异,至少6小时。观察记载:到达规定所染色的时间之后倒出溶液,用清水冲洗种胚,立即将种胚放在垫湿沙布的器皿中,保持湿润,以备鉴定。 根据染色的部位、染色面积的大小,判断种子的生活力。并解剖种子,借助手持放大镜逐粒观察胚的染色情,记录附表中。9、种子抑制物的分析抑制物提取 分别称取在33一35条件下干燥至恒重的果皮、果肉、外种皮、中种皮和胚乳粉末(过lmm筛粉碎机粉碎)各2.5g于研钵中,用5ml80%甲醇研磨,将研磨液分别倒入50ml试管中,再各以80%甲醇清洗研钵3次,清

13、洗液与研磨液合并于同一试管中,最后分别以80%甲醇定容至50ml,振荡均匀。试管中的浸提液于4下密闭浸提24h,期间振荡4一5次。24h后取出试管,于44000rpm条件下离心15min,上清液分别倒入小烧杯中,沉淀再以80%甲醇定容至50ml,搅拌并振荡充分混合,于4下再次浸提,操作同第一次浸提,重复三次,分别合并三次浸提液,将装有浸提液的烧杯,放在35的气候箱中蒸发浓缩,待甲醇挥发干净后再以蒸馏水分别定容至5Oml,即得到种子各部分萌发抑制物的浸提液原液。生物学鉴定 将浸提液原液分别稀释至10%、25%、50%、75%、100%,以蒸馏水为对照,在12cm直径的培养皿中放2层滤纸,分别加入5ml不同部位的、不同浓度的浸提液浸透滤纸,每皿摆放50粒白菜种子做萌发试验,各重复3次。24h、48h分别统计发芽率,72h测量苗高与根长(单位cm)。(白菜籽置床前先在45一50水浴中温浸10min,不时搅拌。取白菜种子各25粒均匀摆放在滤纸中上部,培养皿放置时倾斜45“,(28士l)恒温黑暗培养。12h后统计发芽率(以幼根伸出长度大于种子直径为发芽标准),72h后测量苗高和幼根长。3次重复并进行差异显著性检验)。7

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