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1、红薯中果胶的提取及其含量测定李晓露 林旸 王海燕 张雪霞 张金绢 张丽 王健 王秀捧 微生物药物国家工程研究中心,华北制药集团新药研究开发有限责任公司,石家庄,050015摘要: 果胶为白色或浅黄色的粉末，能溶于水，但不溶于乙醇等有机溶剂。本文采用乙醇沉淀法对红薯中的果胶进行了提取试验，得到了成品果胶，并对所提取的果胶进行了含量测定。关键词：果胶；提取；含量测定 The Extraction of Pectin from Sweet Potato and the Determination of the ContentLi Xiao-lu, Lin Yang, Wang Hai-yan, Zh
2、ang Xue-xia, Zang Jin-juan，Zhang Li ,Wang Jian, Wang Xiu-peng(National Microbial Medicine Engineering and Research Center, New Drug Research & Development Company of NCPC，Shijazhuang 050015)Abstract The pectin is the power of white or yellow, it can dissolve in water, can not dissolve in ethanol et.
3、 The article extracts pectin from the sweet potato by the method of ethanol deposition, and gets pectin product , and determines the content of pectin. Key words pectin; extraction; determination of the Content.果胶是一种高分子聚合物，含有几百到一千个聚合体，其平均分子量在515 万之间，其基本化学组成为D - 半乳糖醛酸。果胶为白色或浅黄色的粉末，微甜且稍带酸味，无固定溶解度和熔点，能
4、溶于水，但不溶于乙醇等有机溶剂。果胶在食品工业中是制造果酱、果冻的稳定剂和软糖、酸奶等饮料的乳化剂, 在医药工业中可用来制造轻泻剂、止血剂、金属解毒剂、血浆代用品等。近年来，随着食品工业的不断发展，对果胶制品的需求不断增长。我国果胶生产起步较晚，生产量不大，远不能满足需求，每年均要从国外进口。我国红薯产区很广，资源丰富，但是大量的红薯未能得到充分利用。1，2本文采用乙醇沉淀法对红薯中的果胶进行了提取试验，得到了成品果胶，并对所提取的果胶进行了含量测定。3，4此工艺简单，设备投资少，提取操作方便，对环境污染小，成本低，便于放大生产。 仪器与试剂1.1 仪器旋转蒸发仪（Heidolph Germa
5、ny）；SHB-型循环水式多用真空泵（郑州长城科工贸公司）；紫外分光光度计（Vltrospec 2000 UV/Visible Spectrophotometer）；KQ-500B型超声波清洗器（昆山市超声仪器有限公司）； T-1000型电子天平（常熟双杰测试仪器厂）；SXJQ-1型调速搅拌器（郑州长城科工贸公司）。 作者简介 李晓露（1974-），女，硕士在读。联系电话：0311-85992995 E-mail：1.2 试剂新鲜红薯（华丰种业有限公司）；咔唑、蒽酮、硫酸、盐酸、乙醇，均为国产分析纯。 2 方法与结果2.1 原料预处理红薯用清水洗干净、搅拌机搅拌粉碎后，再用水淘洗23 次，红薯
6、渣挤干后置于烧杯中加入适量水，用水浴（85 ）加热510min。冷却后用流水漂洗、挤干。2.2 果胶的提取红薯渣加入适量水和一定浓度的盐酸，在95 加热30min ，过滤。滤液减压浓缩。浓缩液缓慢均匀地加入95 %乙醇中，充分搅拌，使果胶完全沉淀，静置23h 后过滤。滤饼用95 %乙醇洗涤23 次，所得果胶在4050 下真空干燥，粉碎，过80100 目筛得成品果胶。2.3 果胶含量测定2.3.1 咔唑乙醇试剂的配制精确称取0.15g咔唑，用95%的乙醇溶解，定容至100mL。2.3.2 标准曲线的绘制在6支20 mL比色管中，用移液管分别精确量取0，0.2，0.4，0.6，0.8，1mL半乳糖
7、醛酸标准溶液，补加蒸馏水至1mL，然后各加入6mL浓硫酸，摇匀，沸水浴中加热20min，取出冷却至室温，然后加入0.5mL咔唑乙醇液，摇匀，放置半小时，在530nm处测定其吸光度。以吸光值及对应的半乳糖醛酸浓度建立回归直线方程。测定结果如下图1所示（横轴x为半乳糖醛酸浓度，单位：ug/mL；纵轴y为吸光度）。图一 果胶含量标准曲线图1 果胶含量测定标准曲线2.3.3 样品的测定精确称取果胶样品9.7mg，用0.5mol/L的硫酸在沸水浴中水解，待样品水解完全，冷却至室温，定容至100 mL，得样品溶液。用移液管精确量取上述样品溶液1mL加入10mL比色管中，然后加入6mL浓硫酸，摇匀，沸水浴中
8、加热20min，取出冷却至室温，然后加入0.5mL咔唑乙醇液，摇匀，放置不同时间，在530nm处测定其吸光度，结果见下表1。表1 红薯中提取果胶含量测定结果表时间（h）2579吸光度0.1390.2130.2600.311果胶含量(%)36.756.368.782.22.4 多糖的测定（硫酸蒽酮法）2.4.1 蒽酮试剂的配制精确称取0.2g蒽酮，用浓硫酸溶解，定容至100mL。2.4.2 标准曲线绘制精确称取干燥至恒重的葡萄糖20.49mg，置100 mL容量瓶中，加水溶解并定容。依次用移液管精确量取0.0，0.2，0.4，0.6，0.8，1.0mL，置10mL试管中，各补水至2.0mL，然后
9、分别加入8mL蒽酮试剂，摇匀，沸水浴中加热3min，取出冷却至室温，以空白溶液做参比，在625nm波长处测定其吸光度，以葡糖糖浓度对吸光值绘制标准曲线，见下图2。图2 多糖含量测定标准曲线2.4.3 样品的测定用移液管精确量取样品溶液1mL，加入20mL刻度管中，补水至2.0mL，然后加入8mL蒽酮试剂，摇匀，沸水浴中加热5min，取出冷却至室温，在625nm处测定其吸光度，测定值为96%。3 结论从实验结果可以看出，采用乙醇沉淀法从红薯中提取果胶，所得果胶含量82.2%，多糖含量96%，符合工业生产的标准。此工艺简单，提取操作方便，对环境污染小，便于放大生产。REFERENCES1 CHEN
10、 S W,CHEN F M. Review on the status Quo of Pectin Resource Exploitation and Technological Research in ChinaJ. of Zhej Journal iang Forestry Science & Technology (浙江林业科技)1991,11(3):70-73.2 ZHOU J Z,ZHOU C S,XIE L W, et.Study on Extraction Conditions of Pectin from Shaddock PeelJ. Natural Product Rese
11、arch and Development(天然产物研究与开发)2006,18:483-486. 3 HUANG T B. The Way of Getting Pectin and How to Test itJ.Journal of Wenshan Teachers College(文山师范高等专科学校学报)Vol.17 No.4 Dec.2004.4 LI Y S,ZHANG Z G,LI X,et.Study on Extraction of PectinJ.Journal of China Three Corges University(三峡大学学报)Vol.24 No.6 Dec.2002.
