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1、Primer 5.0 搜索引物：1. Primer Length我常设置在1830bp，短了特异性不好，长了没有必要。当然有特殊要求的除外，如加个酶切位点什么的。2. PCR Product size最好是100500bp之间，小于100bp的PCR产物琼脂糖凝胶电泳出来，条带很模糊，不好看。至于上限 倒也不必要求苛刻。3.Search parameters还是选 Manual 吧，Search stringency 应选 High，GC 含量一般是4060%。其它参数默认就可以了。4.搜索出来的引物，按Rating排序，逐个送Oligo软件里评估。当然，搜索出的引物，其扩增产物很短，你可以不
2、选择它，或 是引物3端22个A或E或引物内部连续的G或C太多,或引物3端22个G或C，这样的引物应作为次选，没得选了就选它。对 于这样的引物，如果其它各项指标还可以，我喜欢在引物末端去掉一个不满意的或加上一个碱基，看看引物的评估参数有没有 变好点。Oligo 6.0评估引物：1. 在analyze 里,Duplex Formation不管是上游引物、下游引物还是上下游引物之间，The most stable 3-Dimer绝对值应小于 4.5kcal/mol, The most stable Dimer overall绝对值一般应小于多少kcal/mol跟PCR退火温度有关，我几次实验感觉在P
3、CR退 火温度在 65的时候，The most stable Dimer overall 6.7kcal/mol没有问题。2. Hairpin Formation根据黄金法则3. False priming sites: Primer的priming efficiency应该是错配地方的4倍左右，更多当然更好。4. 在PCR栏，个人感觉其所显示的optimal annealing temperature数值值得参考。在PCR摸索条件的时候，退火温度为其数值 加减2的范围就可以了。5.Internal stability很重要：我们希望引物的内部稳定性是中间高、两边低的弧形，最起码保证3端不要过
4、于稳定。下图1引物 3端过于稳定，很容易导致不适当扩增。aG参照黄金法则，这其实很好理解：把一滴水放到大海里，这滴水就会不停的扩散分 布，扩散的越厉害越稳定，所以aG绝对值越大结构越稳定。最后说一句，敢于尝试就会成功。第二贴科室工作很多，小医生了，没有办法，所以肯怕不能满足很多战友的要求qq聊或帮助设计），在此表示抱歉。就楼上的问 题我试着回答一下，不一定正确，供参考吧。1、两个评价系统不一样，个人感觉oligo评价引物好点，primer出来的引物，我一般按效率排序，再结合退火温度和引物 长度，选择引物到oligo测试。这是初步的选择，其实引物到了 oligo里，退火温度也不一样。2、 3 端
5、的二聚体应该避免，这个要看你的退火温度决定，一个50的退火温度肯定和 65对二聚体的影响不一样了，一般 来讲尽量控制在一4.5kcal/mol以下（个人观点，很多东西真得还是需要自己摸索）。3、个人感觉3端有A无A影响不大，3端有T的没有经验。有T是不是一定不行，个人感觉不见得。软件是评估，法则也 不是没有例外，不是1+1=2那么确定。4、错配和二聚体谁轻谁重，个人觉得“到致命的程度”谁都重要，我也说不好。我设计的时候，尽量两个都不得罪。5、GC含量并非不重要，它直接影响引物各端稳定性，3端来两个G或C,稳定性就上去了，粘在模板上很牢。所以我设计 的时候，尽量避免这样的情况出现。入门一一前面我
6、说过是我的大师兄把我领进门的，之后我就自己捣鼓。一开始严格按照引物设计的黄金法则来，primer搜出来 的引物oligo评估，我就这样一条引物一条引物地反复评估，不厌其烦，到处查阅资料，一做就是几个小时，幸运的是捣鼓出来 一两条符合标准的引物。提高有了成功的经验后，就继续做，当时我们实验室要定很多引物，我就有了练手的素材，这也很重要什么东西不是 练出来？！设计多了，问题也多了。有些引物按黄金法则来，行不通了，怎么办？1、我就把引物3端或5端延长或缩短一个或几个碱基，再反复评估2、有些引物还不行，我就把5端突变一个碱基，再反复评估3、再不行，我就放宽条件。放宽到什么样可以，不好说，自己摸索。有的
7、一对引物，其中一条错配很厉害，而另一条很可以， 在没有其它选择的情况下为什么不可以。有的人担心，这不一定跑的出来啊。对自己要有信心啊，原因有二：1.自己的引物谁有功夫帮你设计？所以啊，当时我就被“赶 鸭子上架了”，反反复复搜索评估的基础上，出来的应该是目前最好的；2、还有，我经常看国外文章的引物，有的评估起来表 面上差的要命，人家照用，结果还不是出来了。我就分析这样的引物，得出经验，胆子也大了。当然失败肯定是有一两次的。 当然，有人说我就设计那么一条引物，输不起。那只好说Sorry 了！ 总之，我的经验就是：立即上手，遇到问题再解决问题，不厌其烦，不就是个软件嘛,还征服不了？！在NCBI上搜索
8、到该基因，找到该基因的mRNA,在CDS选项中，找到编码区所在位置，在 下面的origin中，Copy该编码序列作为软件查询序列的候选对象。打开Primer Premier5，点击File-New-DNA sequence,出现输入序列窗口，Copy目的序列在 输入框内（选择As），此窗口内，序列也可以直接翻译成蛋白。点击Primer，进入引物窗口。此窗口可以链接到引物搜索”、引物编辑”以及搜索结果”选项，点击Search按钮，进入引 物搜索框，选择PCR primers”，Pairs”，设定搜索区域和引物长度和产物长度。在Search Parameters里面，可以设定相应参数。一般若无特殊
9、需要，参数选择默认即可，但产物长度 可以适当变化，因为100200bp的产物电泳跑得较散，所以可以选择300500bp。点击OK,软件即开始自动搜索引物，搜索完成后，会自动跳出结果窗口，搜索结果默认按 照评分（Rating）排序，点击其中任一个搜索结果，可以在“引物窗口中，显示出该引物的 综合情况，包括上游引物和下游引物的序列和位置，引物的各种信息等。对于引物的序列，可以简单查看一下，避免出现下列情况：3端不要以A结尾，最好是G或 者C，T也可以；3不要出现连续的3个碱基相连的情况，比如GGG或CCC，否则容易引起 错配。此窗口中需要着重查看的包括：Tm应该在5570度之间，GC%应该在45%
10、55% 间，上游引物和下游引物的Tm值最好不要相差太多，大概在2度以下较好。该窗口的最下 面列出了两条引物的二级结构信息，包括，发卡，二聚体，引物间交叉二聚体和错误引发位 置。若按钮显示为红色，表示存在该二级结构，点击该红色按钮，即可看到相应二级结构位 置图示。最理想的引物，应该都不存在这些二级结构，即这几个按钮都显示为“None ”为好。 但有时很难找到各个条件都满足的引物，所以要求可以适当放宽，比如引物存在错配的话， 可以就具体情况考察该错配的效率如何，是否会明显影响产物。对于引物具体详细的评价需 要借助于Oligo来完成，Oligo自身虽然带有引物搜索功能，但其搜索出的引物质量感觉不如
11、Primer5。在 Primer5 窗口中，若觉得某一对引物合适，可以在搜索结果窗口中，点击该引物，然后在 菜单栏，选择File-Print-Current pair，使用PDF虚拟打印机，即可转换为Pdf文档，里面有 该引物的详细信息。引物评价在Oligo软件界面，File菜单下，选择Open,定位到目的cDNA序列（在primer中，该序列 已经被保存为Seq文件），会跳出来两个窗口，分别为Internal Stability（Delta G）窗口和Tm 窗口。在Tm窗口中，点击最左下角的按钮，会出来引物定位对话框，输入候选的上游引物 序列位置（Primer5已经给出）即可，而引物长度可以
12、通过点击ChangeCurrent oligo length 来改变。定位后，点击Tm窗口的Upper按钮，确定上游引物，同样方法定位下游引物位置， 点击Lower按钮，确定下游引物。引物确定后，即可以充分利用Analyze菜单中各种强大的 引物分析功能了。Analyze中，第一项为Key info,点击Selected primers，会给出两条引物的概括性信息，其中 包括引物的Tm值，此值Oligo是采用nearest neighbor method计算，会比Primer5中引物的 Tm值略高，此窗口中还给出引物的Delta G和3端的Delta G。3端的Delta G过高，会在错 配位
13、点形成双链结构并引起DNA聚合反应，因此此项绝对值应该小一些，最好不要超过9。Analyze中第二项为Duplex Formation，即二聚体形成分析，可以选择上游引物或下游引物， 分析上游引物间二聚体形成情况和下游引物间的二聚体情况，还可以选择Upper/Lower，即 上下游引物之间的二聚体形成情况。引物二聚体是影响PCR反应异常的重要因素，因此应 该避免设计的引物存在二聚体,至少也要使设计的引物形成的二聚体是不稳定的，即其Delta G值应该偏低，一般不要使其超过4.5kcal/mol,结合碱基对不要超过3个。Oligo此项的分 析窗口中分别给出了 3端和整个引物的二聚体图示和Delt
14、a G值。Analyze中第三项为Hairpin Formation，即发夹结构分析。可以选择上游或者下游引物，同样， Delta G值不要超过4.5kcal/mol，碱基对不要超过3个。Analyze中第四项为Composition and Tm，会给出上游引物、下游引物和产物的各个碱基的组 成比例和Tm值。上下游引物的GC%需要控制在40%60%,而且上下游引物之间的GC% 不要相差太大。 Tm 值共有 3 个，分别采用三种方法计算出来，包括 nearest neighbor method、%GC method 和 2（A+T）+4（G + C）method,最后一种应该是 Primer5
15、 所采用的方法， Tm值可以控制在5070度之间。第五项为False Priming Sites,即错误引发位点，在Primer5中虽然也有False priming分析， 但不如oligo详细，并且oligo会给我正确引发效率和错误引发效率，一般的原则要使错误引 发效率在 100以下，当然有时候正确位点的引发效率很高的话，比如达到400500，错误 引发效率超过 100 幅度若不大的话，也可以接受。Analyze中，有参考价值的最后一项是PCR”，在此窗口中，是基于此对引物的PCR反应 Summary,并且给出了此反应的最佳退火温度，另外，提供了对于此对引物的简短评价。若 该引物有不利于PC
16、R反应的二级结构存在，并且Delta G值偏大的话，Oligo在最后的评价中 会注明，若没有注明此项，表明二级结构能值较小，基本可以接受。引物评价完毕后，可以选择File Print，打印为PDF文件保存，文件中将会包括所有Oligo 软件中已经打开的窗口所包括的信息，多达数页。因此，打印前最好关掉Tm窗口和Delta G 窗口，可以保留引物信息窗口、二级结构分析窗口（若存在可疑的异常的话）和PCR窗口。 引物确定后，对于上游和下游引物分别进行Blast分析，一般来说，多少都会找到一些其他 基因的同源序列，此时，可以对上游引物和下游引物的blast结果进行对比分析，只要没有 交叉的其他基因的同源序列就可以。有一个问题，引物设计原则里面常常强调，引物所对应模板序列的Tm值最好在72C左右， 但是软件里面Search出来的引物，很少有达到
