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1、载体构建的基本步骤Company Document number: WUUT-WUUY-WBBGB-BWYTT-1982GT载体构建、原理依赖于限制性核酸内切酶，DNA连接酶和其他修饰酶的作用，分别对目的 基因和载体DNA进行适当切割和修饰后，将二者连接在一起，再导入宿主细 胞，实现目的基因在宿主细胞内的正确表达。二、操作步骤摇菌（制作感受态细胞备用）取装有液体培养基的3ml试管两支（依情况而定），每管加40-1001菌种,过夜摇提质粒（也就是载体）依照提质粒试剂盒中的说明书操作（根据情况最后一步洗脱时可以多洗1-2 次）。反应所需试剂体积（单位：ul）质粒10所需内切酶反应缓冲液2所需限制性
2、内切核酸酶1H2O7将加好的EP管置于37C。保温l-2h。（依照提酶切的具体步骤操作；为了达到最佳酶切的效果，最好根据所选用的酶确定所需要的反应温度）4、电泳检测将酶切产物进行琼脂糖凝胶电泳，检测酶切是否成功。回收胶：琼脂糖与缓冲液一比一制胶，经过切胶回收目的产物，也有目的产物 纯化的功能； 检测胶：琼脂糖与缓冲液一比二制胶，为了检测目的条带与预期是否相符切胶回收与产物纯化是差不多的过程，所达到的目的是一样的：切胶回收也是种纯化过程，它能去除非目的片段，然后用回收试剂盒进行纯化，能将很不 纯的DNA溶液纯化；产物纯化是将较纯的DNA溶液进一步除去多余的杂质,用纯化试剂盒，你会发现纯化试剂盒和
3、回收试剂盒的步骤几乎一样。5、载体与目的基因连接如果电泳检测酶切成功的话，贝M子细将所需的片段切割下来，将胶体回收（依照胶回收试剂盒说明书操作）；之后将回收的片段和载体连接。置于温 箱，12-16C。，保温 8-16h6、转化（连接产物转化到感受态细胞中）依照转化具体操作步骤做感受态，将上述连接产物进行转化实验，涂板培养， 37C， 12-16h。7、单克隆检测（1）挑单克隆先将AMP从冰箱中取出，待融化后，在3ml装有LB液体培养基的试管中加入3|JL 的AMP,用枪头混匀；取mlEP管5支（依情况可以多挑几管），给每支管中加 500L上述培养液，然后用接种环（或黄枪头）挑单克隆，挑完后用枪
4、吹打;之后,将挑好的菌摇4-5小时,至混浊即可（2）单克隆检测以每管摇好的菌液为模板，以原有的引物进行PCR,然后将PCR产物跑电泳, 观察电泳图像中那几管的条带正确，将正确条带相对应管的菌液再抽取100口 L,加到3ml （有LB液体培养液，AMP+）试管中，过夜摇；第二天重摇，将 摇好的菌取lml于管中送测序，并保种。注：挑单克隆时，一定要挑单一圆润的菌落，有卫星斑的不挑。别忘记往培养基中加AMP。 用接种环挑菌后，要在酒精灯上反复灼烧，然后再进行下一次挑 菌。三、注意事项1 连接产物可短时间在-20C。保存，使用时可以取出进行后续实验；2 在细胞转化时，冰浴和热激要严格控制好时间；3 .连接反应是DNA重组过程中的关键步骤，其成败的重要参数之一就是温度，因此要控制好连接温度。4进行黏末端连接时，会产生一定数量的载体自身环化分子，导致转化菌中过高的假阳性克隆背景。针对这一问题，常采用牛小肠碱性磷酸酶（CIP）去掉载 体的5，-磷酸以抑制DNA片段的自身环化。
