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1、Four short words sum up what has lifted most successful individuals above the crowd: a little bit more.-author-date绿色荧光蛋白的基因克隆及表达生科院2011届毕业论文模板绿色荧光蛋白的基因克隆和表达的研究沈国军（指导老师：王友如）（湖北师范学院生命科学学院 湖北 黄石 435002）引言 随着分子生物学和基因工程技术的迅速发展和广泛应用, 人们根据自己的意愿有目的、有计划、有根据、有预见地将外源基因导入动物细胞内, 使外源基因进行表达、阐明基因表达的调控机理或者通过与染色体基因组
2、进行稳定整合，将生物性状传递给子代动物的研究方兴未艾1。 基因标记技术是近年来发展起来的分子生物学技术。荧光蛋白基因在标记基因方面由于具有独特的优点而引起了科学家的广泛关注，现已被普遍应用到分子生物学研究的各个方面。荧光蛋白是海洋生物体内的一类发光蛋白，分为绿色荧光蛋白、蓝色荧光蛋白、黄色荧光蛋白和红色荧光蛋白2。 2008 年10 月8 日，瑞典皇家科学院把今年的诺贝尔化学奖授予绿色荧光蛋白的发现者和推广者。他们分别为日本科学家下村修(Osamu Shimomura)、美国科学家马丁查尔菲(Martin Chalfie)和钱永健(Roger Tsien)3。1962 年，下村修等分离纯化了水
3、母中发光蛋白水母素，并发现一种绿色的荧光蛋白。1974 年，他们分离得到了这个蛋白，当时称绿色蛋白，以后称绿色荧光蛋白(GFP)4 。1994 年，查尔菲等首次在大肠杆菌细胞中表达了能发射绿色荧光的GFP，开创了GFP 研究与应用之先河5。 绿色荧光蛋白( green fluorescent p rotein, GFP)是238 个氨基酸组成的单体蛋白，其分子量为27 kDa。GFP 作为一种新的报告基因，与以往lacZ、CAT 等报告基因相比，有很多无可比拟的优越性: GFP 不具有种属依赖性，在多种原核和真核生物细胞中都表达；荧光强度高，稳定性高；不需要反应底物与其他辅助因子，受蓝光激发产
4、生绿色荧光,尤其适用于体内的即时检测；另外GFP 分子量小，易于融合，适用于多种转化方式，对受体无毒害,安全可靠；并且通过替换一些特殊氨基酸，可以使之产生不同颜色的光，从而适应不同的研究需要。正是由于GFP 检测具有高灵敏度，操作简单，无需使用同位素等优点，近年来广泛用于基因的表达与调控、蛋白质的定位、转移以及相互作用、信号传递、转染与转化，以及细胞的分离与纯化等研究领域 67 。采用GFP 作为标记基因，可直接收集转化细胞供实验，缩短了筛选时间、减少对细胞活性的影响并可作为活体标记，为研究发育的基因调控和分子机制提供了一种简洁有效的手段 8、9 。采用基因工程手段生产GFP 标记的方法，可建
5、立一种简便、快速的免疫诊断技术10 。质粒转化进入大肠杆菌（Escherichia coli）感受态细胞是分子克隆的关键步骤11，是基因克隆以及DNA文库构建等研究中频繁使用的一项重要的常规操作。一般实验室没有电穿孔技术所需要的特殊仪器，而利用氯化钙法将质粒重组入大肠杆菌细胞，操作方便、应用广泛.目前, 感受态细胞的制备主要采用CaCl2 法， 该方法操作简单、容易掌握、重复性好、转化率高， 可广泛应用于一般的实验室。其原理是Ca2+ 破坏细胞膜上的脂质阵列，并与膜上多聚羟基丁酸化合物、多聚无机磷酸形成复合物以利于外源DNA 的渗入12。 PCR 技术是Kary Mullis 在1985 年建
6、立起来的在细胞体外合成DNA 的一种方法。依DNA 半保留复制原理，利用DNA聚合酶依赖于DNA 模板的特性，在附加的两个引物与模板杂交之后，按碱基配对原则经酶促反应合成DNA 片段，包括模板变性、引物退火及用DNA聚合酶延伸两个引物之间DNA 的一定次数的重复循环，使包括在两个引物5端限定的特异性片段形成指数式积累。整个过程操作简单，可在短时间内在小管中获得大量的特意的DNA 拷贝，这一特点使PCR 技术很快被应用到了分子生物研究的广大领域13。大肠杆菌是第一个用于重组蛋白生产的宿主菌，它不仅具有遗传背景清楚、培养操作简单、转化和转导效率高、生长繁殖快、成本低廉、可以快速大规模地生产目的蛋白
7、等优点14。而且其表达外源基因产物的水平远高于其它基因表达系统，表达的目的蛋白量甚至能超过细菌中蛋白量的30 %，因此大肠杆菌是目前应用最广泛的蛋白质表达系统15。大肠杆菌表达系统是目前最常用的外源蛋白表达系统,大肠杆菌由于遗传背景清楚、易操作,以及有大量可供选择的克隆或表达载体,使之成为人们克隆表达外源基因的主要菌株16。 随着人们对原核和真核生物基因调控的了解，通过综合控制基因转录、翻译、蛋白质稳定性及向胞外分泌等诸多方面的因素，构建出了多种具有不同特点的表达载体和工程菌株，以满足表达不同性质、要求的目的基因的需要。在原核细胞中表达蛋白质的载体常用启动子有T7启动子、Trp启动子-色氨酸启
8、动子、Tac启动子、T7噬菌体中基因10 的启动子及Lac启动子等。Lac启动子受分解代谢系统活化蛋白和cAMP的正调控和阻遏物的负调控，当加入乳糖或某些类似物IPTG可与阻遏蛋白形成复合物，使阻遏蛋白构型改变，阻遏蛋白不再能与操纵基因结合，从而使结构基因表达。根据原核生物基因表达特点选着载体进行目的基因克隆，然后转入相应的菌种中表达目的蛋白质17。 研究绿色荧光蛋白在大肠杆菌体内的基因克隆和表达。通过质粒重组形成所需要的重组质粒pET-28a-GFP，将重组质粒导入大肠杆菌体内，通过酶切、PCR及用IPTG诱导检测是否在大肠杆菌体内诱导表达成功。根据电泳结果及荧光现象得出结论，重组质粒在大肠
9、杆菌体内成功诱导表达。1 材料与方法1.1 材料1.1.1 实验材料克隆菌E.coli DH-5a、表达菌BL-21为本实验室收藏菌种，质粒 pET-28a 和 pEGFP-N3，引物，限制性内切酶 Bam H1、 Not 购自大连宝生物工程有限公司。1.1.2 仪器设备SIM-f140 SANYO Ice Maker(made in Japan)Eppendof离心机5430R（Made in Germany）电泳仪 （DYY-12型，北京市六一仪器厂）电子天平 （AB204-N 型，Mettler-Toleda Group）台式离心机 （TGL-16C型，上海安亭科学仪器厂）控温磁力搅拌器
10、 （HJ-3型，江苏金坛市金南仪器厂）调温电热套 （KDM型，武汉精华科教仪器有限公司）pH计（雷磁PHS-3C型，上海精密科学仪器有限公司）冰箱 （BCD-208K/A NCJN型，青岛海尔股份有限公司）台式冷冻恒温振荡器 （THZ-C-1型，太仓市实验设备厂）手提紫外灯（WD-9403E型，北京市丰台区造甲街128号）生物洁净工作台 （BCM-1000型，苏州净化设备有限公司）电热恒温水温箱（SHW 21-420型，湖北省黄石市恒丰医疗器械有限公司）琼脂糖凝胶电泳电泳装置、凝胶成像分析系统、酒精灯、培养皿、移液枪、枪头 、接种环 、酒精棉球 、灭菌枪头 、Parafilm膜、离心管 1.1
11、.3 试剂及溶液 50TAE电泳缓冲母液（50 mL）Tris-碱12.1 g冰醋酸2.85 mL0.5 mol/L EDTA (pH 8.0)5 ml 6DNA电泳缓冲液溴酚蓝0.25 %蔗糖水溶液40%（W/V） 液体LB培养基（pH7.0）胰蛋白胨 10 g/L酵母提取物 5 g/LNaCl 10 g/L NaOH(1 mol/L) 1 mL/L 分装后于121 高压灭菌20 min。（LB固体培养基是在液体LB中加琼脂粉至1 %）；溶液 50 mL葡萄糖 50 mmol/LTris-Cl (pH 8.0) 25 mmol/L EDTA (pH 8.0) 10 mmol/L121高压灭菌
12、 15 min后置于04贮存；溶液 100 mLNaOH 0.2 mol/LSDS 1% (W/V)用时由母液2 mol/L NaOH、10%(W/V) SDS稀释现配；溶液 100 mLKOAc (5 mol/L) 60 mL冰乙酸 11.5 mLH2O 28.5 mL 121 高压灭菌 15 min后置于04 贮存；氯仿；琼脂糖；灭菌的去离子水；10酶切缓冲液；TaqDNA聚合酶；TaqDNA聚合酶缓冲液；灭菌的0.1 mol/L CaCl2标准相对分子质量的DNA；溴乙锭（EB）储存液 0.5 g/mL；LB/Kan（50 g/mL）固体培养基；IPTG配成浓度为400 mM水溶液，-2
13、0 保存备用；卡那霉素（Kan）配成浓度为100 ug/mL水溶液，-20 保存备用；70%乙醇：用新开装的乙醇和灭菌无离子水配成，放在04 ；无水乙醇（分析纯，武汉市中天化工有限公司）放在04 ；RNase 母液：将RNase 溶于10 mmol/L TrisCl(pH 7.5)、15 mmol/L NaCl 配成的试剂中，配成10 mg/mL的溶液，在100 加热15 min，使可能溶有的DNase失活，然后缓慢冷却至室温，分装成小份保存于20 ；1.2 方法1.2.1 重组质粒的构建图1重组质粒pET-28a-GFP的构建流程Fig.1 The formed technological
14、process of pET-28a-GFP recombined plasmid1.2.2 DH-5 和BL-21感受态细胞的制备1) 将04 保存的DH-5 和BL-21菌种分别接种在LB液体培养基中37 下250 r/min过夜培养16 h 。2) 将分别接种过夜菌：LB按1:50的比例接种于2 mL的LB液体培养基中，37 活化培养23 h至OD=0.30.5 。3) 取1.5 mL菌液转入EP管中，置于冰上10 min, 然后于4 下5000 r/min离心5 min。弃上清液，沉淀加入0.1 mL预冷的0.1 mol/L CaCl2缓和悬菌。冰上放置15-30 min后，4 下5000 r/min离心10 min。4) 弃上清液，沉淀用0.1 mL预冷的0.1 mol/L CaCl2（含15%甘油）缓和悬菌，放在20 冰箱内保存。1.2.3 感受态细胞的转化1) 取制备好的感受态细胞100 l，冰上解冻，均匀悬浮。2) 加入2 l酶连产物，轻轻混匀，冰上静置10-30 min。3) 42 水浴中热击70 sec后，冰上放置2 min。4) 加入200 l LB液体培养基，37 ，50-100 rpm振荡培养1 h。5) 取200 l悬浮细胞涂布在含合适抗生素的LB固体培养基上，用涂布器均匀涂布，平皿正放静置1-2 h后，封口膜封好平皿， 37 培养倒置12-
