激光共聚焦显微镜原理和操作资料

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1、激光扫描共焦显微镜技术,样品要求 原理 功能 在生物医学中的应用,激光扫描共焦显微镜技术及应用,The techniques and application of Confocal Laser Scanning Microscopy,激光扫描共焦显微镜技术,人眼分辨率: 0.2mm 光学显微镜分辨率:0.25mm 电子显微镜分辨率:0.2nm 共焦显微镜分辨率:0.18mm,二、 原理,激光扫描共焦显微镜技术,原理小结: Confocal 利用放置在光源后的照明针孔和放置在检测器前的探测针孔实现点照明和点探测,来自光源的光通过照明针孔发射出的光聚焦在样品焦平面的某个点上,该点所发射的荧光成像在

2、探测针孔上,该点以外的任何发射光均被探测针孔阻挡。照明针孔与探测针孔对被照射点或被探测点来说是共轭的,因此被探测点即共焦点,被探测点所在的平面即共焦平面。计算机以像点的方式将被探测点显示在计算机屏幕上,为了产生一幅完整的图像,由光路中的扫描系统在样品焦平面上扫描,从而产生一幅完整的共焦图像。只要载物台沿着Z轴上下移动,将样品新的一个层面移动到共焦平面上,样品的新层面又成像在显示器上,随着Z轴的不断移动,就可得到样品不同层面连续的光切图像 。,激光扫描共焦显微镜技术,激光扫描共焦显微镜技术,激光扫描共焦显微镜技术,激光扫描共焦显微镜技术,共焦显微镜与传统显微镜的区别 1.抑制图像的模糊,获得清晰

3、的图像,激光扫描共焦显微镜技术,共焦显微镜与传统显微镜的区别 2. 具有更高的轴向分辨率,并可获取连续光学切片,conventional,confocal,激光扫描共焦显微镜技术,共焦显微镜与传统显微镜的区别 3. 增加侧向分辨率,激光扫描共焦显微镜技术,共焦显微镜与传统显微镜的区别 4. 由于点对点扫描去除了杂散光的影响,激光扫描共焦显微镜技术,三. 激光扫描共焦显微镜的设计特点: 1.点照明 2.具有照明pinhole和探测pinhole 3.照明pinhole和探测pinhole共轭(共焦), 共焦点即被探测点,被探测点所在的平面为共焦平面 4.具有扫描系统 逐点扫描成像 5.具有多个(

4、四个) 荧光通道,可同时探测多个被标记物,激光扫描共焦显微镜技术,技术指标(Leica TCS SP2) : 1. xy分辨率比传统显微镜小1.4x 传统显微镜: Rxy=0.61/NA (0.25 m ) Confocal: Rxy=0.4/NA(0.18 m ) 2. 样品的最大厚度: 取决于: 物镜的NA、物镜的工作距离 激光的穿透力、样品的透明度 Z轴的最大移动范围(166m、Z-wide) 3. 样品的最小光切厚度: (载物台最小移动距离为40nm) 取决于: 物镜的NA、针孔大小 Z轴的最小移动步距: 40nm Z轴的分辨率: 0.35 m,激光扫描共焦显微镜技术,4. 激光器 A

5、r激光器: 458nm, 476nm, 488nm, 514nm GreNe : 543nm; HeNe: 633nm Ar激光器(UV): 361nm 激光器的特点: 1) 方向性好: 激光基本延直线传播 2) 单色性好 :=10-8nm 3) 高亮度: 激光方向性好, 其在空间上的能量分布是高度 集中的。 4) 偏振性: 激光为平面偏振光, 光纤耦合,激光扫描共焦显微镜技术,5. 四个荧光通道, 一个透射光通道 即除了可同时采集多标记荧光图像外 还可以同时采集透射光图像,但透射光 图像为非共焦图像。,激光扫描共焦显微镜技术,6.扫描速度: slow 220lines/s 512512 2-

6、3秒 slow2 440lines/s(2:双向扫描) medium 450lines/s 512512 1.7秒 medium2 900lines/s fast 1000lines/s 512512 0.7秒 128128 0.2秒 fast2 2000lines/s 7. 扫描密度: 6464 128128 512512 10241024 20482048,激光扫描共焦显微镜 技术的应用,The application of Confocal Laser Scanning Microscopy,激光扫描共焦显微镜应用,功能. 1.多荧光标记样品的高清晰度、高分辨率图像采集 2.无损伤、连续

7、光学切片,显微“CT” 3.真正的三维重组 4.假三维图的显示 5.可沿Z轴(xy平面)和Y轴(xz平面)方向进行光切 6.定量分析 7.时间序列扫描: xyt 、xyzt 和 xt 扫描 8.图像处理 9. 旋转扫描 10.感兴趣区域扫描 11.光谱扫描,激光扫描共焦显微镜应用,应用 定位、定量 三维重组 动态测量 活细胞或组织内游离Ca2+分布和浓度的变化 测量 (Mg2+ 、Zn+ 、Na+ 、K+) 自由基的检测 药物进入细胞的动态过程、定位分布及定量 蛋白质的转位,激光扫描共焦显微镜应用,活细胞内H+浓度( pH值)的测量 线粒体膜电位的测量 荧光漂白恢复(FRAP)的测量 笼锁解笼

8、锁的测量 荧光能量共振转移(FRET)的测量 其他应用,激光扫描共焦显微镜应用,一、定位、定量 免疫荧光标记(单标、双标或三 标)的定位、定量:如:细胞膜受体或抗原的分布, 微丝、微管的分布、 两种或三种蛋 白的共存与共定位、蛋白与细胞器的 共定位、核转录因子转位和干细胞的 增值、分化 细胞凋亡: AnnexinV-fitc + PI 末端原位杂交-fitc + PI 荧光原位杂交: 染色体基因定位,激光扫描共焦显微镜应用,定位、定量研究中常用荧光探针 1.Amine-Reactive Probes 与抗体耦联、与配体耦联、与肽耦联、与人工合成的寡聚核苷酸耦联的探针,可用于免疫组化、荧光原位杂

9、交、受体标记等 Green Red Fura-red FITC 494/518 TRITC 544/572 Cy5 650/690 (异硫氰基荧光素) (四甲基异硫氰基罗丹明) Alexa Fluor 488 488/530 PE 565/578 (藻红蛋白) Texas Red 595/615 (德州红) Cy3 558/568 BODIPY FL 503/512 BODIPY TMR 543/569 BODIPY TR 592/618,激光扫描共焦显微镜应用,1)细胞表面抗原、胞内某种蛋白 免役荧光标记: 与抗体耦联, 直标: 一抗+荧光探针 间标: 二抗+荧光探针 如: 微管蛋白tubl

10、in ( 抗 tublin抗体+荧光探针) 肌动蛋白actin ( Palloidine+荧光探针) 2)细胞膜表面受体 配体+荧光探针 如: nAchR、mAchR、多巴胺受体(D1,D2) 标记 Gm1: 霍乱毒素受体 霍乱毒素+FITC,激光扫描共焦显微镜应用,2.标记细胞器荧光探针 1)线粒体 Mitochondria Rodamin 123 505/534 ,可染活细胞,阳离子, 可检 测线粒体膜电位, 且在多数细胞中停留 时间短 JC1 线粒体膜电位低时为单体 490/527 发绿光 线粒体膜电位高时为多聚体 490/590 发红光 可标记活细胞线粒体,且为检测线粒体膜电位最 佳探

11、针 Mitotracker Green FM 490/516, 染活细胞或固定细胞 , 稳定不漏出 Mitotracker Orange CMTMRos 551/576, (氧化型) Mitotracker Orange 还原型, 只能染活细胞,激光扫描共焦显微镜应用,2)溶酶体 Lysosome 中性红 541/640: 微偏碱性, 可标记溶酶体等酸性器官 为非特异性 AO : LysoTracker Green DND-26 504/511, 染活细胞 LysoTracker Blue LysoTracker Red 3)内质网 Endoplasmic Reticulum DiOC6 48

12、4/500: 非特异性, 较高浓度标记内质网, 较低浓度标记线粒体 4)高尔基体 Golgi apparatus NBD C6-ceramie 466/536, 可染活或死细胞,激光扫描共焦显微镜应用,细胞器的单克隆抗体 5)细胞核 PI propidium iodide 536/617 DNA/RNA 死细胞 碘化丙啶 EB ethidium bromide 518/617 DNA/RNA 死细胞 Hochest 33342 352/461 DNA A-T 活细胞 Hochest 33258 352/461 DNA A-T 活细胞 DAPI 358/461 DNA A-T 半通透细胞 Chr

13、omomycin A3 450/470 DNA G-C AO 500/526 DNA 活细胞 560/650 RNA TOTO-1 514/533 DNA 死细胞 SYTO1116 2024 488/ 520 活细胞 SYTO1116 2024 521/ 556 活细胞 SYTO 17 621/634 活细胞,3. GFP 绿色荧光蛋白 GFP的的发现:60年代,Shimomura等首先从水母中分离出一种水母发光蛋白(aequoren),该蛋白与钙和肠腔素结合后可产生蓝色荧光。然而水母整体几提取的颗粒都呈绿色,后经证实在水母体内还存在另外一种发光蛋白即绿色荧光蛋白 GFP, 后经研究表明,在水

14、母体内Ca2+和肠腔素与水母发光蛋白结合后,水母发光蛋白产生蓝色荧光,GFP在蓝光的激发下,产生绿色荧光 。 将外源基因与GFP DNA 相连, GFP可作为外源基因的报告基因实时监测外源基因的表达.,激光扫描共焦显微镜应用,激光扫描共焦显微镜应用,GFP主要应用: 对活细胞中的蛋白质进行准确定位及动态观察 可实时原位跟踪特定蛋白在细胞生长、分裂、分化过程中或外界刺激因子的作用下的时空表达, 如某种转录因子的核转位、蛋白激酶C的膜转位等。 GFP基因与分泌蛋白基因连接后转染细胞, 可动态观察 该分泌蛋白分泌到细胞外的过程 GFP基因与定位于某一细胞器特殊蛋白基因相连,就能显 示活细胞中细胞核、

15、内质网、高尔基体、线粒体等细胞器的结构及病理过程 可用于观察分子的运动(FRAP) 蛋白之间的相互作用(FRET),激光扫描共焦显微镜应用,三.动态测量 Physiology:细胞内离子动态变化测量 1).游离Ca2+测量 检测游离Ca2+变化荧光探针的原理:这类探针多为Ca2+螯合剂,不与Ca2+结合时不发荧光,通常也不能进入细胞膜,只有与乙酰甲酯AM相连方可进入细胞内,被细胞内酯酶水解后并与胞内游离钙结合后发出荧光。Kd值为Ca2+解离常数,表明检测Ca2+浓度的范围:0.1xKd-10xkd, Kd和很多因素有关,如pH、 Mg2+、与蛋白的结合、温度等。细胞内生理Ca2+浓度值(10-100n M),细胞内Ca2+超载浓度值(基础Ca2+浓度的10倍左右),荧光探针 激发波长 发射波长 Kd FLuo3-AM, K+, dextran 506nm 525nm 390nM Fluo4 506nm 525nm Calcium Green-1 507nm 530nm 190nM Calcium Green-2 5

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