动脉血压的调节与急性失血性休克病理生理学

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1、动脉血压的调节与 急性失血性休克,张大伟 病理生理学教研室 Email: ,一、实验目的,学习动脉血压的直接描记方法 观察神经体液因素对动脉血压的影响 掌握急性失血性休克模型复制方法 观察休克发展过程中机体的变化 分析讨论急性失血性休克发病机制 设计抢救方案并了解血管活性药物的药理作用,二、实验原理,动脉血压的定义: 动脉血管内的血液对于单位面积血管管壁产生的压力。,二、实验原理,影响动脉血压的因素: 心脏每搏输出量 心率 外周阻力 主动脉与大动脉的顺应性 循环血量和血管系统的比例,二、实验原理,动脉血压是心血管系统活动的的反映,影响心血管系统的神经与体液因素 交感神经 迷走神经 交感缩血管神

2、经 肾上腺素 去甲肾上腺素,二、实验原理,减压反射是神经调节主要方式:,减压反射的构成 感受器:颈动脉窦与主动脉弓 传入神经:减压神经与迷走神经 神经中枢:延髓 传出神经:交感神经与迷走神经 效应器:心肌细胞膜上的受体,二、实验原理,休克(shock)的定义: 各种强烈的致病因子作用于机体引起的急性循环衰竭,其特点是微循环障碍、重要器官灌流不足和细胞功能代谢障碍,由此引起的全身危重的病理过程。,休克(shock)的分期:,一期:缺血性缺氧期 Ischemic anoxia phase 二期:淤血性缺氧期 Stagnant anoxia phase 三期:微循环衰竭期 Microcirculat

3、ion failure phase,二、实验原理,休克的防治原则: 快速输血并且大量补液,快速扩充血容量。 在快速扩充血容量的基础上,选择性的运用血管活性药物。,二、实验原理,雄性成年家兔(1.8-2.5kg),三、实验对象,四、实验药品,37 台氏液 0.3% 肝素生理盐水 20% 乌拉坦溶液 1%00 去甲肾上腺素 654-2,兔实验台 动脉插管 恒温水浴箱 压力换能器 微循环灌流盒 显微镜 哺乳动物手术器械一套 刺激电极 BL-410生物信号采集系统,五、实验器材,家兔口唇颜色的变化 家兔动脉血压的变化 家兔小肠肠系膜微循环变化,六、观察项目,1. 一般准备操作,七、实验步骤,2. 颈部

4、手术操作,4. 腹部手术操作,5. 复制休克模型,3. 动脉血压观测项目,6. 抢救,1. 一般准备操作,抓取,1. 一般准备操作,抓取,2. 颈部手术操作,切开皮肤,分离气管,气管插管,2. 颈部手术操作,切开皮肤,分离气管,动脉插管,2. 颈部手术操作,切开皮肤,分离气管,分离组织与肌肉,气管插管,颈总动脉,分离,正常动脉血压曲线,2. 颈部手术操作,切开皮肤,分离气管,分离组织与肌肉,气管插管,颈总动脉,分离,2. 颈部手术操作,分离另一侧的减压神经与迷走神经和颈总动脉 分离注意原则: 先神经后血管,先细后粗 先小后大,3. 观测项目,观察正常血压 快速牵拉颈总动脉 插管侧远心端结扎线

5、持续牵拉颈总动脉 插管侧远心端结扎线 夹闭另一侧颈总动脉10-15 S 将减压神经双重结扎并从中间剪断刺激中枢端 将交感神经双重结扎并从中间剪断刺激外周端 从颈外静脉注入0.2-0.3mlSH去甲肾上腺素,腹部切口,4. 腹部手术操作,固定肠系膜,腹部切口,4. 腹部手术操作,5. 复制休克模型,少量放血(10% ),休克早期微循环改变镜下视频,少量放血(10%) 观察,5. 复制休克模型,休克晚期微循环改变镜下视频,少量放血(10% ) 观察 大量放血(20%) 观察,5. 复制休克模型,6. 抢救,各组根据观察到的微循环的情况判断休克的分期,并设计抢救方案,同时选择性运用两种血管活性药物。 抢救成功以后将家兔用气管夹闭方法进行处死。,麻醉 动脉插管与分离神经 观测项目中间要恢复正常值 肠系膜的固定 分工协作培养团队精神,八、注意事项,实验讨论,1.家兔在观测项目中动脉血压有何变化并分析其机制?,2.家兔发生休克过程中肠系膜微循环有何变化并分析其机制?,九、实验报告,实验目的 实验原理 实验对象 实验药品与器材 观察项目 实验步骤,结果分析,珍惜每一天, 从现在开始!,再见,E-mail:,

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