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1、Trizol法使用步骤 一、分离纯化的基本原理一、分离纯化的基本原理 研究基因的表达和调控时常常要从组织和细胞中分离和纯化 RNA。RNA质量的高低常常影响cDNA库，RT-PCR和Northern Blot等分子 生物学实验的成败。Trizol是一种新型总RNA抽提试剂，内含异硫氰酸 胍等物质，能迅速破碎细胞，抑制细胞释放出的核酸酶。 二、用户需自备的试剂和材料二、用户需自备的试剂和材料 无水乙醇、氯仿、Glycogen（可能需要）、 1.5ml Eppendorf管 （RNase-free）、 Tips（RNase-free） 三、准备工作三、准备工作 RNase酶非常稳定，是导致RNA降
2、解最主要的物质。它在一些极端的 条件可以暂时失活，但限制因素去除后有迅速复性。用常规的高温高 压蒸气灭菌方法和蛋白抑制剂都不能是RNase完全失活。它广泛存在于 人的皮肤上，因此，在与RNA制备有关的分子生物学实验时，必须戴手 套。 RNase的又一污染源是取液器，根据取液器制造商的要求对取液器进行 处理。一般情况下采用用DEPC配制的70%乙醇擦洗取液器的内部和外部， 基本达到要求。取RNase-free的物品时必须戴手套。 1 1、 料制品的处理料制品的处理 尽可能使用无菌，一次性塑料制品，已标明RNase-Free 的塑料制 品，如没有开封使用过通常没有必要再次处理。对于国产塑料制品，
3、原则上都必须处理方可使用。处理步骤如下： 1）在玻璃烧杯中注入去离子水，加入DEPC使DEPC的终浓度为0.1%。注 意：DEPC为剧毒物，活性很强，小心在通风柜中使用。 2）处理的塑料制品放入一个可以高温灭菌的容器中，注入DEPC水溶液， 使塑料制品的所有部分都浸泡到溶液中。 3）在通风柜中室温处理过夜。 4）将DEPC水溶液小心倒到废液瓶中，用铝箔封住含已DEPC水处理过的 塑料制品的烧杯，高温高压蒸气灭菌至少30分钟。 5）烘箱用合适的温度烘拷至干燥。置于干净处备用。 2 2、 璃玻和金属物品璃玻和金属物品 250C烘烤3小时以上。 四、从组织中提取总四、从组织中提取总RNARNA 1)
4、液氮研磨：组织块直接放入研钵中，加入少量液氮，迅速研磨，待 组织变软，再加少量液氮，再研磨，如此三次，按50-100mg组织/ml Trizol加入Trizol，转入离心管进行第2步操作。 2) 匀浆：组织样品按50-100mg/mlTrizol 加入Trizol。另外，组织体 积不能超过Trizol体积的10%，否则匀浆效果会不好，用电动匀浆器充 分匀浆约需1-2分钟。 五、从细胞中提取总五、从细胞中提取总RNARNA 1) 培养贴壁细胞：不须消化，可直接用Trizol进行消化、裂解，Trizol体积按10cm2/ml比例加入。 2) 悬浮细胞可直接收集、裂解，每1ml Trizol可裂解5
5、106动物、植 物或酵母细胞，或107细菌细胞。 六、操作步骤六、操作步骤 1、细胞或组织加Trizol后，室温放置5min，使其充分裂解。注：此时 可放入-70长期保持。 2、12,000rpm 离心5min，弃沉淀。 3、按200ul氯仿/ml Trizol加入氯仿，振荡混匀后室温放置15min。注： 禁用漩涡振荡器，以免基因组DNA断裂。 4、4 12,000g离心15min。 5、吸取上层水相，至另一离心管中。注：千万不要吸取中间界面；若 同时提取DNA和蛋白质，则保留下层酚相存于4冰箱,若只提RNA，则 弃下层酚相。 6、按0.5ml异丙醇/ml Trizol 加入异丙醇混匀，室温放
6、置5-10min。 7、4 12,000g离心10min，弃上清，RNA沉于管底。 8、按1ml 75%乙醇/ml Trizol加入75%乙醇，温和振荡离心管，悬浮沉 淀。 9、 4 8,000g离心5min，尽量弃上清。 10、室温晾干或真空干燥5-10min。 注：RNA样品不要过于干燥，否则 很难溶解。 11、可用50ul H2O，TE buffer或0.5%SDS溶解RNA样品，55-60,5- 10min。注：H2O、TE或0.5%SDS均须用DEPC处理并高压。 12、测 O.D 值定量 RNA 浓度。注：此方法提取 RNA A260/A280值在 1.6-1.8 之间；产率估计：
7、组织标本：（ug RNA/mg 组织）1-10ug，培养细胞（ug RNA/106 Cell）：5-15ug。 注：组织或细胞量过少，可酌情减少 Trizol 用量；组织或细胞用量过 多，会引起 DNA 对 RNA 的污染； 高蛋白、脂肪或多糖类组织，肌肉组织或块状植物组织等，组织匀浆 或液氮研磨后须 4 12,000g 离心 10min 去掉不溶物，再进行下面操 作，若顶层有脂肪物，则也须去掉；热天提 RNA，带手套是必须的，手是 RNase 的主要来源；组织块用液氮研磨，效果最好，若没有液氮或电动匀浆器，可用手动 匀浆器代替，此时组织块不宜过大，且需先用眼科剪刀将组织碱碱剪 碎，然后再充分
8、研磨。 6.1.2.1 肝脏、肠道、肌肉总肝脏、肠道、肌肉总 RNA 提取方法提取方法使用已高温蒸汽灭菌的手术刀和镊子从鱼的腹部解剖开，从中取出完整的肝脏、肠、肌肉等组织，置于离心管后立即放入液氮中；组织在液氮下研磨成粉，取少量至加有 1mLTrizol 的 1.5ml 离心管中，充分混合后于 4，12,000rpm 离心 15min；取上清移至新 1.5ml 离心管中，加入 200ul 氯仿，剧烈震荡直至呈乳白色，于4，12,000rpm 离心 15min；取上清移至新 1.5ml 离心管中，加入 500ul 异丙醇，轻轻颠倒 10 次，冰上放置20mins，于 4，12,000rpm 离心
9、 15min；弃上清，加入 1ml75%乙醇（用 DEPC 水现配现用） ，于 4，12000rpm 离心5min，重复此步骤一次；弃上清后，室温干燥 5-7mins；加入适量（20-30ul）的 DEPC 水溶解沉淀 65溶解，-20（最好-80）保存，检测 RNA 浓度，并电泳检测。6.1.2.2 RNA 浓度测定和电泳检测浓度测定和电泳检测取 2ul 提取好的 RNA 溶液，于 Nanodrop 2000 Spectrophptpmeter 测定 RNA 浓度及 A260/A280 的相对吸光度，纯净 RNA 的 A260/A280 应在 1.8-2.2 之间。电泳检测：1%琼脂糖，1A
10、TE 缓冲液，90V 电泳 30min，凝胶成像系统观察，分析结果。 6.1.2.3 肝脏、肌肉、肠道样品肝脏、肌肉、肠道样品 cDNA 的合成的合成反应按照 TaKaRa 公司的 PrimeScript RT reagent Kit With gDNA Eraser（Perfect Real Time) 反转录试剂盒说明书进行，合成 cDNA 模板。基因组 DNA 的除去反应，在 PCR 管中配置如下缓冲液。 试剂用量5gDNA Eraser Buffer2.0 l gDNA Eraser1.0 l Total RNAX* ul RNase Free dH2Oup to 10 lX*：根据检
11、测到的 RNA 浓度来配置；混合均匀后，室温放置 20-30min反转录反应，在 PCR 管中配置如下缓冲液（20ul system） ，反应液配制在冰上进行。为了保证反应液配制的准确性，进行各项反应时，先按反应数+1 的量配制Master Mix ，然后再分装到每个反应管中。 试剂使用量5PrimeScript Buffer 2（for Real Time）4.0 ulPrimeScript RT Enzyme Mix I1.0 l RT Primer Mix1.0 l的反应液10.0 ulRNase Free dH2Oup to 20 l混合均匀后，在 PCR 仪上进行逆转录反应，反应条件为：37 15 min85 5 sec然后将得到的 cDNA 存放于-20冰箱保存待用。
