细胞培养方法介绍

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1、1091081.将200 mL培养物从培养箱转移到生物安全柜中,静置使微载体沉降下来。避免细胞长时间缺氧。2.微载体沉降后,吸出培养基。3.向转瓶中加入50-100 mL Thermo Scientific HyClone Dulbecco s磷酸盐缓冲液(DPBS),无钙镁离子(SH30028.03),充分清洗载满细胞的微载体,注意不要让液体大力冲击微载体,以免把细胞冲掉。a.室温下以40 rpm的转速搅拌培养物 约15分钟。4.将第二次清洗用的DPBS除去后,加入25mL(或少一些)的胰蛋白酶(SH30236)或HyQTase非哺乳动物细胞分离试剂(SV30030.01),40 rpm搅拌

2、培养物15分钟。(可根据实际温度调整时间。)注意:为了能够收集到洁净且具有活力的单细胞悬液,尽可能使用最低浓度的胰蛋白酶或HyQTase:在孔板中逐步滴加胰蛋白酶或HyQTase,浓度范围从0.05%到0.25%。注意:在37,室温和更低温度(例如,10)下逐步滴加胰蛋白酶或HyQTase以确定收集具有活力的单细胞悬液的最适温度。最低的温度可能是保持细胞活力的最适温度。5.确定所需细胞类型能够耐受清洗用的PBS。推荐组织培养DPBS。6.细胞从微载体上脱落后,用移液管温和地反复吹打微载体-细胞悬液,以使细胞形成单细胞悬液。(此处使用24-50 mL的移液管比较方便。对于更大的体积,可以选择使用

3、蠕动泵让微载体浆在无菌的管道中涡旋的方法。) 1.将培养容器从培养箱转移到生物安全柜中,将容器放置在转速设定为60 rpm的搅拌板上。2.使培养物处于搅拌状态,打开转瓶一个侧臂的盖子。按下取样按钮的同时,将Finnpipette移液器(或同等移液器)的长吸头深入到培养物的中部,但不要碰到转子,然后将取样按钮松开,让培养物样品快速吸入到移液器吸头中。将样品转移至15mL锥形管中。注意:微载体球珠占了从培养物中取出的样品体积的一部分。3.900rpm离心样品5-10分钟。要得到精确度和体积参考,将从样品中取出的培养基转移到量筒中,记录体积。(例如,从10 mL样品中取出9.5 mL培养基,则留下0

4、.5 mL微载体。)去除液体。4.在管中加入5 mL Thermo Scientific HyClone Dulbecco s磷酸盐缓冲液(DPBS)(SH30028)清洗微载体两次,去除上清之前震荡几次。两次清洗之间离心5-10分钟,形成微载体沉淀之后去除液体。注意:此步可在室温下操作,无需精确体积。5.要将细胞与微载体分离,向盛有清洗过的细胞-微载体的管中加入正确已知体积(见步骤3参考体积)的胰蛋白酶或HyQTase非哺乳动物细胞分离试剂(0.05%-0.25%),在所需温度下放置10分钟左右。用Finnpipette移液器,温和地将样品吸入吸头中再打出,反复吹吸几次以得到单细胞悬液。6.样品可以用来计数或者进行下一步操作。也可以进行细胞核计数。注意:据文献记录,微载体聚集物会使细胞计数产生偏差,导致样品难以准确测量。利用HyQSphere微载体的取样技术此方法适用于HyQSphere FACT 102L, CGEN 102L, Pro-F 102L, P Plus 102L和P 102L微载体。

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