Unstained Protein Molecular Weight Marker-1

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1、Unstained Protein Molecular Weight Marker SM0431 分子量大小范围   14.4-116 kDa。   即用型   提供上样缓冲液,可直接凝胶上样。   锐利条带。  应用   SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳和 Western 杂交精确鉴定蛋白大小。  说明  未预染蛋白 Ladders 和 markers 设计用于 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 (1)、硝酸纤维膜、尼龙膜或 PVDF膜精确鉴定蛋白的分子量大小。  Unstained Protein Molecul

2、ar Weight Marker 是由 7 条天然蛋白组成的混合物,分子  量范围为14.4-116 kDa。  未预染 Ladder 和 marker 经 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离后用 PageBlue Protein Staining Solution (#R0571)、 PageSilver Silver Staining Kit (#K0681)或其它蛋白染色方法染色显示条带非常窄。 PageBlue Protein Staining Solution 也可用于 PVDF 膜上未预染分子量标准条带的染色观察。  组分  0.1-0.2 mg

3、/ml of each protein in 62.5 mM Tris-HCl (pH 7.0 at 25C), 1 mM EDTA, 2% SDS, 50 mM DTT, 30 mM NaCl, 1 mM NaN3, 0.01% 溴酚蓝和  50% 甘油 . 质量控制  测试: Western 杂交检测和 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳。  保存  -20C 保存。  Patents, Licenses, Trademarks 十二烷基磺酸钠聚丙烯酰胺凝胶 (SDS-PAGE)电泳常规推 荐   低浓度凝胶推荐用于分析大分子蛋白;高浓度

4、凝胶推荐用于分析小分子蛋白。   线性梯度凝胶对宽分子量范围的蛋白具有高分辨率。  凝胶推荐  蛋白分子量范围, kDa 推荐的凝胶浓度, % 5-50 18 5-60 16 10-80 14 20-150 12 30-200 10 40-250 8 60-300 6 100-400 4 蛋白分子量范围, kDa 推荐的梯度凝胶浓度, % 5-100 10-20 5-300 4-20 10-200 8-16 30-300 4-12 Fermentas 所有蛋白分子量标准均适用于 6, 8, 10, 12, 14 % SDS 聚丙烯酰胺凝胶和4-12%, 8-16%

5、, 4-20%和 10-20%的梯度凝胶。   以下原则适用于蛋白分子量标准和蛋白样本:  o i低浓度凝胶 (4-8%)中,小分子量的蛋白 (10-15 kDa)在电泳时与示踪染料一同迁  移,蛋白条带可能不可见。  o 高浓度凝胶 (14-18%)中,大分子量蛋白 (150-250 kDa)不能分离。   如需精确鉴定蛋白的分子量大小,推荐使用未预染的蛋白分子量标准。   预染蛋白分子量标准适用于监控蛋白电泳进程和 Western 杂交时蛋白转膜效率。   预染蛋白偶联的生色团会影响蛋白迁移率,因此其在不同 SDS-PA

6、GE 缓冲液和凝胶系统中迁移率不同。预染分子量标准推荐用于蛋白分子量大小粗略测定。   每个批号的预染蛋白 Ladder/marker 均经过分子量大小精确鉴定的未预染蛋白Ladder/marker 校准 (Tris-glycine-SDS 凝 胶电泳 )。预染蛋白 Ladder/marker 计算出来的表观分子量请参考产品质检报告。预染蛋白在其它电泳缓冲液和凝胶体系中具有不同的电泳迁移率。   天然蛋白的修饰,如磷酸化和糖基化,均会改变蛋白的迁移率。修饰蛋白的表观分子量可能与同分子大小未修饰蛋白的分子量不同。  蛋白 Ladder/Marker:上样推荐 &nb

7、sp;1. 室温或 37C 融化 Ladder 几分钟,确保试管中的固体完全溶解。  2. 轻轻混匀,确保溶液完全混匀。  3. Unstained Protein Molecular Weight Marker: o 转移相应量的分子量标准到新的旋盖管。  o 95C 加热 10 分钟。  o 冷却后混合。  融化后,该分子量标准必须变性后才能  用于后续实验 。  4. 上样  (凝胶将用于 PageBlue Protein Staining Solution (#R0571)或其它 Coomassie 染料染

8、色;或用于 Western杂交 ): o 小凝胶: 5 l/泳道,凝胶厚度 0.75-1 mm。  o 大凝胶: 10 l/泳道,凝胶厚度 0.75-1 mm。  Spectra Multicolor Broad Range Protein Ladder: o 小凝胶: 10 l/泳道,凝胶厚度 0.75-1 mm。  o 大凝胶: 20 l/泳道,凝胶厚度 0.75-1 mm。  备注   为避免银染时凝胶过量上样, Ladder/marker 使用前按以下方法稀释:  水,无核酸酶  (#R0581): 36.5 l &

9、nbsp;5X Protein Loading Buffer*: 10 l  20X Reducing Agent (#R0891): 2.5 l  Protein ladder/marker: 1 l   * 也可使用 4X DualColor Protein Buffer Loading Pack (#R1011)。缓冲液和水的体积需相应调整。   观察预染的蛋白 Ladders/markers 无需再次染色。  如需观察未预染的蛋白 Ladders/markers ,可用 PageBlue Protein Staining Solutio

10、n (#R0571) 、  PageSilver Silver Staining Kit (#K0681)或其它蛋白染色技术染色凝胶。    蛋 白样本: SDS-PAGE 电泳前处理  步骤  DualColor Protein Loading Buffer Pack (#R1011) 处理样本  Protein Loading Buffer Pack (#R0891) 处理样本  融化  室温或 37C 融化缓冲液几分钟,确保试管中的固体完全溶解。  混合  轻轻混匀,确保溶液完全混匀。 &

11、nbsp;稀释  2.0 l 20X Reducing Agent 2.5 l 20X Reducing Agent 蛋白样本  (0.5 ng 2.5 g) 如需 Western 杂交或 Coomassie 染料染色,每孔(小凝胶)上样可达 2.5 g 总蛋白。  如需银染,每孔(小凝胶)上样可达 10 ng 总蛋白。  10 l 4X DualColor Protein Loading Buffer 水,无核酸酶  (#R0581) 至  40 l * 10 l 5X Protein Loading Buffer 水,无核酸酶 &

12、nbsp;(#R0581) 至  50 l * 变性  95-100C 孵育 5 分钟。  上样  短暂离心后直接上样 SDS-聚丙烯酰胺凝胶。  上样量: 10 l/孔(小凝胶)。  * 样本体积可适当放大或缩小 。  SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳操作方法  I. 试剂  30%丙烯酰胺 /双丙烯酰胺溶液 (37.5:1)溶液 (黑暗保存 ) 1.5 M Tris-HCl 缓冲液  (pH 8.8) 0.5 M Tris-HCl 缓冲液  (pH 6.8) 10%过硫酸胺 (APS)溶液

13、 (新鲜配制 ) TEMED 1X Tris-glycine-SDS Buffer (#B46) (10X 浓度,使用前稀释至 1X 浓度 ) 警告:  丙烯酰胺有神经毒性,处理其粉末时请戴好手套、安全眼镜和外科面具。  II. 分离胶制备  组分 s 体积: 10 ml 分离胶溶液 (2块小凝胶 ) 8%凝胶  10%凝胶  12%凝胶  去离子水  4.73 ml 4.13 ml 3.43 ml 30% 丙烯酰胺 /双丙烯酰胺  2.7 ml 3.3 ml 4.0 ml 1.5 M Tris-HCl 含 &nb

14、sp;0.4% SDS, pH 8.8 2.5 ml 2.5 ml 2.5 ml 10% APS 60 l  60 l  60 l  TEMED 13 l  13 l  13 l  III. 浓缩胶制备  组分 s 体积: 5 ml 浓缩胶溶液 (2 块小凝胶 ) 去离子水  3.0 ml 30%丙烯酰胺 /双丙烯酰胺  700 l  0.5 M Tris-HCl  含  0.4% SDS, pH 6.8 1.25 ml 10% APS 25 l  TEMED 20

15、 l  IV. 程序  1. 组配制胶装置,在两块玻璃板 (边缘 )之间加入间隔物,形成三明治形式。按上述方法制备分离胶溶液。  2. 最后加入 APS 和 TEMED,小心混匀避免产生气泡。  3. 重要提示: 混合物中加入 APS后,聚合反应立即开始,后续操作须立即执行。  4. 用枪头小心将凝胶溶液注入两块玻璃板之间的空隙。留出大约 1/4 的空间 (制备浓缩胶用 )。小心在分离胶顶部覆盖 50%异丙醇、 0.1% SDS 溶液或水,静置约 30 分钟使分离胶聚合。当聚合反应完成后,分离胶和覆盖的溶液之间会产生清晰线条。  5.

16、 除去水、异丙醇或 SDS溶液,轻轻用双蒸水洗涤。  6. 用枪头小心加入浓缩胶溶液 (按上述方法准备浓缩胶,最后加入 APS和 TEMED),避免产生气泡。  重要提示:  混合物中加入 APS后,聚合反应立即开始,后续操作须立即执行。  7. 插入梳子,静置凝胶聚合至少 60 分钟。  8. 小心除去梳子。将凝胶放入电泳 槽中。电泳槽底部和顶部的溶液池中倒入新鲜配制的 1X Tris-glycine-SDS缓冲液。确保缓冲液完全覆盖凝胶点样孔。  9. 上样。  根据凝胶数量选择适当的电压和电流。当染料前端进入电泳胶后增

17、加电压。确切的电压值请见下表:  凝胶  1 块小胶  2 块小胶  浓缩胶 (顶部 ) 13 mA 25 mA 分离胶 (底部 ) 25 mA 50 mA 此处的数值是针对 0.75 mm厚度凝胶。如果凝胶厚度更大,需相应调整电压。  当染料前端抵达凝胶底部时停止电泳,剥下凝胶后染色或 Western 杂交。  PageBlue Protein Staining Solution (#R0571)染色程序  使用微波处理 (快速方法 ) 不使用微波处理 (常规方法 ) 总时间  非变性凝胶: 25 分钟 &nbs

18、p;含 SDS变性凝胶: 40 分钟  非变性凝胶: 65 分钟  含 SDS变性凝胶: 95 分钟  1. 水洗 *, x 3 加热 100 ml水   微波处理 1 分钟   加入 100 ml水洗涤   倒掉水   轻摇,洗涤凝胶 5 分钟   倒掉水  2. 染色   加入 20 ml PageBlue Protein Stainin Solution 微波处理 30 秒钟   轻摇,染色凝胶 20 分钟   倒掉溶液   加入 20 ml PageBlue Protein Staining Solution 轻摇,染色凝胶 60 分钟 (或过夜 ) 倒掉溶液  3. 水洗   加入 100 ml水,洗涤 5 分钟   加入 100 ml水,洗涤 5 分钟  * 只适合含有 SDS的凝胶  备注  1. PageBlue Protein Staining Solution 可重复使用 3次,且不会

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