实验动物学.动物实验基本技术课件

《实验动物学.动物实验基本技术课件》由会员分享，可在线阅读，更多相关《实验动物学.动物实验基本技术课件（81页珍藏版）》请在金锄头文库上搜索。

1、第第 十十 章章 动物实验基本技术动物实验基本技术实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 本章内容本章内容n n第一节第一节 小小 鼠鼠 第二节第二节 大鼠大鼠 第三节第三节 豚鼠豚鼠 第四节第四节 兔兔 第五节第五节 实验动物处死方法实验动物处死方法 第六节第六节 实验动物的病理剖检实验动物的病理剖检实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 一、实验动物标记编号的方法一、实验动物标记编号的方法 ( (一一) )染色法：染色法： 1 1、单色涂染法：、单色涂染法： 在每组动物不超过在每组动物不超过l0l0只的情况下适用。只的情况下适用。 实验动物：大鼠、小

2、鼠。实验动物：大鼠、小鼠。 常用染色常用染色剂：3-53-5苦味酸溶液，苦味酸溶液， 可染成黄色。可染成黄色。第一节第一节 小小 鼠鼠实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1)(1)涂染顺序：从左到右、从上到下。涂染顺序：从左到右、从上到下。 (2) (2)左前肢为左前肢为l l号、左侧腹部号、左侧腹部2 2号、号、 左后肢左后肢3 3号。号。 (3) (3)头部头部4 4号、背部号、背部5 5号、号、 尾根部尾根部6 6号。号。 (4) (4)右前肢右前肢7 7号、号、 右侧腹部右侧腹部8 8号、号、 右后肢右后肢9 9号。号。 (5) (5)不

3、作染色不作染色标记为1010号。号。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 2 2、双色涂染法：、双色涂染法： 在每组动物不超过在每组动物不超过100100只的情况下只的情况下 适用。适用。 实验动物：大鼠、小鼠。实验动物：大鼠、小鼠。 常用染色剂：常用染色剂： (1)3-5 (1)3-5苦味酸溶液，可染成黄色。苦味酸溶液，可染成黄色。 作为作为“个个”位数。位数。 (2) 0.5% (2) 0.5%中性中性红或品或品红溶液，可染溶液，可染 成成红色。色。作作为“十十”位数。位数。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1)

4、(1) 用两种颜色同时进行染色标记。用两种颜色同时进行染色标记。 (2) (2) 用苦味酸用苦味酸( (黄色黄色) )染色染色标记作作为个位个位数，个位数的染色数，个位数的染色标记方法同方法同单色色涂染法。涂染法。(3) (3) 用品红用品红( (红色红色) )染色标记作为十位染色标记作为十位数，数，实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术（4 4）左前肢为）左前肢为1010号、号、 左侧腹部左侧腹部2020号、号、 左后肢左后肢3030号，号， 头部头部4040号、号、 背部背部5050号、号、 尾根部尾根部6060号，号， 右前肢右前肢7070号、号、 右右侧腹部腹部 8

5、0 80号、号、 右后肢右后肢9090号号 第第100100号不作染色号不作染色标记。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 二、小鼠的抓取保定：二、小鼠的抓取保定： 器材：小鼠饲养盒器材：小鼠饲养盒+ +面罩面罩1 1套。套。 方法步骤：方法步骤： 1 1、用右手拇指和食指捏、用右手拇指和食指捏 住小鼠尾巴中部将小鼠提住小鼠尾巴中部将小鼠提 起，放在饲养合的面罩上。起，放在饲养合的面罩上。 2 2、用左手拇指和食指迅速、用左手拇指和食指迅速、 准确地捏住小鼠的两耳后、准确地捏住小鼠的两耳后、 颈背部的皮肤，将小鼠提起。颈背部的皮肤，将小鼠提起。实验动物学实验动物学. .

6、动物实验基本技术动物实验基本技术 3 3、翻翻转转左左手手掌掌，以以左左手手掌掌心心和和中中指指夹夹 小小鼠鼠背背部部的的皮皮肤肤，使使小小鼠鼠整整个个呈呈一一条条 直线。直线。 4 4、用左手无名指、用左手无名指 压住小鼠背部的压住小鼠背部的 皮肤，小指压住皮肤，小指压住 小鼠的尾巴根部。小鼠的尾巴根部。 5 5、松开捏住小鼠尾、松开捏住小鼠尾 巴的右手拇指和食指。巴的右手拇指和食指。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术三、小鼠的给药方法：三、小鼠的给药方法： ( (一一) ) 灌胃给药灌胃给药 原理：原理： 将药液直接注入小鼠的胃内。将药液直接注入小鼠的胃内。 器材

7、：器材： 小鼠灌胃小鼠灌胃针1 1支、注射器支、注射器1 1支、支、 小鼠小鼠饲养养盒盒+ +面罩面罩1 1套、生理套、生理盐水、水、 烧杯。杯。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤：1 1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量的药液。的药液。2 2、左手捉持小鼠，使小鼠头部向上。、左手捉持小鼠，使小鼠头部向上。3 3、右手将灌胃针头尖端从小鼠口角处进针右手将灌胃针头尖端从小鼠口角处进针放进小鼠口咽部，顺咽后壁轻轻往下推，灌放进小鼠口咽部，顺咽后壁轻轻往下推，灌胃针会顺着食管滑入小鼠的胃内。灌胃针插胃针会顺着食管滑入

8、小鼠的胃内。灌胃针插入约入约3cm.4 4、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的药液灌入小鼠的胃中。器中的药液灌入小鼠的胃中。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术剂量：约剂量：约0.5ml10g体重。体重。 注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术（二）注射给药（二）注射给药 1 1、皮下注射给药：、皮下注射给药： 原理：将药液注入皮下结缔组织，经原理：将药液注入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环

9、。器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理支、生理盐水、水、烧 杯、酒精、碘酒、棉球。杯、酒精、碘酒、棉球。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1)(1)注射部位：选小鼠项背部的皮下。注射部位：选小鼠项背部的皮下。(2)(2)常常规消毒注射部位的皮肤，用注射消毒注射部位的皮肤，用注射针头取一取一锐角角度角角度刺入皮下，刺入皮下， (3)(3)将针头轻轻向左右将针头轻轻向左右摆动，摆动，易摆动易摆动则表示已则表示已刺入皮下，再轻轻刺入皮下，再轻轻抽吸抽吸，如无回血，可缓慢地将如无回血，可缓慢地将药物注入皮下。药物注入皮下。 注射量：注射

10、量：0.01ml0.01ml0.03ml0.03mlg g体重。体重。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术2 2、肌肉注射给药、肌肉注射给药 原理：将药液注入动物的肌肉组织，经原理：将药液注入动物的肌肉组织，经毛细血管吸收进入血液循环。毛细血管吸收进入血液循环。 器材：器材：1ml1ml注射器注射器1 1支、生理支、生理盐水、水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。杯、酒精、碘酒、棉球。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术方法步骤：方法步骤：(1)(1)操作时操作时1 1人先将小鼠捉持保定好。人先将小鼠捉持保定好。(2)(2)另另1 1人用左手抓住小鼠的人用左

11、手抓住小鼠的1 1条后肢，右手拿条后肢，右手拿注射器，常规消毒注射部位的皮肤。注射器，常规消毒注射部位的皮肤。(3)(3)将注射器针头在动物后将注射器针头在动物后肢肢大腿外大腿外侧肌肉丰富肌肉丰富处呈呈6060度角度角迅速刺入后注入药液。迅速刺入后注入药液。注射量：注射量：0.01m10.01m1g g体重。体重。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术3 3、静脉注射给药、静脉注射给药 原理：将药液注入小鼠的尾静脉。原理：将药液注入小鼠的尾静脉。 器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理支、生理盐水、水、烧杯、金属杯、金属笼或或小鼠固定器小鼠固定器 、酒精、碘、酒

12、精、碘酒、棉球。酒、棉球。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1)(1)将将小小鼠鼠放放在在金金属属笼笼或或小小鼠鼠固固定定器器中中，通通过过金金属属笼笼或或小小鼠鼠固固定定器器的的孔孔拉拉出出小小鼠鼠尾巴。尾巴。 (2) (2) 用左手捏住小鼠尾巴中部，用用左手捏住小鼠尾巴中部，用7575 酒精棉球反复擦拭尾部。酒精棉球反复擦拭尾部。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术(3) (3) 注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾 两侧，用食指从下面托起尾巴，以无两侧，用食指从下面托起尾巴，以无 名指

13、夹住尾巴的末梢。名指夹住尾巴的末梢。(4) (4) 右手持右手持4 4号号针头的注射器，使的注射器，使针头与与 静脉平行（小于静脉平行（小于3030度角）。度角）。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术(5) (5) 从小鼠尾巴下从小鼠尾巴下1 14 4处进针，仔细观察，处进针，仔细观察， 如果无阻力，无白色皮丘出现，说明如果无阻力，无白色皮丘出现，说明 已刺入血管，即可注入药物。已刺入血管，即可注入药物。 (6) (6) 拔出针头后，用干棉球压住注射部位拔出针头后，用干棉球压住注射部位 约约l l、2min2min，防止出血。，防止出血。 注射量：注射量： 0.005m

14、1 0.005m10.01 m10.01 m1g g体重。体重。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 4 4、腹腔注射给药、腹腔注射给药 原理：将药液注入小鼠的腹腔。原理：将药液注入小鼠的腹腔。 器材：注射器器材：注射器1 1支、生理支、生理盐水、水、烧杯、杯、 酒精、碘酒、棉球。酒精、碘酒、棉球。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1)(1)用左手将小鼠捉持保定，使鼠腹部用左手将小鼠捉持保定，使鼠腹部 朝上，鼠头略低于尾部。朝上，鼠头略低于尾部。 (2)(2)右手持注射器将右手持注射器将针头在下腹部靠近在下腹部靠近 腹

15、白腹白线的两的两侧进行穿刺。行穿刺。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术(3) (3) 针头刺入皮下后进针针头刺入皮下后进针3mm3mm左右，接着使左右，接着使注射针头与皮肤呈注射针头与皮肤呈4545度角刺入腹肌，穿过腹度角刺入腹肌，穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵抗感消失。后抵抗感消失。(4)(4)固定针头，保持针尖不动，固定针头，保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液回抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液。和尿液后即可注射药液。 注射量：注射量： 0.01m10.01m10.02 m10.02 m1g g体

16、重。体重。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 三、小鼠的采血三、小鼠的采血 摘除眼球采血法：摘除眼球采血法： 原理：将小鼠的眼球摘除后取血液原理：将小鼠的眼球摘除后取血液的方法。的方法。 器材：眼科弯器材：眼科弯镊、试管。管。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术方法步骤：方法步骤： (1)(1)左手抓住小鼠颈部皮肤，轻压在实左手抓住小鼠颈部皮肤，轻压在实验台上，取侧卧位验台上，取侧卧位; ; (2)(2)左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈后后压，使眼球突出。，使眼球突出。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实

17、验基本技术(3)(3)用眼科弯镊夹去眼球，将鼠倒立，用眼科弯镊夹去眼球，将鼠倒立， 用试管接住流出的血液。用试管接住流出的血液。(4)(4)采血完毕立即用纱布压迫止血。采血完毕立即用纱布压迫止血。 采血量：每次采血量：每次0.6-1.0ml/0.6-1.0ml/次。次。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 一、大鼠的抓取保定：一、大鼠的抓取保定： 器材：大鼠饲养盒器材：大鼠饲养盒 + + 面罩面罩 1 1套。套。 方法步骤：方法步骤：1 1、首先戴好防、首先戴好防护手套。手套。2 2、用右手拇指和食指抓住小鼠尾巴中部将、用右手拇指和食指抓住小鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大

18、鼠饲养盒的面罩上。大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上。3 3、左手顺势按、卡在大鼠躯干、左手顺势按、卡在大鼠躯干背部，稍加压力向头颈部滑行。背部，稍加压力向头颈部滑行。4 4、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤，其余三指和手掌后部的头颈皮肤，其余三指和手掌握住大鼠背部皮握住大鼠背部皮肤，完成抓取保定。肤，完成抓取保定。 第二节第二节 大鼠大鼠实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术二、大鼠的给药方法：二、大鼠的给药方法： ( (一一) )灌胃给药灌胃给药 原理：将药液直接注入大鼠的胃内。原理：将药液直接注入大鼠的胃内。 器材：大鼠灌胃器材：

19、大鼠灌胃针1 1支、注射器支、注射器1 1支、大鼠支、大鼠 饲养盒养盒+ +面罩面罩l l套、生理套、生理盐水、水、烧杯。杯。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术方法步骤：方法步骤： 1 1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量的药液。的药液。 2 2、左手捉持保定大鼠，右手将灌胃、左手捉持保定大鼠，右手将灌胃针头尖尖端放端放进大鼠口咽部，大鼠口咽部，顺咽后壁咽后壁轻轻往下推，往下推，灌胃灌胃针会会顺着食管滑入大鼠的胃内。着食管滑入大鼠的胃内。灌胃灌胃针插入插入约5cm.5cm. 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技

20、术 3 3、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的生理盐水灌入大鼠的胃中。射器中的生理盐水灌入大鼠的胃中。剂量：剂量：0.010.02ml0.010.02mlg g体重。体重。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术( (二二) ) 注射给药注射给药 1 1、皮下注射给药、皮下注射给药 原理：将药液注入皮下结缔组织，经毛细原理：将药液注入皮下结缔组织，经毛细 血管、淋巴管吸收进入血液循环。血管、淋巴管吸收进入血液循环。 器材：器材：5ml5ml注射器注射器1 1支、生

21、理支、生理盐水、水、烧杯、杯、 酒精、碘酒、棉球。酒精、碘酒、棉球。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1) (1) 注射部位：选大鼠的项背部的皮下。注射部位：选大鼠的项背部的皮下。 (2) (2) 常常规消毒注射部位的皮肤，用注射消毒注射部位的皮肤，用注射针头取一取一锐角角度刺入皮下。角角度刺入皮下。(3) (3) 将将针针头头轻轻轻轻向向左左右右摆摆动动，易易摆摆动动则则表表示示已已刺刺入入皮皮下下，再再轻轻轻轻抽抽吸吸，如如无无回回血血，可可缓缓慢慢地将药物注入皮下。地将药物注入皮下。注射量：注射量：0.01ml0.01mlg g体重。体

22、重。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术2 2、肌肉注射给药、肌肉注射给药 原理：将药液注入动物的肌肉组织，经原理：将药液注入动物的肌肉组织，经 毛细血管吸收进入血液循环。毛细血管吸收进入血液循环。 器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理支、生理盐水、水、烧杯、杯、 酒精、碘酒、棉球。酒精、碘酒、棉球。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1) (1) 操作时操作时1 1人先将大鼠捉持保定好。人先将大鼠捉持保定好。(2) (2) 另另1 1人用左手抓住大鼠的人用左手抓住大鼠的1 1条后肢，右手拿条后肢，右手拿注

23、射器，常注射器，常规消毒注射部位的皮肤。消毒注射部位的皮肤。 (3) (3) 将注射器针头在动物后肢大腿内侧肌肉丰将注射器针头在动物后肢大腿内侧肌肉丰富处呈富处呈9090度角，迅速刺入后注入药液。度角，迅速刺入后注入药液。注射量：注射量：0.01m10.01m1g g 。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 3 3、静脉注射给药、静脉注射给药 原理：将药液注入大鼠的尾静脉。原理：将药液注入大鼠的尾静脉。 器材：器材： 1ml 1ml注射器注射器1 1支、生理支、生理盐水、水、烧杯、杯、 金属金属笼或或大鼠固定器大鼠固定器、酒精、碘酒、棉球。、酒精、碘酒、棉球。 实验动物学

24、实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1) (1) 将大鼠放在金属将大鼠放在金属笼或或大鼠固定器大鼠固定器中，中，通通过金属金属笼或鼠或鼠夹的孔拉出大鼠尾巴。的孔拉出大鼠尾巴。 (2) (2) 用用左左手手捏捏住住大大鼠鼠尾尾巴巴中中部部，用用7575酒酒精棉球反复擦拭尾部。精棉球反复擦拭尾部。 (3) (3) 注射注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾，以左手拇指和中指捏住鼠尾两两侧，用食指从下面托起尾巴。，用食指从下面托起尾巴。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 (4) (4) 右右手手持持4 4号号针针头头的的注注射射器器，使使针针

25、头头与与静静脉脉平行平行( (小于小于3030度角度角) )。（5) 5) 从从大大鼠鼠尾尾巴巴下下1 14 4或或1 13 3处处进进针针，仔仔 细细观观察察，如如果果无无阻阻力力，无无白白色色皮皮丘丘出出 现，说明已刺入血管，即可注入药物。现，说明已刺入血管，即可注入药物。注射量：注射量：0.0050.01 ml0.0050.01 mlg g体重。体重。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 4 4、腹腔注射给药、腹腔注射给药 原理：将药液注入大鼠的腹腔。原理：将药液注入大鼠的腹腔。 器材：注射器器材：注射器1 1支、生理支、生理盐水、水、烧杯。杯。 实验动物学实验动

26、物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1) (1) 用左手将大鼠捉持保定，使鼠腹部朝用左手将大鼠捉持保定，使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部。上，鼠头略低于尾部。 (2) (2)右手持注射器将右手持注射器将针头在下腹部靠近腹在下腹部靠近腹白白线的两的两侧进行穿刺。行穿刺。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术(3)(3)针针头头刺刺入入皮皮下下后后进进针针3mm3mm左左右右，接接着着使使注注射射针针头头与与皮皮肤肤呈呈4545度度角角刺刺入入腹腹肌肌，穿穿过过腹腹肌肌进进入入腹腹膜膜腔腔，当当针针尖尖穿穿过过腹腹肌肌进进入入腹腹膜膜腔腔后后抵抗感

27、消失。抵抗感消失。(4)(4)固定针头，保持针尖不动，固定针头，保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液回抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液。和尿液后即可注射药液。注射量：注射量：0.010.010.02m10.02m1g g体重。体重。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 三、大鼠的麻醉三、大鼠的麻醉 原理：原理： 是使用非挥发性麻醉药对动物进行全是使用非挥发性麻醉药对动物进行全麻术的方法。麻术的方法。 器材：器材： 3 3戊巴比妥戊巴比妥钠、注射器。、注射器。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1) (1) 用

28、左手将大鼠捉持保定，使鼠腹部朝用左手将大鼠捉持保定，使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部。上，鼠头略低于尾部。 (2) (2) 右手持注射器将右手持注射器将针头在下腹部靠近腹在下腹部靠近腹白白线的两的两侧进行穿刺。行穿刺。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 (3) (3) 针头刺入皮下后进针针头刺入皮下后进针3mm3mm左右，接着使左右，接着使注射针头与皮肤呈注射针头与皮肤呈4545度角刺入腹肌，穿过腹度角刺入腹肌，穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵抗感消失。后抵抗感消失。 (4) (4) 固定固定针头，保持，保持针尖不尖不

29、动，回抽，回抽针栓，栓，如无回血、如无回血、肠液和尿液后即可注射液和尿液后即可注射药液。液。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 四、大鼠的采血四、大鼠的采血 眼眶后静脉丛眼眶后静脉丛( (窦窦) )取血：取血： 器材：器材： 毛细管毛细管( (玻璃或塑料均可玻璃或塑料均可) )、 1 1肝素溶液、干燥皿、肝素溶液、干燥皿、 乙醚、试管、干棉球。乙醚、试管、干棉球。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： 1 1、先将毛细管浸泡在、先将毛细管浸泡在1 1肝素溶液中数分肝素溶液中数分钟，然后取出干燥备用。钟，然后取出干燥备用。 2

30、2、将大鼠、将大鼠进行麻醉，行麻醉， 使大鼠保持使大鼠保持侧卧位。卧位。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术3 3、左手拇指、食指抓住两鼠耳之间的颈、左手拇指、食指抓住两鼠耳之间的颈部头皮，并轻轻向下压迫颈部两侧，致大部头皮，并轻轻向下压迫颈部两侧，致大鼠静脉血鼠静脉血回流障碍，眼球外突，眶后静脉回流障碍，眼球外突，眶后静脉丛充血。充血。4 4、右手持毛细管由大鼠的内毗部插入结、右手持毛细管由大鼠的内毗部插入结膜，使毛细管与眶壁平行地向喉头方向推膜，使毛细管与眶壁平行地向喉头方向推进，深度约进，深度约35mm35mm 。5 5、轻轻旋动毛细管，使其穿破静脉丛，、轻轻旋动

31、毛细管，使其穿破静脉丛， 让血流顺毛细管流出。让血流顺毛细管流出。采血量：采血量：0.40.6ml0.40.6ml次。次。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 一、豚鼠的抓取保定：一、豚鼠的抓取保定： 器材：大鼠器材：大鼠饲养盒养盒+ +带面罩面罩 l l套。套。 第三节第三节 豚鼠豚鼠实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： 1 1、先用左手轻轻扣、先用左手轻轻扣、 按住豚鼠背部。按住豚鼠背部。 2 2、顺势抓紧其肩胛上方皮肤，、顺势抓紧其肩胛上方皮肤，拇指和食指环箍其颈部。拇指和食指环箍其颈部。 3 3、用右手、用右手轻轻托住

32、其臀部，托住其臀部，即可将豚鼠抓取保定。即可将豚鼠抓取保定。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术二、豚鼠的给药方法：二、豚鼠的给药方法： ( (一一) )灌胃给药灌胃给药 原理：将药液直接注入豚鼠的胃内。原理：将药液直接注入豚鼠的胃内。 器材：大鼠灌胃器材：大鼠灌胃针1 1支、注射器支、注射器1 1支、支、 生理生理盐水、水、烧杯。杯。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： 1 1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定 量的生理盐水。量的生理盐水。 2 2、左手捉持保定豚鼠，右手将灌胃针头、左手捉

33、持保定豚鼠，右手将灌胃针头 尖端放进豚鼠口咽部，顺咽后壁轻轻尖端放进豚鼠口咽部，顺咽后壁轻轻 往下推，往下推，灌胃灌胃针会会顺着食管滑入大鼠着食管滑入大鼠 的胃内。的胃内。灌胃灌胃针插入插入约5cm5cm。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术3 3、用右手食指将针栓慢慢往下压，将、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的生理盐水注入豚鼠的胃中。注射器中的生理盐水注入豚鼠的胃中。 剂量：剂量：1 15ml5ml。 注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 ( (二二) ) 注射给药

34、注射给药 1 1、皮下注射给药、皮下注射给药原理：原理： 将药液注入皮下结缔组织，经毛细血将药液注入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。管、淋巴管吸收进入血液循环。 器材：器材： 1m1 1m1注射器注射器1 1支、生理支、生理盐水、水、烧杯、酒杯、酒精、碘酒、棉球。精、碘酒、棉球。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1) (1) 注射部位：选豚鼠的项背部的皮下。注射部位：选豚鼠的项背部的皮下。 (2) (2) 常常规消毒注射部位的皮肤，注射消毒注射部位的皮肤，注射针头 取一取一锐角角度刺入皮下。角角度刺入皮下。 (3) (3)

35、将针头轻轻向左右摆动，易摆动则将针头轻轻向左右摆动，易摆动则 表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如 无回血，可缓慢地将药物注入皮下。无回血，可缓慢地将药物注入皮下。注射量：注射量：0.01ml0.01mlg g 。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 2 2、肌肉注射给药、肌肉注射给药 原理：将药液注入动物的肌肉组织，经原理：将药液注入动物的肌肉组织，经 毛细血管吸收进入血液循环。毛细血管吸收进入血液循环。 器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理支、生理盐水、水、烧杯、杯、 酒精、碘酒、棉球。酒精、碘酒、棉球。 实验动物学实验动物学.

36、.动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1) (1) 操作时操作时1 1人先将豚鼠捉持保定好。人先将豚鼠捉持保定好。 (2) (2) 另另1 1人用左手抓住豚鼠的人用左手抓住豚鼠的1 1条后肢，条后肢， 右手拿注射器，常右手拿注射器，常规消毒注射部位。消毒注射部位。(3) (3) 将注射器针头在动物后肢大腿外侧将注射器针头在动物后肢大腿外侧 肌肉丰富处呈肌肉丰富处呈6060度角，迅速刺入后度角，迅速刺入后 注入药液。注入药液。注射量：注射量：0.01ml0.01mlg g 。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 一、兔的抓取保定：一、兔的抓取保定： (

37、 (一一) ) 方法方法1 1：步骤：步骤： 1 1、用右手把兔的两耳拿、用右手把兔的两耳拿在手心并抓住颈后部皮肤，在手心并抓住颈后部皮肤，把兔提起。把兔提起。 2 2、然后用左手托住、然后用左手托住兔兔的臀部。的臀部。 第四节第四节 兔兔实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 ( (二二) ) 方法方法2 2：器材：兔保定架器材：兔保定架1 1个。个。步骤：步骤：1 1、打开保定架的上盖，抓取、打开保定架的上盖，抓取并将并将兔放兔放进架架内，迅速关上保定架的上盖。内，迅速关上保定架的上盖。2 2、右手抓住兔耳朵将头部拉过保定架的卡、右手抓住兔耳朵将头部拉过保定架的卡栓，将

38、兔的脖子保定。栓，将兔的脖子保定。3 3、如果兔、如果兔挣扎，可用手扎，可用手在它的背上在它的背上轻轻抚摸，摸，使其安静。使其安静。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 二、兔的给药方法二、兔的给药方法 ( (一一) )灌胃给药灌胃给药 原理：将药液直接注入兔的胃内。原理：将药液直接注入兔的胃内。 器材：兔开口器、器材：兔开口器、1414号胃管、注射器号胃管、注射器1 1支、支、 生理生理盐水、水、烧杯、石蜡油。杯、石蜡油。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 步骤：步骤： 1 1、将将兔兔放放进进保保定定架架内内，助助手手用用手手轻轻轻轻压压住

39、住兔的背部，避免兔的挣扎。兔的背部，避免兔的挣扎。 2 2、灌胃者用在手拇指和中指、灌胃者用在手拇指和中指挤压兔两兔两颊，将下将下颌挤开使兔被开使兔被动张口。口。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术3 3、右手将开口器从一侧口角插入口腔并、右手将开口器从一侧口角插入口腔并 固定。固定。 4 4、用泡在石蜡油中的胃管，、用泡在石蜡油中的胃管，经开口器的开口器的 孔插入，向前推孔插入，向前推进约15cm15cm，可达胃内。，可达胃内。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术5 5、在插管时应将胃管另一端泡在水中、在插管时应将胃管另一端泡在水中 确认没有冒

40、气泡，即可用注射器经确认没有冒气泡，即可用注射器经 胃管注入药液。胃管注入药液。灌胃量：灌胃量： 80-150ml80-150ml只次。只次。注注 意意：在灌胃过程中，：在灌胃过程中，避免误插入气管。避免误插入气管。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术三、兔耳缘静脉或兔耳中央动脉穿刺三、兔耳缘静脉或兔耳中央动脉穿刺 （用于兔的给药、抽血）：（用于兔的给药、抽血）： 原理：穿刺兔的耳缘静脉或耳中央动脉。原理：穿刺兔的耳缘静脉或耳中央动脉。 器材：兔保定架、注射器器材：兔保定架、注射器1 1支、生理盐水、支、生理盐水、 烧杯、酒精、碘酒、棉球。烧杯、酒精、碘酒、棉球。实验动

41、物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 方法步骤：方法步骤： (1) (1) 将兔放在保定架内保定。将兔放在保定架内保定。 (2) (2) 酒精消毒并揉搓血管，酒精消毒并揉搓血管，使使兔的耳缘静脉或耳中央动兔的耳缘静脉或耳中央动脉脉充盈。充盈。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术(3) (3) 用左手食指和中指夹住兔的耳缘静脉或用左手食指和中指夹住兔的耳缘静脉或耳中央动脉近心端，拇指和小指夹住耳郭边耳中央动脉近心端，拇指和小指夹住耳郭边缘部分，无名指和缘部分，无名指和小指放在耳郭下作小指放在耳郭下作垫。(4) (4) 右手拿注射器，针尖的斜面朝上，将针右手

42、拿注射器，针尖的斜面朝上，将针头插入血管，放松对静脉近心端的压迫，缓头插入血管，放松对静脉近心端的压迫，缓慢把地药液注射进血管，或将血液抽出来。慢把地药液注射进血管，或将血液抽出来。注射或采血量：注射或采血量：5 5一一10ml10ml。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术一、注意事项：一、注意事项：1 1、应遵循安乐死的原则。、应遵循安乐死的原则。2 2、要保证实验人员的安全。、要保证实验人员的安全。3 3、要确认实验动物已经死亡。、要确认实验动物已经死亡。4 4、要注意、要注意环保，避免保，避免污染染环境，境，还要妥要妥善善处理好尸体。理好尸体。 第五节第五节 实验

43、动物处死方法实验动物处死方法实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术二、二、处死方法：死方法：（一）颈椎脱臼处死法（一）颈椎脱臼处死法1 1、是将实验动物的颈椎脱臼，断离脊髓、是将实验动物的颈椎脱臼，断离脊髓 致死，为大、小鼠最常用的处死方法。致死，为大、小鼠最常用的处死方法。2 2、用右手抓住鼠尾根部并将其提起，放、用右手抓住鼠尾根部并将其提起，放在鼠在鼠笼盖或其他粗糙面上盖或其他粗糙面上 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术3 3、用左手拇指、食指用力向下按压鼠头、用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及颈部。及颈部。4 4、右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方

44、，、右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方，造成造成颈椎脱臼，脊髓与椎脱臼，脊髓与脑干断离，干断离，动物物立即死亡。立即死亡。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 （二）断（二）断头处死法：死法： 此法适用于鼠此法适用于鼠类等等较小的小的实验动物，物，详见教材。教材。 （三）三）击打打头盖骨盖骨处死法：死法： 主要用于豚鼠和兔的主要用于豚鼠和兔的处死，死，详见教材。教材。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术（四）放血（四）放血处死法：死法： 此法适用于各种此法适用于各种实验动物，物，详见教材。教材。 （五）空气栓塞（五）空气栓塞处死法：死法： 处死兔、猫、

45、犬常用此法，死兔、猫、犬常用此法，详见教材。教材。（六）（六）过量麻醉量麻醉处死法：死法： 此法多用于此法多用于处死豚鼠和家兔，死豚鼠和家兔，详见教材。教材。（七）二氧化碳吸入法：（七）二氧化碳吸入法： 让实验动物吸入大量物吸入大量C0C02 2等气体而中毒等气体而中毒死亡。死亡。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 一、基本要求一、基本要求（一）（一）实验动物背景物背景资料料记录 1 1、 实验动物来源、种物来源、种类、年、年龄、性、性别、 原原编号、体重、号、体重、临床症状等。床症状等。2 2、剖、剖检时间、地点，麻醉方法、地点，麻醉方法、时间、 麻醉者，麻醉者，处死

46、方法、解剖者、死方法、解剖者、记录者、者、 温度、湿度温度、湿度 。3 3、其它指、其它指标：动物剖物剖杀前禁食（不禁水）前禁食（不禁水） 时间一致，一致，为12h12h。 第六节第六节 实验动物的病理剖检实验动物的病理剖检实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 （二）病理取材基本要求（二）病理取材基本要求 1 1、 病理检查应分层次进行，先进行一病理检查应分层次进行，先进行一 般外观观察，然后剖检观察，再进行般外观观察，然后剖检观察，再进行 光镜详细检查。光镜详细检查。 2 2、 通常通常选择正常与病正常与病变交界交界处组织， 即包括病即包括病变本身及病本身及病变周周围组

47、织。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 3 3、 对照组动物相同器官取材时，选材对照组动物相同器官取材时，选材部位应尽量一致。部位应尽量一致。 4 4、 肉眼看不到明显病变时，各试验组肉眼看不到明显病变时，各试验组选取标本位置应一致。选取标本位置应一致。 5 5、 所所选组织应包括包括脏器全部器全部层次次结构或构或重要重要结构，如构，如肾应包括皮包括皮质、髓、髓质和和肾盂。盂。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 6 6、 体积大和分叶的器官，应视不同组织体积大和分叶的器官，应视不同组织选取多个部位，小器官可整体取材并固定，选取多个部位，小器官

48、可整体取材并固定，如淋巴结、扁桃体、甲状腺等。如淋巴结、扁桃体、甲状腺等。 7 7、胃、胃肠标本本应将内容物冲洗掉，以免内将内容物冲洗掉，以免内容物影响容物影响组织的固定，的固定，产生自溶。生自溶。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 8 8、所取材料应尽量保持肉眼标本的完整、所取材料应尽量保持肉眼标本的完整性，不宜过厚或过薄，一般厚约性，不宜过厚或过薄，一般厚约3-5mm3-5mm，大，大小为小为1.5-2cm1.5-2cm。 9 9、切取、切取组织时不要不要挤压，使用，使用锋利刀利刀具，少用剪刀，勿具，少用剪刀，勿选用被器械用被器械钳压过的部的部位。位。 实验动物学

49、实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 1010、标本取材要熟练，尽可能快的完成整、标本取材要熟练，尽可能快的完成整个过程，特别是易自溶的组织，如肠道、脑个过程，特别是易自溶的组织，如肠道、脑、腺体等。、腺体等。 11 11、剖、剖检记录应客客观、详细，用形象描述，用形象描述而不能用而不能用诊断的病名来代替。断的病名来代替。 12 12、 同一同一实验中的中的对照照组和和实验组动物物应交叉剖交叉剖检，严格格统一各种条件和操作，尽一各种条件和操作，尽量避免各种可能的干量避免各种可能的干扰因素。因素。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术（一）（一）实验动物尸体的固定

50、：物尸体的固定： 通常通常为仰卧位固定。仰卧位固定。（二）剖（二）剖检顺序：序： 多多为先腹腔后胸腔，再先腹腔后胸腔，再脑、脊髓、骨、脊髓、骨髓、皮肤肌肉等。髓、皮肤肌肉等。 二、剖检和取材程序二、剖检和取材程序实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 A A、腹腔和腹腔器官、腹腔和腹腔器官1 1、在下腹部作一横切口，再沿腹部正中、在下腹部作一横切口，再沿腹部正中线切开切开剑突至突至外阴、外阴、肛肛门之之间的腹前壁。的腹前壁。2 2、再沿最低位肋骨分别向左右两侧切开、再沿最低位肋骨分别向左右两侧切开侧腹壁至脊柱两旁。侧腹壁至脊柱两旁。3 3、完全暴露腹腔器官。、完全暴露腹腔器

51、官。 （三）剖检和取材步骤：（三）剖检和取材步骤：实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术4 4、观察腹腔组织器官：胃、肠、胰、观察腹腔组织器官：胃、肠、胰、肝脏、脾脏、肾脏、肾上腺等。肝脏、脾脏、肾脏、肾上腺等。5 5、依次取出：胃、依次取出：胃、肠、胰、肝、胰、肝脏、脾、脾脏、肾脏、肾上腺等。上腺等。6 6、观察并取出盆腔察并取出盆腔组织器官：膀胱、器官：膀胱、雄性生殖器官、雌性生殖器官等。雄性生殖器官、雌性生殖器官等。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术 B B、胸腔、口腔及其器官、胸腔、口腔及其器官 1 1、用、用镊子子夹住胸骨住胸骨剑突，剪断

52、膈肌与胸骨突，剪断膈肌与胸骨的的连结。2 2、提起胸骨，在胸椎两侧分别剪断左、右、提起胸骨，在胸椎两侧分别剪断左、右侧胸壁的肋骨。侧胸壁的肋骨。3 3、取下整个胸壁，暴露胸腔。、取下整个胸壁，暴露胸腔。4 4、观察盆腔组织器官：胸腺、肺脏、心脏、观察盆腔组织器官：胸腺、肺脏、心脏等。等。 5 5、依次取出：胸腺、肺、依次取出：胸腺、肺脏、心、心脏。 实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术1 1、解剖后、解剖后应迅速将迅速将脏器称重，以免器称重，以免水分蒸水分蒸发造成差异，特造成差异，特别是是肾上腺等上腺等小器官的称重。小器官的称重。 三、脏器测量和称重三、脏器测量和称重实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术2 2 2 2、脏器称重前器称重前应尽量将周尽量将周围脂肪脂肪组织和和结締締组织剔除，并用剔除，并用滤纸吸去吸去脏器表面血液及器表面血液及体液，特体液，特别是是肾上腺、甲状腺、前列腺等上腺、甲状腺、前列腺等较小的器官，更要新小的器官，更要新鲜称重，防止器官干燥失称重，防止器官干燥失水重量减水重量减轻。3 3、空腔器官称重前，、空腔器官称重前，应清除其腔内液体，清除其腔内液体，如心如心脏应除去血除去血块。实验动物学实验动物学. .动物实验基本技术动物实验基本技术