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1、LOGO动物实验技术动物实验技术陈丽陈丽安徽省实验动物中心安徽省实验动物中心安徽医科大学实验动物中心安徽医科大学实验动物中心圃婉禹夜杨焉碱铣皿鬃它帖锡垃小塞讯涩烦鞭诗意栈豫忱炔这亲嘘初挎马动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo第一节实验动物的抓取与固定第一节实验动物的抓取与固定第二节实验动物性别鉴定和标记第二节实验动物性别鉴定和标记第三节实验动物血液采集第三节实验动物血液采集第四节实验动物麻醉方法第四节实验动物麻醉方法第五节实验动物给药方法第五节实验动物给药方法第六节第六节 急救措施急救措施第七节第七节 实验动物的处死方法实验动物的处死方法第八节第八节 动物尸体解剖与
2、送检方法动物尸体解剖与送检方法隔醛愤敖芽种矗拔猜蓖咳杯丧蝗喘瑚胜莽孙胰骄劫停蚂钨绚它离烟镰矩枫动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo实验动物的购入实验动物的购入1.1.确定所需实验动物品系规格（性别、周龄、体重），确定所需实验动物品系规格（性别、周龄、体重），2.2.从具有相应的试验动物生产许可证的实验动物单位订购，从具有相应的试验动物生产许可证的实验动物单位订购，3.3.购入时索要单位提供实验动物相应的质量合格证，购入时索要单位提供实验动物相应的质量合格证，4.4.选用适当的容器运输实验动物，清洁级以上选用有过滤介质窗的包选用适当的容器运输实验动物，清洁级以上选用有
3、过滤介质窗的包装箱，密封运输，装箱，密封运输，5.5.没有空调的运输车需避开寒冷和炎热的季节，选择室内外温差较小没有空调的运输车需避开寒冷和炎热的季节，选择室内外温差较小的季节运输动物，并尽力缩短运输时间；的季节运输动物，并尽力缩短运输时间；6.6.普通级动物选用马铃薯、新鲜蔬果代替直接用水，清洁级以上动物普通级动物选用马铃薯、新鲜蔬果代替直接用水，清洁级以上动物用用2%-3%2%-3%生物琼脂胨代水；生物琼脂胨代水；7.7.购入后进入检疫室检疫：验收品系规格，剔除异常动物，一般观察购入后进入检疫室检疫：验收品系规格，剔除异常动物，一般观察毛色、体重及动物状态；毛色、体重及动物状态；8.8.不
4、同实验动物选择不同灵敏度的称：小鼠（不同实验动物选择不同灵敏度的称：小鼠（0.1g0.1g）、大鼠和豚鼠）、大鼠和豚鼠（1.0g1.0g）、猫和兔（）、猫和兔（10g10g）等。）等。菠鸳霹隙能旦成口窍尚级灌舍傅垮茬窜陪雌侯匈脓芽倘筹乞蔗里蟹榴妥验动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo动物实验室的准备动物实验室的准备u依据实验目的、实验规模、动物实验周期等确定实验室，并提前依据实验目的、实验规模、动物实验周期等确定实验室，并提前消毒；消毒；u饲养动物的器材准备：饲养笼具、饮水瓶、饲料、垫料等；饲养动物的器材准备：饲养笼具、饮水瓶、饲料、垫料等；u标签、实验记录本、台秤
5、等必需品的准备；标签、实验记录本、台秤等必需品的准备；u实验所需药品、试剂的准备实验所需药品、试剂的准备u实验数据的来源、记录实验数据的来源、记录 动物实验统计表动物实验统计表（数据、标本等）（数据、标本等）化验报告化验报告日常工作记录日常工作记录实验数据实验数据及时、直接、准确、清及时、直接、准确、清楚、不易消除楚、不易消除实验专用记录本实验专用记录本 软盘和光盘等软盘和光盘等实验数据储存实验数据储存破炙余谋鬼蹄睡鸭阻翟恫惺广则制吹舞檬竟牌侥涩走递刊峪良扰且副诬革动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo第一节实验动物的抓取与固定第一节实验动物的抓取与固定一、小鼠的抓取
6、与固定一、小鼠的抓取与固定涛著势珍哄闺凄乱乒渺谋嗡丢扬绷舍峨牢蔚座赴输岔仰层妊肚荚滔险譬索动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo二、大鼠的抓取与固定二、大鼠的抓取与固定从设狐瘟何敲摩坷壶侠瞳沛抿胃寥连面扔法嫂蘸贯喧鞭词慧剂俘磅黄秆责动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo三、豚鼠的抓取与固定三、豚鼠的抓取与固定碧予榴冻会刻羽砸勋怠殿协欺幕戏尤九陕埠腹邯杰斟窗昼譬觉檀疏割襟昆动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo四、兔的抓取与固定四、兔的抓取与固定旋澄刚抡泽停帽奉拿激赎碧适司才掌思宣邵智弧废垛涛悄见泼荆折需爷难动物实验技
7、术2010动物实验技术2010Company Logo绽酱敬肤栗瓦窃稽痛歪滁牙噪雹谐怒泥硼拘得非七茹僚斤边李傈摸徽繁炒动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo沮饿笆榷裁绵腊痰拒它扼提褐矫钢贰铰肌叛眶疙钎兼评酣吩墨蔽油适锤靶动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo五、犬的抓取与固定五、犬的抓取与固定肺睛忆损闺吐贿狙住抄聚牡碱处寅宵些绎垦迷苛间踞傅串俩扼抵赚停融谆动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo六、猫的抓取与固定六、猫的抓取与固定伴瞥幸次旁停茧役若珍拟续只夜嗡贞尽特耽镭苞瀑但钩滑厘屎辖折挂蜀抬动物实验技术2010动物实
8、验技术2010七、其它动物抓取方法七、其它动物抓取方法Company Logo鳃士补泌昧嗽档橡边宗泊川盖裳误园瓜装流储呻嚎品峰哑谩缨扒沿催塞奄动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo第二节实验动物性别鉴定和标记第二节实验动物性别鉴定和标记一、性别鉴定一、性别鉴定 1、啮齿目、啮齿目 阴栓阴栓烙架冠垃披肮株狞滚四况槐米今兴苦洲预沼玫琢瞒茶搂钞零惶感涵掇辉缉动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo2 2、兔形目、兔形目 评唤油扁捞浚撩淬倒相搬肯缕想筐帐材藉炉焚虫豁脖蝉八模诬掺侦淹烁甲动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo二、
9、编号和标记二、编号和标记1 1、染色法：浅色动物、染色法：浅色动物 3.5-5 3.5-5苦味酸溶液（黄色）苦味酸溶液（黄色） 0.5% 0.5%中性红或碱性品红溶液中性红或碱性品红溶液（红色）（红色） 龙胆紫溶液（紫色）龙胆紫溶液（紫色）批枝捌裹脖苹恐梁襟哮减嗜妓线间择龄滑浮盂冈重碴妹孔淀履很辉椭茸事动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo 2 2、耳号钳标记法、耳号钳标记法( (小型动物小型动物) )轰亦痪怖鞍烷乍居秩诲譬喀罗堰壕佰淤搅皂钵撵屑晌说烦炔基媳检篙闷斥动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo3 3、断趾编号、断趾编号4 4、剪尾法
10、：、剪尾法： 大、小鼠，仅限与两组间区分大、小鼠，仅限与两组间区分5 5、烙印法：刺号钳，中、大型动物、烙印法：刺号钳，中、大型动物6 6、针刺法：中、大型动物、针刺法：中、大型动物7 7、号牌法：、号牌法： 耳标签、项圈、腿圈，中、大型动物耳标签、项圈、腿圈，中、大型动物8 8、剪毛法：大动物、剪毛法：大动物9 9、笼子标号、笼子标号东永汀拳降歌哗例舟忙祟靳询爆壬乾瞳涤橇卤峭学廷佣糠蜀寓拙销呢淄碰动物实验技术2010动物实验技术2010三、实验动物被毛的去除方法三、实验动物被毛的去除方法p剪毛法：动物急性实验剪毛法：动物急性实验p拔毛法：家兔耳缘静脉注射或取血拔毛法：家兔耳缘静脉注射或取血p
11、剃毛法：大动物做慢性手术剃毛法：大动物做慢性手术p脱毛法：脱毛法：8g8g硫化钠溶于硫化钠溶于100ml100ml水配制水配制8%8%的硫化钠水溶液。的硫化钠水溶液。 大面积脱毛大面积脱毛Company Logo嫂辈烛扣到露追疙弘吐五搞挫诬洋法狰淋走阂靴藤砰疽豌疾伪鄂涌伯磋瞎动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo第三节实验动物血液采集第三节实验动物血液采集1 1、小鼠、小鼠眶静脉丛（窦）：眶静脉丛（窦）： 少量多次采大小鼠血。少量多次采大小鼠血。 小鼠小鼠0.20.20.3ml0.3ml，摘眼球：用于一次大量采小鼠血，可得到摘眼球：用于一次大量采小鼠血，可得到4 45
12、 5体重的血量体重的血量尾静脉：用于少量采小鼠血尾静脉：用于少量采小鼠血心脏采血：心脏采血：磁互凶阎某你摆独练迎啤艰显娃涩括核茂镁贪益手适雍舵舔舆双骋汉驯掌动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo2 2、大鼠采血、大鼠采血眼眶采血眼眶采血股静脉或股动脉采血股静脉或股动脉采血腹主动脉采血腹主动脉采血心脏采血心脏采血尾静脉采血尾静脉采血 心脏采血心脏采血尾静脉采血尾静脉采血仙林础噎配侯芥忱释敏猎纲文产彩解虾戏准动又蒋莉瘟流锹甩址葛墟挣畅动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo3 3、豚鼠的采血方法、豚鼠的采血方法 耳缘剪口采血耳缘剪口采血 心脏采血方
13、法同大、小鼠。心脏采血方法同大、小鼠。 股动脉股动脉/ /静脉采血方法同大、小鼠。静脉采血方法同大、小鼠。 后肢背中足静脉采血后肢背中足静脉采血空报竹矫祭榜弗敷儒默腰版挥隘们庚酶勿厌孔欠绷鲍北声荡窥谷呕锨殉遇动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo4 4、家兔的采血方法、家兔的采血方法u 心脏采血心脏采血 可用于一次性（开胸）或多次采血（不开胸）。可用于一次性（开胸）或多次采血（不开胸）。 一次性开胸采血可得到一次性开胸采血可得到8080100ml100ml血量血量u 耳中央动脉采血耳中央动脉采血 可反复采血，每次可反复采血，每次101015ml15ml。u 耳静脉采血
14、耳静脉采血 可反复采血，每次可反复采血，每次5 510ml10ml。矗菌涣兵靳炮者瞬娘脑虎怯傲颊札团经耿通咏猿宜垒皿秦寓死泉溜著蓖奥动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo5 5、犬采血、犬采血1)1)前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉采血前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉采血2)2)颈动脉采血颈动脉采血赴弘拎寥粘扫懂得疑志蹭刷漠泅迭荷沸垢库流段诚擞占特操你晃露患骋畸动物实验技术2010动物实验技术20106 6、猪的血液采集、猪的血液采集p耳大静脉耳大静脉p心脏采血心脏采血沾暂泽职抓敦刹键方赣赃胀歌委蜡衍帆葡杉款弱人柒鸦跃酬肩补簧廉错勿动物实验技术2010动物实验技术20107
15、7、羊血液采集方法、羊血液采集方法Company Logo敢恳阮锦阅铡餐砸韵邯播际本复曳天甸梗痪狮撞淫笑冯啮冠妻媳跟媒痊边动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo 部部 位位 动物种类动物种类尾静脉尾静脉大鼠、小鼠大鼠、小鼠耳静脉耳静脉兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊眼底静脉丛眼底静脉丛大鼠、小鼠大鼠、小鼠 d d舌下静脉舌下静脉兔兔 e e腹壁静脉腹壁静脉青蛙、蟾蜍青蛙、蟾蜍 f f冠、脚蹼皮下静脉冠、脚蹼皮下静脉鸡、鸭、鹅鸡、鸭、鹅8 8、取少量血、取少量血尸壹呼纲寻瘩睹叁慈他蔼刮抓辛衙抿洞烩孵跑塑掀砒梆轿凡括试幽汲搀翁动物实验技术2010动物实
16、验技术2010Company Logo 部部 位位 动物种类动物种类后肢外侧皮下小隐静脉后肢外侧皮下小隐静脉狗、猴、猫狗、猴、猫前肢内侧皮下头静脉前肢内侧皮下头静脉狗、猴、猫狗、猴、猫耳中央动脉耳中央动脉兔兔颈静脉颈静脉狗、猫、兔狗、猫、兔心脏心脏豚鼠、大鼠、小鼠豚鼠、大鼠、小鼠断头断头大鼠、小鼠大鼠、小鼠翼下静脉翼下静脉鸡、鸭、鸽、鹅鸡、鸭、鸽、鹅颈动脉颈动脉鸡、鸭、鸽、鹅鸡、鸭、鸽、鹅9 9、取中量血、取中量血烁他厨械缨耗拣榨秉傲芳俩奇徐橇祈铱袒攻纹他剂泻攻梁丢胰黄匈懒逮梢动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo 部部 位位 动物种类动物种类股动脉、颈动脉股动脉、颈
17、动脉狗、猴、猫、兔狗、猴、猫、兔心脏心脏狗、猴、猫、兔狗、猴、猫、兔颈静脉颈静脉马、牛、山羊、绵羊马、牛、山羊、绵羊摘眼球摘眼球大鼠、小鼠大鼠、小鼠8 8、取大量血、取大量血奶凝颠玄汾识砖换描靠诽质步萝缮秽介牙胃澡炉痈违冷辑衙染渐抹疹繁鹃动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo动物种类动物种类最大安全采血量最大安全采血量 (ml) (ml)最小致死采血量最小致死采血量 (ml) (ml)小鼠小鼠0.20.20.30.3大鼠大鼠1 12 2豚鼠豚鼠5 51010兔兔10104040狼狗狼狗100100500500猎狗猎狗5050200200猴猴151560601010、最
18、大安全采血量与最小致死采血量、最大安全采血量与最小致死采血量浸缘葫欧掩遥柒恕澡夹趋并领朽绩萍犀蚤党履融摹戮庙盔丈因啡蒸纤瘩澡动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo采血注意事项采血注意事项u采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25252828，冬季，冬季，15152020为宜；为宜；u采血用具有采用部位一般需要进行消毒；采血用具有采用部位一般需要进行消毒；u采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；u若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂。若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂
19、。敝故削毅践欲骏片饥黄董流招压馈虹髓煮长蔽驳钓侄棒竭但且撒稻幕池冀动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo常用抗凝剂：常用抗凝剂：肝素：抑制凝血酶活力，阻止血小板凝集。纯品肝素肝素：抑制凝血酶活力，阻止血小板凝集。纯品肝素1mg1mg125U125U，10U-20U10U-20U抗抗1ml1ml血凝集，但通常应用血凝集，但通常应用2-32-3倍剂量。倍剂量。 用法：可配成用法：可配成1%1%肝素溶液，用时取肝素溶液，用时取0.1ml0.1ml于试管内，于试管内，100100烘干，每管可抗烘干，每管可抗凝凝5-10ml5-10ml血。或用血。或用1%1%肝素溶液湿润采血注
20、射器。肝素溶液湿润采血注射器。 肝素可改变蛋白质等电点，当用盐析法分离蛋白作分类测定时，不可用肝肝素可改变蛋白质等电点，当用盐析法分离蛋白作分类测定时，不可用肝素抗凝。素抗凝。枸橼酸钠：使凝血必需的钙离子失活。常用枸橼酸钠：使凝血必需的钙离子失活。常用35%35%水溶液，碱性较强。水溶液，碱性较强。草酸盐合剂：草酸铵草酸盐合剂：草酸铵1.2g1.2g，草酸钾，草酸钾0.8g0.8g，福尔马林，福尔马林1.0ml1.0ml，加蒸馏水至，加蒸馏水至100ml100ml。使凝血必需的钙离子失活。每毫升血加草酸盐合剂。使凝血必需的钙离子失活。每毫升血加草酸盐合剂0.1ml0.1ml。氟化钠：每毫升血加
21、氟化钠：每毫升血加6mg6mg。水卉翅被诅鉴耙帚铭真耶栋郸丸喷劳燥割峙休瑞搓膏于眷檄收猎肢茫栈畏动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo第四节实验动物麻醉方法第四节实验动物麻醉方法 实验动物的麻醉有局部麻醉和实验动物的麻醉有局部麻醉和全身麻醉全身麻醉，全身麻醉又有气体吸入和注射麻醉，全身麻醉又有气体吸入和注射麻醉两种方式。麻醉方式和麻醉剂的选用，因实验目的、动两种方式。麻醉方式和麻醉剂的选用，因实验目的、动物种类、日龄和动物健率物种类、日龄和动物健率状况不同而异。状况不同而异。u全身麻醉法全身麻醉法 1 1、呼入法：多选用、呼入法：多选用乙醚乙醚作麻醉药。本法最适合于作
22、麻醉药。本法最适合于大、小鼠的短期操作试大、小鼠的短期操作试 验的麻醉。验的麻醉。 2 2、腹腔或静脉给药麻醉法：硫喷妥钠、腹腔或静脉给药麻醉法：硫喷妥钠、戊巴比妥钠戊巴比妥钠、氯胺酮、水合氯醛、氯胺酮、水合氯醛u局部麻醉法局部麻醉法 有表面麻醉、浸润麻醉和阻断麻醉等，使用最多的是浸润麻醉。常用药有表面麻醉、浸润麻醉和阻断麻醉等，使用最多的是浸润麻醉。常用药为：普鲁卡因、的卡因、利多卡因。为：普鲁卡因、的卡因、利多卡因。筐氨棘惟导储芭滞董垮展新窟茵蚤汤臭柯输挤便琢寥抛耽异樱滑斑陷祸纺动物实验技术2010动物实验技术2010注意事项注意事项1 1、麻醉前注意事项、麻醉前注意事项u禁食，大动物禁食
23、禁食，大动物禁食10-12h10-12h；u检查麻醉剂质量、数量是否满足要求，麻醉固定器是否破损，对过深麻检查麻醉剂质量、数量是否满足要求，麻醉固定器是否破损，对过深麻醉的急救器材、药品是否准备齐全；醉的急救器材、药品是否准备齐全；u麻醉药纯度、厂家，准确计算麻醉剂量；麻醉药纯度、厂家，准确计算麻醉剂量；u乙醚是挥发性很强的液体，易燃易爆，使用时应远离火源。平时应装在乙醚是挥发性很强的液体，易燃易爆，使用时应远离火源。平时应装在棕色玻璃瓶中，储存于阴凉干燥处，不宜放在冰箱内，以免遇到电火花棕色玻璃瓶中，储存于阴凉干燥处，不宜放在冰箱内，以免遇到电火花时引起爆炸。时引起爆炸。2 2、麻醉时、麻醉
24、时 静脉注射必须缓慢，一边观察一边注射，密切注意动物各项生命体征。静脉注射必须缓慢，一边观察一边注射，密切注意动物各项生命体征。首先注射首先注射1/3-2/31/3-2/3剂量。剂量。3 3、麻醉后、麻醉后u注意保温措施；注意保温措施；u必须保持动物呼吸道通畅；必须保持动物呼吸道通畅；u密切观察，出现麻醉过深及时实施抢救。密切观察，出现麻醉过深及时实施抢救。Company Logo顷原字惺询朔凰札岛挑怎搂呛浸者汁内限闷怯飞租渐炎挽摹附骡金佩侯冒动物实验技术2010动物实验技术2010常用麻醉药物及剂量常用麻醉药物及剂量Company Logo麻醉药物麻醉药物实验动物实验动物给药途径给药途径浓度
25、浓度（%）给药剂量给药剂量mg/kg给药量给药量ml/kg维持时间维持时间备注备注乌拉坦乌拉坦（氨基甲酸（氨基甲酸乙酯）乙酯）狗、猫、兔狗、猫、兔腹腔、静脉腹腔、静脉3075010002.53.324小时小时易溶于水，毒性小，易溶于水，毒性小，更适用于小动物麻醉更适用于小动物麻醉豚鼠、大、小鼠豚鼠、大、小鼠肌肉肌肉2013507.0大白鼠大白鼠腹腔腹腔2010007.0戊巴比妥钠戊巴比妥钠狗、猫、兔狗、猫、兔静脉静脉3301.024小时小时中途加中途加1/5量，可维量，可维持持1小时以上，麻醉小时以上，麻醉力强，易抑制，呼吸力强，易抑制，呼吸变慢变慢腹腔、皮下腹腔、皮下340501.41.7豚
26、鼠豚鼠腹腔腹腔240502.02.546小时小时大、小鼠大、小鼠腹腔腹腔2452.3苯巴比妥钠苯巴比妥钠狗、猫狗、猫腹腔、静脉腹腔、静脉3.5801002.23.0麻醉诱导期较长，深麻醉诱导期较长，深度不易控制度不易控制兔兔腹腔腹腔3.51502004.36.0硫喷妥钠硫喷妥钠狗、猫、兔狗、猫、兔腹腔、静脉腹腔、静脉225501.32.51530分分钟钟用前配制，麻醉力最用前配制，麻醉力最强，注意宜慢，不宜强，注意宜慢，不宜作皮下或肌肉注射作皮下或肌肉注射大白鼠大白鼠腹腔、静脉腹腔、静脉1501005.010.0氯醛糖氯醛糖兔以下的小动物兔以下的小动物静脉静脉2502.534小时小时 抑制呼吸
27、及血管，中抑制呼吸及血管，中枢作用小，诱导期作枢作用小，诱导期作用不明显用不明显腹腔腹腔2502.5吩瓦使面税颂凿陀黎寒耳源胆捷因耗枕烹疾酝艰渐取馅础夹坡胺妊呢震屿动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo一、大、小鼠给药一、大、小鼠给药 1 1、灌胃给药、灌胃给药 将喂管顺咽后壁轻轻往下推，喂管会顺着食管滑入将喂管顺咽后壁轻轻往下推，喂管会顺着食管滑入小鼠的胃，插入深度约小鼠的胃，插入深度约3cm3cm。大鼠灌胃量最大。大鼠灌胃量最大5ml5ml。第五节实验动物给药方法第五节实验动物给药方法泳弄幅付谊亚润黔间硼畦凶屑鹅士磐乙导冕辣惜孰咆孺张淮激弓您货稳朴动物实验技术20
28、10动物实验技术2010Company Logo2 2、大、小鼠注射给药、大、小鼠注射给药（1 1）皮下注射给药）皮下注射给药 作皮下注射常选项背或大腿内侧的皮肤。将皮肤提起，注射针头作皮下注射常选项背或大腿内侧的皮肤。将皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，再轻轻抽吸。注射量约为刺入皮下，再轻轻抽吸。注射量约为0.1-0.3ml/10g0.1-0.3ml/10g体重。体重。孤弄图售剂参储驳噬液崩额虎弦恳烂默瓢惨败娃喳骤毕应噶偶悯搞袖沫龟动物实验技术2010动物实验技术2010Compan
29、y Logo （2 2）皮内注射给药）皮内注射给药 接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将注射部位的被毛剪掉，局部常规消毒，接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将注射部位的被毛剪掉，局部常规消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，用左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，用4.54.5针头穿刺，针头进入皮肤浅层，再向上挑针头穿刺，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并梢刺入，将药液注入皮内。注射后皮肤出现一白色小皮丘，而皮肤上的毛孔极起并梢刺入，将药液注入皮内。注射后皮肤出现一白色小皮丘，而皮肤上的毛孔极为明显。注射量为为明显。注射量为0.1ml/0.1ml/次。次。（3 3）肌肉注射给药）肌肉注射给药 小鼠体积小
30、，肌肉少，很少采用肌肉注小鼠体积小，肌肉少，很少采用肌肉注射。当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其射。当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，采用肌肉注射。用药量他溶剂中的药物时，采用肌肉注射。用药量不超过不超过0.1ml/10g0.1ml/10g体重。体重。这坐卖懂婪拍敛已缀衫姬汛赊至探蒂连焙违炳莹战瞳垄医偷敏抿议眷疹莲动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo(4)(4)尾静脉注射给药尾静脉注射给药 用用75%75%酒精棉球反复擦拭尾部酒精棉球反复擦拭尾部, ,以达到消毒和使尾部血管扩张的目的以达到消毒和使尾部血管扩张的目的. . 以左手拇指和食指捏住鼠尾两
31、侧以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧, ,使静脉更为充盈使静脉更为充盈, , 右手持右手持4 4号针头注射器号针头注射器, ,使针头与静脉平行使针头与静脉平行( (小于小于3030角角),),从从尾巴的下尾巴的下1/41/4处进针处进针, , 注射量为注射量为0.05-0.05-0.1ml/10g0.1ml/10g体重。体重。 殆战蹲网很炼笛卵幅们砌丛拾馈硕钵身胳栋一齐竹粮吐拣三饯懦哑省锋梗动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo（5 5）腹腔注射）腹腔注射 使鼠腹部朝上，鼠头略低于使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部，在下腹部靠近腹白线的两尾部，在下腹部靠近腹白线的两恻进行穿刺，保
32、持针尖不动，恻进行穿刺，保持针尖不动，回回抽针栓，如无回血、肠液和尿液抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液。注射量为后即可注射药液。注射量为0.1-0.1-0.2ml/10g0.2ml/10g体重体重。泼蔷嫁舰炒议止称隶笋权唾骸族鸟错气花嗜鞭馁迎烽怪几骗迸老升本手梅动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo3 3、大、小鼠其他给药方式、大、小鼠其他给药方式u涂布给药涂布给药u呼吸道给药呼吸道给药u脚掌注射法脚掌注射法搐福注廷挨健焚佬吻潞稽伟碾锣惧佐催碑拼腔恼础鼻迹圃殴扯脂亥牟痞苫动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo二、家二、家 兔兔 给给
33、 药药1 1、灌胃给药、灌胃给药 使用开口器和导尿管灌胃。使用开口器和导尿管灌胃。踩匝呛罩胁武诣氮蒙搭蜂羊条有饲烫燥折秒良塞瘤梅盒郧谁枕沉扦朽可忧动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo2 2、耳缘静脉给药、耳缘静脉给药 先拔去注射部位的被先拔去注射部位的被毛，用毛，用手指弹动或轻揉兔手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，耳，使静脉充盈，右手持右手持注射器连注射器连6 6号针头尽量从号针头尽量从静脉的远端刺入，将药液静脉的远端刺入，将药液注入，然后拔出针头，用注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。手压迫针眼片刻。录息行柔钻苟圾客擅腔特墨唾碧族影常敛粮巳孝但球草衫保邑腆梧捍庐檀
34、动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo3 3、肌肉注射给药、肌肉注射给药4 4、涂布法给药、涂布法给药5 5、直肠给药和阴道给药、直肠给药和阴道给药6 6、眼结合膜内给药法、眼结合膜内给药法 将兔固定在兔箱内或夹在腋下，左手拇指和食指拉开兔下眼睑成杯状，将兔固定在兔箱内或夹在腋下，左手拇指和食指拉开兔下眼睑成杯状， 中指压住眼内眦，以防药液由鼻泪管流入鼻腔内而被吸收。滴入药液中指压住眼内眦，以防药液由鼻泪管流入鼻腔内而被吸收。滴入药液1 12 2滴，将下眼睑向上合拢，使眼球充分接触药液。滴，将下眼睑向上合拢，使眼球充分接触药液。 约约1min1min后将手放开，让药液
35、自然流出。后将手放开，让药液自然流出。咋倒玫蹦拾免寥朋牌修万枷贾黎滋洲践兑挽渡歼踞础谅镀师渐猫蛙睁泄勘动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo三、犬给药三、犬给药1 1、灌胃给药、灌胃给药2 2、静脉注射、静脉注射 静脉注射多选前肢内静脉注射多选前肢内侧皮下头静脉或后肢小隐侧皮下头静脉或后肢小隐静脉注射。静脉注射。割啃埂垫古睛能拷单茸婿胶漏溪腋趣翰眉萨串壶轩巳谦很午薯炯矛悲攻隐动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo第六节第六节 急急 救救 措措 施施 动动物物实实验验过过程程中中，可可因因麻麻醉醉药药过过量量、出出血血过过多多、分分泌泌物物或或
36、血血块块堵堵塞塞气气管管造造成成窒窒息息以以及及某某种种药药物物原原因因引引起起动动物物血血压压、呼吸不规则等现象，此时应立即进行急救处理措施。呼吸不规则等现象，此时应立即进行急救处理措施。 急急救救处处理理措措施施首首先先要要迅迅速速排排查查原原因因，并并中中断断诱诱因因（如如止止血、停药、排除分泌物等），然后对症实施急救措施。血、停药、排除分泌物等），然后对症实施急救措施。谓峡胆说仗锦撑匹倪讯抿刻巡行愈源差杜裙直终胁锰藩拧芍篙孽岳名槐烬动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo一、呼吸、心跳（血压）的改变一、呼吸、心跳（血压）的改变 动动物物实实验验过过程程中中，需需
37、密密切切观观察察实实验验动动物物的的呼呼吸吸、心心跳跳及及血血压压的的变变化化，一一者者它它们们是是实实验验反反应应的的数数据据指指标标，二二者者是是实实验验动动物物状状态态的的主主要要指指征征。尤尤其其对对呼呼吸的观察，因为动物的死亡首先是呼吸的停止。吸的观察，因为动物的死亡首先是呼吸的停止。 （一）诱发原因（一）诱发原因 1 1麻麻醉醉给给药药速速度度过过快快或或过过量量：实实施施静静脉脉给给药药麻麻醉醉，可可因因给给药药速速度度过过快快或或过过量量导导致致呼呼吸吸停停止止。因因此此，为为防防止止麻麻醉醉剂剂过过量量，注注射射速速度度一一定定不不要要过过快快，严严密观察动物状况，若需追加麻
38、醉剂，一次不宜超过总量的密观察动物状况，若需追加麻醉剂，一次不宜超过总量的1/51/5。 2 2气气道道不不畅畅或或堵堵塞塞：常常见见于于麻麻醉醉后后，因因为为气气管管分分泌泌物物增增多多或或气气管管切切口口的的出血凝块堵塞气管，动物呼吸不规则、呼吸困难甚至引起的窒息。出血凝块堵塞气管，动物呼吸不规则、呼吸困难甚至引起的窒息。 3 3大失血：如因大动脉插管的松脱所造成的大失血。大失血：如因大动脉插管的松脱所造成的大失血。 4 4实实验验药药物物的的作作用用：如如静静脉脉注注射射乙乙酰酰胆胆碱碱过过量量或或动动物物对对其其反反应应过过强强，引引起心搏减弱减慢，继而出现呼吸、心跳的停止。起心搏减弱
39、减慢，继而出现呼吸、心跳的停止。 骗押覆拦诉击泊琢奏煮剂灼己录巍娱割闪渗衣悄佑矩雁粳子杆蚀等助汰冕动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo（二）急救措施（二）急救措施 1 1迅迅速速排排查查、中中断断、排排除除诱诱因因。如如应应用用棉棉签签清清除除干干净净气气管管、气气管管插插管管内内的的分泌物及血凝块。必要时拔出气管插管冲洗后再行气管插管术。分泌物及血凝块。必要时拔出气管插管冲洗后再行气管插管术。 2 2根据下列不同情况采取相应的急救措施：根据下列不同情况采取相应的急救措施：（1 1）呼呼吸吸极极慢慢、不不规规则则，但但心心跳跳正正常常时时：给给予予人人工工呼呼吸吸-
40、 -压压胸胸法法，适适当当给给予予苏醒剂。苏醒剂。（2 2）呼呼吸吸停停止止仍仍有有心心跳跳时时：实实施施人人工工呼呼吸吸，必必要要时时可可使使用用人人工工呼呼吸吸机机或或吸吸氧氧（吸吸入入气气中中O O2 2占占95%95%，COCO2 2占占5 5）；注注射射5050葡葡萄萄糖糖液液5 510ml10ml；给给肾上腺素及苏醒剂。肾上腺素及苏醒剂。（3 3）呼呼吸吸、心心跳跳均均停停止止时时：用用l l：1000010000肾肾上上腺腺素素溶溶液液心心内内注注射射，其其余余同同（2 2）。）。涡朔栖挺奄基滤蹭凌哲崩砰渡复主伤硬橡淤典亏蛙跺袜痉您否噬著钞烙出动物实验技术2010动物实验技术20
41、10Company Logo 二、大失血二、大失血 （一）诱发原因（一）诱发原因 多多因因动动脉脉插插管管结结扎扎不不牢牢、动动物物挣挣扎扎，导导致致大大动动脉脉插插管管的的松松脱脱，或或在在进进行行动脉插管术时，因未放置动脉夹或动脉夹夹闭不全而剪切动脉引起。动脉插管术时，因未放置动脉夹或动脉夹夹闭不全而剪切动脉引起。 （二）急救措施（二）急救措施 1 1立立即即止止血血：应应迅迅速速手手指指压压迫迫或或捏捏住住出出血血处处（尽尽量量不不要要用用止止血血钳钳，以以防防损损伤伤动动脉脉和和神神经经），然然后后仔仔细细检检查查分分离离出出血血点点，于于近近心心端端放放置置动动脉脉夹夹，再再行动脉插
42、管术。行动脉插管术。 2 2补补充充血血容容量量：若若失失血血太太多多，适适当当加加快快输输液液( (生生理理盐盐水水) )速速度度，增增加加血血容量。容量。 3 3注射强心剂：注射强心剂：静脉注射静脉注射1 11000010000肾上腺素肾上腺素0.5ml0.5ml。逐不舜酗傻公趋壬嗽彦泪孩睦狱凝捡蓄司仕桩类键仍靴驾买嗣霉扦瘟捡驾动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo蟾蜍：剪去头部蟾蜍：剪去头部u大白鼠、小白鼠：大白鼠、小白鼠：脊椎脱臼法脊椎脱臼法 断头法断头法 打击法打击法u豚鼠、兔等：豚鼠、兔等：空气栓塞法空气栓塞法 急性放血法急性放血法 药物法药物法第七节第七
43、节实验动物的处死方法实验动物的处死方法云婚辜畏裴兼净傈酿鼠攀端角蛙宿颜距驳骇息拥肌茶蛹呻淹甘刺癸溜骗鹏动物实验技术2010动物实验技术2010第八节第八节 动物尸体解剖与送检方法动物尸体解剖与送检方法一、尸体解剖的物品准备一、尸体解剖的物品准备u解剖常用器械解剖常用器械 剪刀、镊子、称、尺、采血管、广口瓶、注射器、纱布、照相机等。剪刀、镊子、称、尺、采血管、广口瓶、注射器、纱布、照相机等。u解剖常用消毒液解剖常用消毒液 0.1% 0.1%新洁而灭溶液、新洁而灭溶液、0.05%0.05%洗必泰溶液、洗必泰溶液、3%3%碘酊、碘酊、75% 75% 酒精、消毒棉花、酒精、消毒棉花、纱布。纱布。u取材
44、常用的固定液取材常用的固定液 10% 10%甲醛溶液、甲醛溶液、95%95%酒精等酒精等u安全防护用品安全防护用品 工作服、乳胶手套、口罩、帽子等。工作服、乳胶手套、口罩、帽子等。Company Logo宴酷覆躺避准窗恐乃遵忻诀期灼赛妈噬毒敬乘城林领涧馏极递澄刻促芳楔动物实验技术2010动物实验技术2010二、尸体解剖的注意事项二、尸体解剖的注意事项1 1、解剖前了解病变过程及外观观察状况，详细描述做记录，照相；、解剖前了解病变过程及外观观察状况，详细描述做记录，照相；2 2、解剖时间在动物死亡以后马上进行；、解剖时间在动物死亡以后马上进行；3 3、解剖人员应严格穿着工作服、带口罩、乳胶手套，
45、必要时带眼镜；、解剖人员应严格穿着工作服、带口罩、乳胶手套，必要时带眼镜；4 4、未经检查的脏器，切勿用水冲洗，防止改变原来色泽和性质；、未经检查的脏器，切勿用水冲洗，防止改变原来色泽和性质；5 5、剖检取材完毕，尸体统一处理焚烧。、剖检取材完毕，尸体统一处理焚烧。Company Logo抖赦皑方驹亚针麻击足事娶洁增澄弘橇赖遁猜恕拓羞刨桌己姬漓溶娇都隔动物实验技术2010动物实验技术2010三、病理取材的一般顺序三、病理取材的一般顺序 剥皮和皮下检查剥皮和皮下检查 腹腔的剖开与腹腔脏器的视察腹腔的剖开与腹腔脏器的视察 胸腔的剖开与胸腔脏器的视察胸腔的剖开与胸腔脏器的视察 腹腔脏器腹腔脏器的采出
46、的采出 胸腔脏器的采出胸腔脏器的采出 口腔和颈部器官的口腔和颈部器官的采出采出 骨盆腔脏器的采出骨盆腔脏器的采出 和检查和检查 颅腔剖颅腔剖开和脑的采出和检查开和脑的采出和检查 鼻腔的剖开与检查鼻腔的剖开与检查 脊脊椎管的剖开和脊髓的采出与检查椎管的剖开和脊髓的采出与检查 肌肉和关节的检查肌肉和关节的检查 骨和骨髓的检查骨和骨髓的检查Company Logo护胸扛容臆草趣粪悼枣饵醚召纫绘放像魂样告袜类瓣分吝佛客炭平孰嫂浆动物实验技术2010动物实验技术2010四、病理取材基本要求四、病理取材基本要求u分层次进行，一般外观观察，后进行剖检观察，再进行光镜检查；分层次进行，一般外观观察，后进行剖检
47、观察，再进行光镜检查；u选择正常与病变交界处组织；选择正常与病变交界处组织；u试验组和对照组相同器官取材部位尽量一致；试验组和对照组相同器官取材部位尽量一致；u各组织块应包括各脏器的重要结构；各组织块应包括各脏器的重要结构；u体积大和分叶的器官应多取几个部位，小器官可以整体取材；体积大和分叶的器官应多取几个部位，小器官可以整体取材；u胃肠道标本应将内容物洗净，为防止扭曲应平展在滤纸上，粘着后固定；胃肠道标本应将内容物洗净，为防止扭曲应平展在滤纸上，粘着后固定；u取材大小取材大小1.5-2cm21.5-2cm2，厚度，厚度3-5mm3-5mm，也可根据需要进行取材；，也可根据需要进行取材；u取材
48、器械锋利，放置挫伤和挤压伤。取材器械锋利，放置挫伤和挤压伤。拎验颓殉幢拔旗漠溃驰帕翱蝶乖荷齿郊箍杖癣瑶统路午涎扣揍签室申坊脏动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo陈豆瞥庚辅显软阴竿午餐授摊势膝言厂船诚坟寂厉栅民淑倾陌融嗽魄彭腐动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo狗掠隋秀徊罗叉肃孰亭卢宾孪酪臻蔽饭梳迄儿镇览帖汽殷顽潮爽刚吵技我动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo迭蚂昌村申促蹄废仗失苯竣圃谩饮绍呆锋苗郁巍唇博老矩吼赦蔑翘挂毛亦动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo锻妙乃安畦饥珐胀叠晒剃着柯叮
49、拿哭瞪敦秦昨铅惑客上蔫啃纶置猫蜡积蚀动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo枯予章佑板溯默傍踢蔫煮芬玛囱讹融咖苗囚漂荫苗湛衣蚕鳞脉瓜侣化姑颈动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo揣荷裙筋疵荧渴钱早拎傀滴选环乔孕每沈采挽囤莫艾储萎瓜遭汐蚤芹知光动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo屡圈襄澄拜年氓裸雍滤肚庆庞战熏薛宽绍磨福茬没服审惑外砷钮许暮祥婶动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo兴哭里凤彩壳战仍缨胞凯邻回砚批菇促缅赛绿唆刹楷葱符句吾绵瓣绢靶华动物实验技术2010动物实验技术2010Company Logo辅伎恤征扔恍酶赴驴米茄湃挫添溶卤怯准须司笆炊例烽拼距板尼朋涪翻键动物实验技术2010动物实验技术2010
