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1、HPV与宫颈癌的相关性年轻性活跃的女性HPV感染率最高，感染高峰年龄为1828岁多属于一过性感染，通过自身免疫将HPV消灭只有(zhyu)持续感染HPV的妇女,才成为子宫颈癌高发人群HPV感染到发展成为子宫颈癌需要925 年时间 30%发展成为CIN1,10%发展成为CIN2,10%进一步发展成为CIN3，1%发展成为子宫颈癌第1页/共16页第一页，共17页。HPV结构(jigu)与亚型共价双链环状DNA 病毒, 电镜下观察外形呈20 面体对称型3个部分组成:早期区( E区) ,晚期区(L区)及上游调控区(非编码区)按HPV在诱发生殖道恶性肿瘤中的危险性不同分为高危型和低危型两组。 高危型:呈
2、持续性,不易(b y)自然缓解,CIN2、CIN3及宫颈癌; 低危型:自然缓解率较高,湿疣病变和CIN1国外：16 和18 型感染为主 我国：16, 58型为主第2页/共16页第二页，共17页。临床(lnchun)常用的HPV检测方法病理学检查细胞学检查免疫组化检测聚合酶链反应( PCR)技术DNA芯片分型检测杂交(zjio)捕获DNA分析第3页/共16页第三页，共17页。病理学检查(jinch)鳞状上皮疣状乳头状增生表皮(biop)角化不全棘层不规则增厚基底层增生上皮脚延长中表层出现灶状分布的挖空细胞等。第4页/共16页第四页，共17页。细胞学检查(jinch)挖空细胞(xbo)、角化不良及
3、湿疣外底层细胞(xbo)细胞(xbo)学诊断HPV感染敏感性较差第5页/共16页第五页，共17页。免疫组化检测(jinc)检测HPV的衣壳抗原来进一步明确HPV感染所得阳性反应定位明确,判断可靠必须(bx)在HPV-DNA 复制成熟后才有衣壳装备敏感性较低第6页/共16页第六页，共17页。聚合酶链反应(PCR)技术(jsh)设计与HPV-DNA互补的一对特异性核苷酸引物,以HPV-DNA为模板以指数增长(zngzhng)的速率进行体外扩增敏感性最高,可对HPV进行分型,测定病毒载量,发现新基因型,对基因进行序列分析缺点为样品间易交叉污染导致假阳性第7页/共16页第七页，共17页。DNA芯片(x
4、npin)分型检测一种微量分析技术(jsh),以玻片作为DNA载体,固定了22型HPV-DNA探针(包括15种高危型HPV及7种低危型HPV )及一个球蛋白的对照探针可同时对HPV进行检测及分型可对多个型别的混合感染同时进行监控第8页/共16页第八页，共17页。杂交捕获(bhu)DNA分析标本中的HPV-DNA 与液相中的RNA探针结合,形成特异性的RNA-DNA杂交体,被微孔板内的特异抗体(kngt)所捕获,然后被所加的发光底物检测,其发光的强度与标本中的DNA 量成比例,因而可对HPV进行半定量检测效率高,适于大量人群检测,临床上操作简便第9页/共16页第九页，共17页。高危型HPV检测的
5、临床(lnchun)应用宫颈癌及癌前病变(bngbin)筛查ASC - US的分流管理宫颈病变(bngbin)治疗后的随访第10页/共16页第十页，共17页。宫颈癌及癌前病变(bngbin)筛查高危型HPV-DNA 检测可用于30岁以上妇女(fn)的宫颈癌筛查。若细胞学和高危型HPV-DNA均阴性,进展为C IN3 的危险性极低,可延长筛查时间的间隔。第11页/共16页第十一页，共17页。ASC-US的分流(fnli)管理对于意义不明的非典型鳞状细胞(ASC-US)美国ASCCP推荐以下3种进一步评估的方法(fngf): 立即阴道镜检查; 重复细胞学检查; 高危型HPV-DNA ( hc22)
6、分流管理第12页/共16页第十二页，共17页。宫颈病变治疗(zhlio)后的随访在行锥切术前及子宫切除术时均应用hc-2系统(xtng)进行高危型HPV-DNA检测第13页/共16页第十三页，共17页。小结(xioji)持续(chx)性高危型HPV感染是C IN进展的必要条件HPV-DNA的病毒载量与HPV的持续(chx)感染及宫颈病变进展也密切相关高危型HPV-DNA以及病毒载量的检测对宫颈癌的筛查和防治都有着非常重要的意义第14页/共16页第十四页，共17页。第15页/共16页第十五页，共17页。感谢您的观看(gunkn)！第16页/共16页第十六页，共17页。内容(nirng)总结HPV与宫颈癌的相关性。按HPV在诱发生殖道恶性肿瘤中的危险性不同分为高危型和低危型两组。国外：16 和18 型感染为主。挖空细胞、角化不良及湿疣外底层细胞。检测HPV的衣壳抗原来进一步明确HPV感染。对于(duy)意义不明的非典型鳞状细胞(ASC-US)美国ASCCP推荐以下3种进一步评估的方法:。高危型HPV-DNA ( hc22)分流管理。在行锥切术前及子宫切除术时均应用hc-2系统进行高危型HPV-DNA检测第十七页，共17页。
