实验动物的基本操作及家兔实验性肺水肿

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1、实验动物的基本操作实验动物的基本操作 实验性肺水肿实验性肺水肿基础医学院机能学实验室基础医学院机能学实验室 任衍开任衍开机能学实验室规章制度机能学实验室规章制度1、上课不许迟到,早退,如果有事请请假2、实验课一定要穿白大衣,不许穿拖鞋3、试验中要严肃认真,积极主动,事实求事4、爱护实验器材和仪器,并且珍惜实验动物5、班长负责分发器械并且清点回收6、保持室内清洁,班长负责安排小组清理7、按照要求书写实验报告并且按时上交8、熟读墙上的规章制度一、实验目的一、实验目的1、熟悉和掌握实验动物的基本操作、熟悉和掌握实验动物的基本操作2、学习肺水肿动物模型的复制方法、学习肺水肿动物模型的复制方法3、观察肺

2、水肿的表现,并分析其发病机制、观察肺水肿的表现,并分析其发病机制二、实验原理二、实验原理水肿发生机制:水肿发生机制: 1、血管内外液体交换失平衡、血管内外液体交换失平衡 2、体内外液体交换失平衡、体内外液体交换失平衡影响水肿的因素:影响水肿的因素: 1、毛细血管血压升高、毛细血管血压升高 2、血浆胶体渗透压下降、血浆胶体渗透压下降 3、毛细血管壁通透性增加、毛细血管壁通透性增加 4、淋巴回流受阻、淋巴回流受阻器材:哺乳类动物手术器械一套、静脉插管和静器材:哺乳类动物手术器械一套、静脉插管和静脉输液装置、注射器、听诊器、灌胃器等脉输液装置、注射器、听诊器、灌胃器等药品:药品:20%乌拉坦、生理盐

3、水、乌拉坦、生理盐水、0.1%肾上腺素肾上腺素三、器材和药品三、器材和药品四、实验动物四、实验动物 小鼠、家兔小鼠、家兔三、器材和药品三、器材和药品(一)、实验动物的基本操作 小白鼠小白鼠(1)抓取(2)灌胃 (3)腹腔注射(0.2ml/10g)(4)处死五、实验步骤五、实验步骤 家兔家兔1、抓取、抓取 称重称重 固定固定2、颈部手术、颈部手术u气管插管气管插管u颈外静脉插管颈外静脉插管u动脉插管动脉插管麻醉麻醉5ml/kg1.分离右侧颈外静脉分离右侧颈外静脉2.穿两根线备用,远心端为线穿两根线备用,远心端为线1,近心端为线,近心端为线23.动脉夹夹闭近心端,待血管充盈后,线动脉夹夹闭近心端,

4、待血管充盈后,线1结扎远心端结扎远心端4.远心端剪一远心端剪一“V”形口形口,静脉插管,线,静脉插管,线2结扎固定(二次固定)结扎固定(二次固定)1.分离左侧颈总动脉分离左侧颈总动脉2.穿两根线备用,远心端为线穿两根线备用,远心端为线1,近心端为线,近心端为线23.线线1结扎远心端,待血管充盈后,动脉夹夹闭近心端结扎远心端,待血管充盈后,动脉夹夹闭近心端4.远心端剪一远心端剪一“V”形口形口,动脉插管,线,动脉插管,线2结扎固定(二次固定)结扎固定(二次固定)静脉插管步骤静脉插管步骤动脉插管步骤动脉插管步骤3、输液、输液缓慢输液:缓慢输液:510滴滴/分钟,分钟,5分钟,恢复家兔的生理状分钟,

5、恢复家兔的生理状态态快速输液:快速输液:180200滴滴/分钟,输液量为分钟,输液量为100ml/kg,在,在快速输液即将结束时,实验组需要注射快速输液即将结束时,实验组需要注射0.1%肾上腺素肾上腺素(1ml/kg),而对照组不需要,继续输液,以),而对照组不需要,继续输液,以1015滴滴/分钟速度维持输液。分钟速度维持输液。4、观察、观察 肺部出现湿啰音或气管插管处出现粉红色泡沫痰时,肺部出现湿啰音或气管插管处出现粉红色泡沫痰时,提示家兔出现肺水肿,即可处死家兔。提示家兔出现肺水肿,即可处死家兔。5、取肺:、取肺: 用止血钳夹闭家兔气管,从剑突处自下往上剪开皮肤,用止血钳夹闭家兔气管,从剑

6、突处自下往上剪开皮肤,打开胸腔暴露肺脏,小心分离肺和心脏。打开胸腔暴露肺脏,小心分离肺和心脏。6、计算肺系数:、计算肺系数: 取出肺之后用滤纸吸干肺表面水分,称出肺重。取出肺之后用滤纸吸干肺表面水分,称出肺重。 肺系数肺系数=肺重(肺重(g)/体重(体重(kg)n麻醉时要时刻关注家兔的生理状态,以防家兔死亡。麻醉时要时刻关注家兔的生理状态,以防家兔死亡。n静脉输液装置输液前应排净里面的空气。静脉输液装置输液前应排净里面的空气。n实验组和对照组的生理盐水输入速度应保持相对一致。实验组和对照组的生理盐水输入速度应保持相对一致。n第一次使用肾上腺素后肺水肿不明显者,可重复使用,第一次使用肾上腺素后肺水肿不明显者,可重复使用,两次间隔大约两次间隔大约15分钟。分钟。n取肺时应夹闭气管,不要损伤肺,防止水肿液流出,影取肺时应夹闭气管,不要损伤肺,防止水肿液流出,影响肺系数的测定。响肺系数的测定。六、注意事项六、注意事项七、课后总结七、课后总结家兔肺水肿的发生机制:1、毛细血管血压增高2、血浆胶体渗透压下降3、肾上腺素的作用

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