柑桔原生质体操作

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1、柑桔原生质体操作一、材料的准备1. 胚性悬浮系的建立:从固体培养基上取继代 20 天左右生长旺盛的愈伤 组织于 MT +ME 0.5g /L+ 谷氨酰胺 1.5 g/L +蔗糖 40g/L 的液体培养基中 (每 瓶 50 ml ), 100 转振荡培养,每两周继代一次, 3 代后用于分离原生质体。2无菌苗的获得:柑桔种子无菌条件下播种于MT培养基上,20-30天后叶 片充分展开后用于分离原生质体。二、原年质体的分离1. 悬浮系原生质体的分离:用吸管吸取1g左右的继代6-10天的悬浮培 养物于15x60 mm的培养皿中,吸干培养基,加入1.5 ml 0.7 EME和1.5 ml酶 混合液,轻轻摇

2、匀,圭寸口膜圭寸口,置于摇床上(20-30转)或静置,28C暗条件 下酶解 16-24 小时。2. 叶肉原生质体的分离: 1.5 ml 0.6 EME 加入一 15x60 mm 的培养皿中, 在此培养皿用解剖刀将叶片切成 0.05-0.1cm 的细条,后加入 1.5ml 酶混合液, 轻轻摇匀,封口膜封口,置于摇床上(20-30转)或静置,28 C暗条件下酶解16-24 小时。三、原生质体的纯化:1. 酶解后的原年质体经孔径为45 “m的不锈刚网去掉渣质,CPW13洗涤 以收集大量原生质体, 滤液在 10ml 离心管中离心(100 转) 10 分钟,使原生质 体沉于管底。2. 沉淀物用 3ml

3、CPW25 悬浮,在其上轻轻加入 1ml CPW13 , 100 转离心2-6 分钟,原生质体在两液面间形成一条带,其它杂质及少量原生质体沉于管底。 (注:如果此种情况下无法形成界面,则原生质体沉淀物用 CPW13 悬浮)3. 将原生质体轻轻吸出,置于另一离心管中,用电融合液离心洗涤 6-8 分钟,去掉上清液,用电融合液悬浮至5-10 x 105个/ml备用。(用血球计数 板调密度,一个大方格中原生质体数x10000即是原生质体密度)四、原生质体活性检查FDA用丙酮配制成5 mg/ml的浓度。按25 “1 FDA /ml原生质体的比例 加入 FDA, 5 分钟后在万能显微镜下检查原生质体活性(

4、暗视野下发荧光原生质 体数/明视野下原生质体总数)。注:叶肉原生质体发红色荧光,而悬浮原生质体发黄色荧光。五、原生质体融合一)PEG 法1. 将悬浮好的双亲原生质体等体积混合2. 用吸管滴2滴混合好的原生质体于15 x 60cm塑料培养皿中央,立 即加入 40% 的 PEG 2 滴诱导融合3. 10分钟后,加入稀释液(9A/1B) 2滴4. 15分钟后,从边缘缓缓加入12滴EME培养基,保持20分钟后用吸管沿边缘小心移走5. 从边缘再加入15滴EME培养基,保持10分钟后小心移走。6. 重复步骤 5 两次7. 最后加10-15滴BH3培养基,在培养皿中央形成一小池,沿培养皿 边缘加入15-20

5、滴BH3培养基,保持培养皿内的湿度,封口膜封口。二) 电融合法1. 将双亲原生质体用电融合液悬浮,混合备用(胚性愈伤组织原生质 体1-5 x 105个/ml; 叶肉原生质体10-20 x 105个/ml).2. 融合小室先用融合液洗涤,以防原生质体聚集于电极两侧的角落里, 然后取大约0.8 ml (FTC-03 )或1.6 ml (FTC-04 )悬浮液于环形融 合小槽,融合小室中央加几滴电融合液以保持湿度, parafilm 封口。3. 静置5-10分钟,待大量原生质体沉淀后,在选择好的电融合参数下诱导融合,倒置显微镜下观察融合过程。4. 融合后,静置 15-20 分钟以利于融合的原生质体圆

6、球化。5. 轻轻吸出融合产物于 10ml 离心管中离心 5-6 分钟,用培养基悬浮 至 0.5-1 x 105 个 /ml .六、原生质体培养1. 原生质体培养常采用液体浅层培养或固体包埋培养法。2. 原生质体培养在暗培养箱中进行,3-10 天后原生质体再生细胞壁,并开 始第一产次分裂。3. 等原生质体分裂形成多细胞团时(大约 20-30 天),开始降低培养基的 渗透压,具体:1)各加入5-10滴0.6 M BH3和0.3M EME培养基,降 压至 0.45 M2)7 - 15天后再各加入5-10滴0.6 M BH3和0.3M EME培养基,降 压至 0.3 M3)此后要及时稀释,降低细胞团的

7、浓度,以利于胚状体发生,等细胞团长到一定大小时,转入 EME500 上诱导胚状体的发生。4)细胞团长出球形胚、心形胚后,及时转入EME 1500培养基上,以利于胚状体的进一步发育和转绿。5)将发育到子叶胚时期的胚状体转入生芽培养基 (MT+BA0.5mg/L+KT0.5mg/L+NAA 0.1mg/L)中诱导丛生芽。6)将丛生芽转入生根培养基(1/2MT+IBA0.1mg/L+NAA0.5mg/L+蔗糖20g/L+琼脂7g/L)中诱导生根或嫁接到试管中的砧木上。7)再生苗的鉴定及移植于温棚中。七、再生苗的鉴定方法1 形态学观察:叶形、气孔等。2 细胞学观察:海氏苏木精法3 分子标记鉴定: RA

8、PD, AFLP, SSR, CAPS, RFLP 等八、相关培养基的配方1. 酶液混合液(仅供参考,不同时间购买的酶活力不同,故浓度会有不同 程度的变化)40ml60ml甘露醇(12.7%)5.10g7.68gNaHPO.2HO (0.011%)0.0044g0.0066g242CaCl . 2H O (0.36%)220.144g0.216gMES (0.12%)0.048g0.072gCellulase R-10 (1.5%)0.6g0.9%离析酶 R-10 (3%)1.2g1.8g2. EME培养基:MT+500mg ME (麦芽提取物)0.3 EME:MT+500mg ME/L+ 1

9、02.5 g 蔗糖/L0.6 EME:MT+500mg ME/L+ 205.38 g 蔗糖/L0.7 EME:MT+500mg ME/L+ 239.61 g 蔗糖/LEME 500:MT+500mg ME/L+50g 蔗糖/L+7g 琼脂/LEME 1500: MT+1500mg ME/L+50g 蔗糖/L+7g 琼脂/L3. 电融合液 (100ml)甘露醇 (0.7M):12.74g无水 CaCl (0.25mM):0.02775g菌2PH值:5.8,高压灭4.CPWstockI(100ml)CPW stock II (100ml)KHPO0.272g24KNO31.0gMgSO 7HO2.

10、5g42KI0.002gCuSO 5HO420.00003g无水 CaCl1.5g2CPW13 (100ml): CPW stock I 1ml + CPW stock II 1ml +13g 甘露醇CPW26 (100ml): CPW stock I 1ml + CPW stock II 1ml + 26g 蔗糖5 PEG 融合液( 100ml)HO280ml无水 CaCl20.97gGlucose5.41g定溶至 100ml,加热溶解,PH6.0,过滤灭菌62.25g稀释液 A :Glucose7.21g稀释液 B: Glycine滤灭菌( 100ml)(KOH)无水 CaCl20.97g

11、PH 10.0 过DMSO10mlPH 6.0 过滤灭菌使用前按 9A:1B 混合澄清7 BH3 培养基( 1升)MEl.Og蔗糖51.34g甘露醇81.99g谷氨酰胺3.1gMgSO 7HO0.37g42KH PO0.17g24KCl1.5gMT微量元素10mlMT Ca +MT vit +MT 铁盐各10ml水解酪蛋白0.25gVit Stock A2.0mlVit Stock B1.0mlKI Stock1.0ml有机糖贮存液10ml有机酸贮存液10m椰子汁20ml定容到1000 ml,pH5.8过滤火菌#KIst ock75 mg/ 100ml#有机酸贮存液(mg/100ml)丙酮酸钠盐柠檬酸 苹果酸 延胡索酸200400400400#有机糖贮存液(mg/100ml)果糖2500核糖2500木糖2500甘露醇2500鼠李糖2500纤维二糖2500半乳糖2500甘露醇2500#Vi t st ock A生物素 核黄素 叶酸 对氨基苹果酸 氯化胆碱 VCMg/100ml11020150100Caloium pantathenase50#Vit Stock BVit AMg/100ml1Vit D31Vit B122

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