《试验动物保定方法.doc》由会员分享，可在线阅读，更多相关《试验动物保定方法.doc（6页珍藏版）》请在金锄头文库上搜索。
1、一、实验动物的捉拿、固定及给药方法 1.小白鼠：右手抓住鼠尾，放在台上或鼠笼盖铁丝网下，然后用左手拇指沿其背部向前抓住其颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住其尾固定在手上。另一抓法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾尖，后用手掌及小指夹住其尾巴，再以拇指及食指捉住其颈部皮肤。前一方法易学，另一方法稍难，但便于快速捉拿给药。 小鼠灌胃（PO）法：将小鼠固定后，右手持装有灌胃器的注射器，自口角外插入口腔，沿上颚插入食道。如遇阻力，可将注射器拔出再插，以免穿破食道或误入气管，造成动物死亡。灌胃容量一般为0.10.2ml/10g，不超过0.5ml/只。 小鼠皮下注射法：两人合作，一人一手抓住小白鼠头部皮
2、肤，另一手抓住鼠尾。另一人注射药物。注射部位在背部皮下组织。如一人操作时，左手抓鼠尾，让鼠爬在铁丝笼上，右手将抽好药液的注射器针头插入背部皮下组织。如一人操作时，左手抓鼠尾，让鼠爬在铁丝笼上，右手将抽好的药液的注射器针头插入背部皮下将药注入。注射量不超过0.5ml/只。 小鼠腹腔注射法：左手持鼠，右手持注射器从下腹左或右侧（避开膀胱）朝头部方向刺入，宜先刺入皮下，经23mm再刺入腹腔，此时针头与腹壁的角度约45度。针尖插入不宜太深或太近上腹部，避免刺破内脏，注射量一般为0.10.25ml/只。 小鼠尾静脉注射法：将小鼠置于固定器内，使其尾巴露出，用70%酒精擦尾部，或将鼠尾浸入50热水中。待尾
3、部静脉扩张后，左手拉尾，右手进针。注射容量不超过0.5ml/只。 2.兔：用手抓起它脊背近后颈处皮肤，抓的面积越大其持重点越分散。如家兔肥大，应再以另一手托住它的臀部，将持重点承托于手上。 将兔作仰卧位，一手仍抓住颈部皮肤，另一手顺其腹部抚摸至膝关节，压住关节。另一人用绳带捆绑四肢，使兔腹部向上，固定在兔手术台上。头部则用兔头固定夹固定。 兔灌胃法：二人合作，一人固定家兔于两膝之间，一手固定兔头，使头部后仰，另一手将开口器插入兔口，并向后翻转数次，使兔舌伸直并压在开口器下面。另一人将胃管从开口器中央孔也插入口内缓慢插入食道和胃。插管时感觉顺利，动物不挣扎，也不屏气，表示胃管在胃内，为慎重起见，
4、将胃管外端放入水中，当兔呼气时，未见气泡出现，即证实胃管在胃内，然后将药液缓缓经胃管注入。灌胃容量一般为10ml/kg。 兔耳静脉注射法：两人合作，一人固定兔身及兔头，一人将兔耳后缘之毛拔去，显露耳缘静脉，用手指轻弹耳壳，使血管扩张。助手左手指压住耳缘静脉根部，待血管明显充血后，将抽好药液的注射器从静脉近耳尖处插入血管。针头刺入血管以后，以左手拇指和食指将针头与兔耳固定，不让针头滑动。放开耳根静脉手指压力，即可注放药液，若针头确实在血管内，则推药通畅无阻力，并见血液被药液冲走，如沆入皮下则耳壳肿胀、推注不顺，需拔出重新注射。注射守毕，用手指按在针眼上，然后将针尖抽出，并继续用手指或加棉球轻轻按
5、压23分钟，以防出血，注射量0.52.5ml/kg。 3.大白鼠：以左手或持夹子抓住鼠尾，左手戴防护手套或用厚布盖住鼠身作防护，握住其整个身体，并固定其头骨，防止被咬伤，注意不要握力过大，勿捏其颈部以免窒息致死，根据实验需要可指定于大鼠固定笼内或用绳绑其四肢，固定于大鼠手术台上。 大白鼠灌胃、腹腔注射、静脉注射均可一人操作，基本方法与小鼠相似。也可将大鼠腹股沟切开，从股静脉注射药物，也可从外颈静脉插管给药（麻醉后）。 4.豚鼠：以右手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢挟在豚鼠头与右手拇指和食指之间，整个抓住颈胸部（不要抓得太紧以免窒息），左手抓住两后肢，使腹部向上，而后进行操作。 豚鼠腹腔注射可二人操
6、作，一人固定，将动物置于仰卧位，另一人注射。雄性豚鼠可作阳茎背静脉注射给药。 5.狗：绑狗嘴法：先将绳子绕过狗嘴，在嘴上部打一活节，再绕到嘴下部打结，最后绕到颈后打结固定，才能避免绳子脱掉。 固定法：急性实验时，将麻醉狗固定在手术台，四肢绑上绳。前肢的两条绳在狗背后交叉，然后将对侧前肢压在绳下面，再将绳拉紧，缚在手术台边缘楔子上。头部用背夹或绳扎其颌骨固定之。 狗静脉注射法：常用的注射部位是后肢小隐静脉，该血管从后肢外踝后侧走向外上侧，也可用前肢静脉，在脚爪上方背侧正前位，静注时先局部剪毛，一人用手抓紧腿使血液回流受阻，此时可看出血管走向。另一人随即将药液注入静脉。附：资料片实验动物捉拿：1.
7、小白鼠的捉拿 2.豚鼠的捉拿 3.家兔的捉拿 4.猫的捉拿 5.犬的捉拿实验动物给药: 1.灌胃给药 2.皮下注射 3.肌肉注射 4.静脉注射 5.腹腔注射 6.蟾蜍的淋巴囊注射实验动物的性别辨认实验动物的标号 有口服和灌胃两种方法。适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、狗等动物。口服法可将药物混入饲料中或溶于饮水中任动物自由摄取，此法简单，也不会因操作失误而导致动物死亡。但由于动物的状态和嗜性的不同，饮水和饲料的摄取量不同，大部分很难准确掌握给药量。另外，室温下易分解物质的给药，小量被检物质的给药，都很难准确平均添加。为保证准确掌握给药量，则常用灌胃法。灌胃法由于能掌握给药时间，故能记录发现症状的时间
8、经过。灌胃法与添加给药方式相比，每天除给药耗费时间以外，还对动物造成一定程度的机械的和心理的影响，要减少这些不良影响，有必要充分掌握灌胃技术。现在有各种不同型号的灌胃针头可把药物直接送到动物胃内，注意针头顶端小球的直径应大于所用动物的气管直径，这样药物便不会灌人肺内。小鼠：用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和头部皮肤，以无名指或小指将尾巴紧压在掌上，使腹部朝上，头部向上有一个倾斜度，右手取注射器进行灌胃。先从小鼠口角插人口腔内，然后用灌胃管压其头部，使口腔与食道成一直线，再将灌胃管沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃管继续经口进入时，稍感有抵抗，此位置相当于食道通过膈肌的部位。把灌胃管伸到底，使其达胃，如
9、此时动物安静，呼吸无异常，可将药物注人。如小鼠挣扎或遇有阻力应抽出灌胃管再试插之，若强行操作，会损伤食道或膈肌，造成小鼠死亡。在灌入药物之后，轻轻地将管子抽回。如插入气管注射后动物立即死亡。此种灌胃方法的要点是：动物要固定好，头部和颈部保持平行，进针方向正确，操作时不宜粗暴。大鼠：大鼠灌胃方法与小鼠相似，只是大鼠灌胃针头比小鼠的略粗一些。抓取大鼠时，除将左手拇指和食指抓住两耳和头部皮肤外，其它三指要抓住背部皮肤，将大鼠抓持在手掌内。在进行灌胃时，首先将灌胃管放在门齿与臼齿间的裂隙，使灌胃管沿着口腔上都向后达到喉头。在将灌胃管送入食道之前，让大鼠吞烟，如果大鼠不吞咽，轻轻转动管子刺激吞咽动作。注
10、意左手不要抓得太紧，以颈部皮肤向后拉，勒住食管，灌胃针不易插人并容易损伤食管。为防止插入气管，可将注射器的内栓轻轻回抽一下，证实没有空气逆流后注药。豚鼠：豚鼠灌胃时，助手以左手从动物的背部把后腿伸开，并把腰部和后腿一起固定，用右手的扬指和食指夹住两前腿固定之。术者右手所持的豚鼠用灌胃管沿动物上腭壁滑行插入食道，进而插入胃内灌药。也可用木制开口器，把导尿管通过开口器中央的孔插入胃内。上述两种方法皆需回抽证实注射器内无空气时才能慢慢注入药液。最后需注入生理盐水2ml，将管内残留的药液冲出，以保证投药剂量的准确。若给固体药物时，把豚鼠放在金属网上，以左手掌从背部握住豚鼠的头颈部而固定之，以拇指和食指
11、压迫其口角都使目张开。用摄子夹住固体药物，放进豚鼠舌根部的凹处，使动物迅速开口而咽下。当证实咽下后即放开手。兔：兔的固体药物口服法与豚鼠基本相似。液体药物灌胃法需二人协作进行。一人坐好，将兔的躯体夹于两腿之间，左手紧握双耳，固定其头部，右手抓住前肢。另一人将开口器横放于兔口中，将舌头压在开口器下面，把开口器固定。将合适的胃管或导尿管经开口器中央小孔慢慢沿上颚壁插入食道约1518cm。为避免误入气管，可将胃管的外口端放入清水杯中，若有气泡逸出，则证明在气管内，应拔出重新插入，若无气泡则用注射器将药物灌入，然后再注入少量清水，将胃管内药液冲入胃内。灌胃完毕后先拔出胃管，后拿出开口器，以免胃管被动物
12、咬坏。现将各种动物一次灌胃能耐受的最大容积列表如下，以供参考。各种动物一次灌胃能耐受最大容量动物种类体重（g）最大容积（ml）动物种类体重（g）最大容积（ml）家兔35002500350020002400200150100大鼠3002503002002491001998.06.04.05.03.0小鼠30253020241.00.80.5豚鼠3002503006.04.05.0 随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是
13、一种重要的途径。在国内文献上却很少见到具体的描述。在此，作者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法介绍如下。一、灌胃器具制作1.1小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个，一是从市面上购买特制的I2l6号灌胃针。二是自制。自制方法为：取l2号普通注射针头，首先将针头尖部去掉，然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光，再用沙纸磨光滑，有条件时可在针尖处点焊成球型。加工成有20度弧度的灌胃针，连接1ml或5ml的注射器，即成为大小鼠的灌胃器。在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀，否则就会将针管弄扁，影响针管畅通。豚鼠灌胃器，可采用大鼠灌胃器。1.2家兔灌胃器的
14、制作取12号腰椎穿刺针。加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作，针体长约9cm，并连接10ml或20ml注射器，即家兔灌胃器。二、灌胃操作方法2.1小鼠经口灌胃给药方法先保定动物,即用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢，以小指压住小鼠尾巴即可。在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎，必须拔出重插
15、，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。注完药液后轻轻抽出灌胃针。小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml/10g.w。2.2大鼠经口灌胃给药方法大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。根据长期的实践经验，我们发现如用一块湿的纱布盖在大鼠身上，既可以防滑，又可以给初学者一种安全感。为了防止大鼠咬伤，应戴上帆布手套。大鼠体型较大，所以不能象保定小鼠那样可以把尾巴压住。同样在保定大鼠时不能用力过大和握其颈部，尤其在采取抓握保定大鼠时，要特别注意。大鼠灌胃的关键是左手把大鼠头部固定好，使其头不能随意摆动。其他操作方法与小鼠基本相同。灌胃针进入深度为5cm左右。大鼠一次灌胃最大容量2ml/100g.w。2.3豚鼠经口灌胃给药方法把豚鼠放在实验台上，用一块干纱布罩住其头，将豚鼠固定在左手掌下，用拇指和食指挤压其口角部让口张开。然后，右手持抽好药物的灌胃器，沿豚鼠上腭壁插入食道。如果灌胃器插入顺畅，位置正确，豚鼠会自动吞咽。否则，豚鼠会乱动，此时应立即拔出灌胃器，重新插入灌胃器，灌胃器进入深度为5cm左右。豚鼠一次灌胃最大容量2.0ml/100g.w。2.4家兔经口灌胃给药方法把实验兔放在实验台上，用左手掌从头部握住兔头颈部，将其固定，用拇指和食指使劲压迫其口角部使口张开。然后，右手持抽好药液的灌胃器，用有弧度灌面从右口角处慢慢插入。如插入位置正确就会看见兔自动吞咽，如插入不对，动物就会乱动，此时应立
