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1、培养细胞的冷冻保存与复苏概述 冻存过程冷冻保存与复苏的原理 冻存结果冷冻速率 讨论冷冻保存温度 冻存细胞的复苏 复温速率 非玻璃化冻存细胞的复苏 冷冻保护剂 主要材料冷冻保存方法 复苏过程 非玻璃化冻存方法 结果主要材料 讨论冻存过程 玻璃化冻存细胞的复苏 冻存结果 主要材料 讨论 复苏过程 玻璃化冻存方法 结果 主要材料 讨论概述Spallanzani( 1776 )最早发表了冷“处理对“细胞生命活动影响的报道，他用 雪冷冻玻璃瓶中的马精子 10多分钟之后，再将玻璃瓶放回室温下，发现了一个 令人惊奇的现象，那些原本已经不动了的精子又“复活”了，就好象是刚从输精管 排出来的一样，冷处理延长至数
2、十分钟，情况依然如此。于是，他认为冷不能杀 死精子。大约100年以后，许多早期的学者重复了低温处理对精子活动的影响， 同样得出了相似的结论。到1900年前后，科学家基本上肯定了生物成分(如精 子和一些生物化学物质)能够在零下温度贮存的事实。Shettles( 1940)证明人类的精子也能抵抗温度的突然变化，他将人的精液 封闭在小管内，在-790C-1960C之间的低温条件下进行冷处理，发现有10%的 精子仍然能够存活。此后，冷冻处理研究材料的范围大大拓展。Polge等人(1949 )发现了甘油对低温下贮存的细胞具有保护作用，他们仍 然以精子进行研究发现，加入甘油能够大大提高贮存于-790C下精
3、子的存活率。 接下来的重大进展是Luyet ( 1951 )与Lovelock ( 1953 )等多位学者发现了电解 质浓度对贮存细胞的损伤作用。他们的结论是，电解质浓度增大是造成贮存细胞 损伤的主要原因。冷冻理论后来得到 Merryman( 1956)、Rey( 1957)以及 Smith ( 1961)等学者的继续和发展。1949 年至1960年这一段时间可以称为冷冻保存的“甘油时期”，这一时期对 生物材料的冷冻保存一般都是以甘油作为保护剂。 Lovelock( 1959)等人发现了 一种新的化学保护剂，这就是人们熟悉的二甲基亚砜(DMSO )。而且，用于冷 冻保存的仪器也有明显的发展。目
4、前，无论是冷冻保存理论、各种保护剂、冷冻 用品和设备以及各种生物材料的保存与复苏技术都已十分成熟和完备。返回页首冷冻保存与复苏原理在低于-700C的超低温条件下，有机体细胞内部的生化反应极其缓慢，甚至 终止。因此，采取适当的方法将生物材料降至超低温，即可使生命活动固定在某 一阶段而不衰老死亡。当以适当的方法将冻存的生物材料恢复至常温时，其内部 的生化反应可恢复正常。所谓冷冻保存，就是将体外培养物或生物活性材料悬浮 在加有或不加冷冻保护剂的溶液中，以一定的冷冻速率降至零下某一温度（一般 是低于-700C的超低温条件），并在此温度下对其长期保存的过程。而复苏就是 以一定的复温速率将冻存的体外培养物
5、或生物活性材料恢复到常温的过程。不论 是微生物、动物细胞、植物细胞还是体外培养的器官都可以进行冻存，并在适当 条件下复苏。水在低于零度的条件下会结冰。如果将细胞悬浮在纯水中，随着温度的降低， 细胞内外的水分都会结冰，所形成的冰晶会造成细胞膜和细胞器的破坏而引起细 胞死亡。这种因细胞内部结冰而导致的细胞损伤称为细胞内冰晶的损伤。如果将 细胞悬浮在溶液中，随着温度的降低，细胞外部的水分会首先结冰，从而使得未 结冰的溶液中电解质浓度升高。如果将细胞暴露在这样高溶质的溶液中且时间过 长，细胞膜上脂质分子会受到损坏，细胞便发生渗漏，在复温时，大量水分会因 此进入细胞内，造成细胞死亡。这种因保存溶液中溶质
6、浓度升高而导致的细胞损 伤称为溶质损伤或称溶液损伤。当温度进一步下降，细胞内外都结冰，产生冰晶 损伤。但是如果在溶液中加入冷冻保护剂，则可保护细胞免受溶质损伤和冰晶损 伤。因为冷冻保护剂容易同溶液中的水分子结合，从而降低冰点，减少冰晶的形 成，并且通过其摩尔浓度降低未结冰溶液中电解质的浓度，使细胞免受溶质损伤， 细胞得以在超低温条件下保存。在复苏时，一般以很快的速度升温，1-2 分钟内 即恢复到常温，细胞内外不会重新形成较大的冰晶，也不会暴露在高浓度的电解 质溶液中过长的时间，从而无冰晶损伤和溶质损伤产生，冻存的细胞经复苏后仍 保持其正常的结构和功能。冷冻保护剂对细胞的冷冻保护效果还与冷冻速率
7、、冷 冻温度和复温速率有关。而且不同的冷冻保护剂其冷冻保护效果也不一样。冷冻速率冷冻速率是指降温的速度，直接关系到冷冻效果。细胞在冷冻过程中会发生如下变化：当细胞被冷至-50C时，因溶液中加有冷冻保护剂而降低溶液的冰点， 细胞内外溶液仍未结冰；当被冷至-5-150C之间时，细胞外溶液先出现结冰而 细胞内仍保持未结冰状态。细胞内未结冰的水分子会比细胞外部分结冰溶液中的 水分子具有更高的化学能。其结果是，细胞内水分子为了和细胞外水分子保持化 学能的平衡，会向细胞外流动。冷冻速度不同，细胞内水分向外流动的情况也不 相同：如果冷冻速度慢，细胞内水分外渗多，细胞脱水，体积缩小，细胞内溶质 浓度增高，细胞
8、内不会发生结冰；如果冷冻速度快，细胞内水分没有足够的时间 外渗，结果随着温度的下降而发生细胞内结冰；如果冷冻速度非常快（即超快速 冷冻），则细胞内形成的冰晶非常小或不结冰而呈玻璃状态（玻璃化冷冻）。Luyet （ 1973 ）证实液体的凝固可分为两种形式：一种是晶体化，溶液中的分子 呈有序排列；另一种情况是非晶体即玻璃化，液体中的分子呈无序状态，保持未 凝固前的状态。不同的冷冻速度既然能使细胞内发生不同的生理变化，也可以对细胞产生不 同的损伤。当冷冻速度过慢时，细胞脱水严重，细胞体积严重收缩，超过一定程 度时即失去活性。同时冷冻速度过慢，还会引起细胞外溶液部分结冰，从而使细 胞外未结冰的溶液中
9、溶质浓度增高，产生溶质损伤。当冷冻速度过快时，细胞内 水分来不及外渗，会形成较到冰晶，造成细胞膜及细胞器的破坏，产生细胞内冰 晶损伤。超快速玻璃化冷冻对细胞存活来说是最为理想的冷冻方法。细胞内外呈 玻璃化凝固，无冰晶形成或形成很小的冰晶，对细胞膜和细胞器不致造成损伤， 细胞也不会在高浓度的溶质中长时间暴露而受损。不同细胞的最适冷冻速率不同。小鼠骨髓干细胞、酵母、人红细胞的最适冷 冻速率分别为1.60C/min、70C/min和2000C/min。细胞与细胞之间的最适冷冻速 率可在1.60C3000C/min，故对一种细胞进行冷冻保存之前，首先需要测定其最 适冷冻速率，以保证获得最高的冷冻存活率
10、。冷冻保存温度冷冻保存温度是指能长期保存细胞的超低温度，在此温度下，细胞生化反应 极其缓慢甚至停止，但经过长期保存，在复苏后仍能保持正常的结构和功能。不同的细胞和生物体以及使用不同的冷冻保存方法要取得同样的冷冻保存 效果，冷冻保存温度可以不同。但从实际和效益的观点出发，液氮温度（-1960C） 是目前最佳的冷冻保存温度。在-1960C时，细胞的生命活动几乎完全停止，但 复苏后细胞的结构和功能完好。如果冷冻过程得当，一般生物样品在-1960C下 均可保存十年以上。应用-700C-800C保存细胞，短期内对细胞的活性无明显 影响，但随着冻存时间延长，细胞存活率明显降低。在冰点到-400C范围内保存
11、 细胞的效果不佳。复苏速率冷冻保护体外培养物，除了必须有最佳的冷冻速率、合适的冷冻保护剂 和冻存温度外，在复苏时也必须有最佳的复温速率，这样才能保证最后获得最佳 冷冻保存效果。复温速率是指在细胞复苏时温度升高的速度。复温速率不当也会降低冻存细 胞存活率。一般来说，复温速度越快越好。常规的做法是，在370C水浴中，于 1-2分钟内完成复苏。复温速度过慢，细胞内往往重新形成较大冰晶而造成细胞 损伤。复温时造成的细胞损伤非常快，往往在极短的时间内发生。 冷冻保护剂冷冻保护剂是指可以保护细胞免受冷冻损伤的物质。冷冻保护剂常常配制成 一定的溶液。一般来讲，只有红细胞、大多数微生物和极少数有核的哺乳动物细
12、 胞悬浮在不加冷冻保护剂的水或简单的盐溶液中，并以最适的冷冻速率冷冻，可 以获得活的冻存物。但对于大多数有核哺乳动物细胞来说，在不加冷冻保护剂的 情况下，无最适冷冻速率可言，也不能获得活的冷冻物。例如将小鼠骨髓细胞悬 浮在不加冷冻保护剂的平衡盐溶液中，并以0.3 6000C/min的冷冻速率降温冷 冻，98%以上的细胞会死亡；而加入甘油冷冻保护剂进行冷冻保存时，98%以上 的细胞都可存活。冷冻保护剂可分为渗透性和非渗透性两类。渗透性冷冻保护剂可以渗透到细 胞内，一般是一些小分子物质，主要包括甘油、DMSO、乙二醇、丙二醇、乙酰 胺、甲醇等。其保护机制是在细胞冷冻悬液完全凝固之前，渗透到细胞内，
13、在细 胞内外产生一定的摩尔浓度，降低细胞内外未结冰溶液中电解质的浓度，从而保 护细胞免受高浓度电解质的损伤，同时，细胞内水分也不会过分外渗，避免了细 胞过分脱水皱缩。甘油和DMSO并不防止细胞内结冰，在使用该类冷冻保护剂 时，需要一定的时间进行预冷，让甘油或DMSO等成分渗透到细胞内，在细胞 内外达到平衡以起到充分的保护作用。目前DMSO的应用比甘油更为广泛，但 要注意的是，DMSO在常温下对细胞的毒性作用较大，而在40C时，其毒性作 用大大减弱，且仍能以较快的速度渗透到细胞内。所以，冻存时DMSO平衡多 在40C下进行，一般需要40 60分钟。非渗透性冷冻保护剂不能渗透到细胞内，一般是些大分
14、子物质，主要包括聚 乙烯吡咯烷酮（PVP）、蔗糖、聚乙二醇、葡聚糖、白蛋白以及羟乙基淀粉等。 其保护机制的假说很多，其中有一种可能是，聚乙烯吡咯烷酮等大分子物质可以 优先同溶液中水分子结合，降低溶液中自由水的含量，使冰点降低，减少冰晶的 形成；同时，由于其分子量大，使溶液中电解质浓度降低，从而减轻溶质损伤。不同的冷冻保护剂有不同的优、缺点。目前一般多采用联合使用两种以上冷 冻保护剂组成保护液。由于许多冷冻保护剂（如DMSO ）在低温下能保护细胞， 但在常温下却对细胞有害，故在细胞复温后应及时洗涤冷冻保护剂。冷冻保存方法按照冷冻保护液在冻结后是否形成冰晶来划分，冻存方法可分为非玻璃化和玻璃化冻存
15、两种。非玻璃化冻存是利用各种温级的冰箱分阶段降温至-700C -800C，然后直接投入液氮进行保存；或者是利用电子计算机程控降温仪以及利 用液氮的气、液，按一定的降温速率从室温降至-1000C以下，再直接投入液氮保 存的方法。以该种方法冻结的细胞悬液或多或少都有冰晶的形成。玻璃化冻存则 是指利用多种高浓度的冷冻保护剂联合形成的玻璃化冷冻保护液保护悬浮细胞， 直接投入液氮进行冻存的方法。以该中方法冻结的细胞悬液没有冰晶的形成。但 目前细胞冻存最常用的仍是前一种方法。非玻璃化冻存方法下面以肿瘤细胞和杂交瘤细胞为例，介绍非玻璃化冻存细胞的详细过程。主要材料(1 )仪器设备：普通冰箱、-300C低温冰箱和-700C -800C超低温冰箱、液 氮冻存罐、高速离心机、电子计算机程控降温仪等；(2 )冻存管：容量为1ml或1.5ml ；(3 )冷冻保护液：一般是以9份小牛血清或细胞培养液与1份DMSO混合 而成。现配现用，或配制后防入普通冰箱冰盒内冷冻保存。使用前，于室温下水 浴溶解；(4)待冻存细胞：各种肿瘤细胞或杂交瘤细胞。操作过程1. 待冻存细胞悬液的制备(1) 按常规方法消化处于对数生长期的细胞培养物，制备单细胞悬液，并计算细胞总数；(2) 将细胞悬液以800 1000r/min离心5min ,去上清夜；(3) 向细胞沉淀物中加入冷冻保护液轻轻吹打
