人骨髓间充质干细胞体外成软骨诱导研究.docx

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1、 人骨髓间充质干细胞体外成软骨诱导研究 【摘要】 目的: 研究人骨髓间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)在体外培养过程中的增殖和成软骨分化现象和规律。方法: 以密度梯度离心法分离健康成人髂骨MSCs,观察体外培养过程中细胞形态、生长和增殖现象。取第三代细胞给予地塞米松,维生素C和不同剂量转化生长因子1(transforming growth factor 1,TGF-1)行成软骨细胞诱导。3周后行阿利新蓝及甲苯胺蓝染色蛋白多糖,免疫荧光检测II型胶原,阿利新蓝比色法检测葡萄糖氨基聚糖。结果: 体外培养条件下MSCs生长旺盛。在TGF-1作用下MSCs向软骨骨细

2、胞分化,TGF-1 10 g/L组软骨细胞标志物表达最强。结论: MSCs有旺盛的增殖能力。MSCs在一定诱导条件下可以向软骨细胞分化,转化生长因子1(TGF-1)是诱导MSCs向软骨分化的关键性因素,10 g/L是其最佳诱导剂量。 【关键词】 骨髓间充质干细胞; 成软骨; 转化生长因子1 Abstract Objective: To research the phenomenon and rule of multiplication and chondrogenesis of mesenchymal stem cells(MSCs) derived from human bone marro

3、w in vitro. Methods: Healthy adults MSCs were isolated from Ilium and purified by density gradient. To observe the conformation, growth and multiplication of MSCs cultured in vitro. We chose the passage 3 MSCs and induced them into chondrogenic differentiation with Dexamethasone,Vitamin C and TGF-1

4、in different dosage formed chondracytes 3 weeks, we measured the sulfate glycosaminoglycan with toluidine blue and alcian blue, type collagen with immunofluorescence and glycosaminoglycan with alcian blue colorimetry. Results: MSCs can be cultured well in vitro. MSCs were induced into chondrocytes b

5、y TGF-1 and TGF-1 10 g/L group had the most evident expression. Conclusion: MSCs have strong ability of multiplication and could be induced into chondrocytes under certain circumstances. TGF-1 is the major factor of chondrogenesis while 10 g/L is the best inducing dosage. Key words mesenchymal stem

6、cells; chondrogenesis; TGF-1 各种由创伤和疾病引起的关节软骨缺损在临床上十分常见,目前临床上尚无有效的治疗方法。近年来组织工程技术的发展给修复关节软骨缺损带来了希望。最近的比较研究证实骨髓间充质干细胞(mesenchymal stem cells, MSCs)是修复全层软骨缺损的最佳细胞源1。笔者采集健康人骨髓,以密度梯度离心法分离人MSCs,行体外培养扩增及成软骨诱导,希望为临床治疗软骨缺损提供参考。 1 材料与方法 对象 骨髓标本取自3名健康成年男性自愿者(28,34,37岁)髂后上棘。3人均无全身性疾病和代谢性疾病。取得知情同意后,无菌条件下抽取骨髓5 ml置

7、于抗凝环境。 主要试剂 L-DMEM培养基(Gibco公司),类标准胎牛血清(民海生物公司),转化生长因子(TGF)-1(美国Peprotech公司),维生素C、地塞米松、胰蛋白酶、硫酸软骨素(Sigma公司),人淋巴细胞分离液Ficoll(天津灏洋生物公司),兔抗人二型胶原多克隆抗体、浓缩型Cy3-SABC免疫荧光试剂盒(博士德公司)。 人MSCs的分离和体外培养 取 ml骨髓加入等量PBS稀释,吹打混匀,贴壁缓慢加入已有5 ml Ficoll分离液的离心管。2 000 r/min离心20 min,吸取界面云雾状白膜层(富含MSCss)。加入PBS,800 r/min离心10 min洗涤2遍

8、,计数。以5106/cm2接种于细胞培养瓶,加入完全培养基(含10胎牛血清的L-DMEM培养基)。培养48 h后半量换液,弃去不贴壁的杂细胞。以后23 d换液1次,710 d即可见较多贴壁细胞。细胞90融合时胰酶消化,13传代培养。连续培养三代后MSCs基本纯化。取第三代细胞按1105/cm2接种96孔板,于传代后8 d内每天取10孔行MTT检测,绘制传代细胞生长曲线。 成软骨细胞诱导培养 配制成软骨诱导条件培养基号:完全培养基加地塞米松(10-8 mol/L),TGF-1 (0, 5, 10, 20 g/L)、维生素C(10 mmol/L)。取长势良好的第三代MSCs,分4组(命名为A,B,

9、C,D)分别按1105/cm2接种于含条件培养基号的24孔板(每组12孔)。每日用倒置相差显微镜观察细胞形态。另取4个6孔板,按1105/cm2接种长势良好的第三代MSCs,分别用条件培养基号诱导培养3周,用以检测蛋白多糖(proteoglycan,PG)含量。 软骨细胞检测 定向诱导培养3周后,用4%低聚甲醛固定24孔板中细胞20 min后行以下检测。(1)甲苯胺蓝染色:用70%乙醇、浓度为%甲苯胺蓝染色1 min,再以95%的乙醇分色10 min,纯丙酮脱水2次,每次5 min,在倒置相差显微镜下观察细胞形态。(2)阿利新蓝染色:用pH 的阿利新蓝染色30 min,蒸馏水冲洗15 min,

10、100乙醇脱水,封固,在倒置相差显微镜下观察染色情况。(3)型胶原免疫荧光:各组取6片细胞玻片用3过氧化氢作用10 min灭活内源性过氧化氢酶,蒸馏水洗3遍,每次2 min;滴加山羊血清封闭液,室温10 min;甩去多余液体,滴加兔抗人型胶原IgG一抗,4过夜。第2天用PBS洗3次,每次2 min;滴加生物素化山羊抗兔IgG二抗,37孵育30 min;PBS洗3次,每次2 min;滴加SABC-Cy3,37孵育30 min;PBS洗4次,每次5 min;滴加Hoechst33342,37孵育15 min,PBS洗3次,每次5 min;封片,荧光显微镜下观察。(4)PG含量检测:蛋白酶水解6孔板

11、中定向诱导3周后的MSCs,超速离心提取葡萄糖氨基聚糖(glycosaminoglycan,GAG),以蒸馏水为空白对照,硫酸软骨素为标准品,阿利新蓝比色法2测定各板每孔GAG总量。 统计学方法 数据以均数标准差(xs) 表示,采用t检验分析组间差异。 2 结果 人MSCs的分离、培养和形态学观察 密度梯度离心法分离的人MSCs接种于培养瓶中时,倒置相差显微镜下可见满视野的小圆形悬浮有核细胞。静置于37,5CO2培养箱中48 h后半量换液,可见有少量贴壁细胞,多为梭形或成纤维细胞样,细胞形态幼小,细短。少数细胞呈扁平多角不规则形态。可见少量克隆样生长细胞,细胞排列不紧密,间距较大。 以后根据细

12、胞营养状态每23 d换液1次,细胞数量逐渐增加,细胞间排列逐渐紧密,出现小的细胞集落。部分细胞呈现出典型的长梭形和分支状。培养10 d后细胞间达到90汇集。消化后按13传代培养。传代培养7 d左右细胞可长满瓶底,细胞间排列紧密,呈漩涡状或编织样排列。连续传三代后细胞形态趋于一致,呈长梭形,细胞两端有长丝状伪足。 MSCs体外培养扩增的生长趋势 取第三代细胞接种96孔板,在培养的前8 d每天取10孔行MTT检测。生长曲线显示(图1):接种后的前48 h内,细胞处于潜伏期,无明显增殖,细胞数量及密度变化不大,3 d后细胞开始扩增,35 d细胞增长较慢,5 d后扩增速度明显增加,57 d细胞数量快速

13、增加,排列逐渐规律,7 d后细胞增殖进入平台期。至8 d已长满孔底,细胞间排列规则紧密,呈编织样、鱼群样排列。 MSCs成软骨诱导过程中的形态学观察 前5 d细胞形态变化不大,仍保留MSCs典型的长梭形形态,但细胞增殖速度明显较未诱导状态下慢,9 d左右细胞数量约增加1倍。诱导第2周细胞逐渐变得宽大扁平,细胞核变大,胞质丰富,分支增加,有向多角形变化的趋势。后细胞继续向宽大扁平方向发展。 A组于诱导的第13 d出现透亮的圆形空泡状表现,后空泡数量逐渐增多,聚集成团,透亮折光强,形态酷似脂肪细胞(图2)。 图1 MSCs生长曲线(passage 3)(略) Fig 1 Growth curve

14、of MSCs(passage 3) 图2 A组细胞诱导第18天,空泡团明显(略) Fig 2 After 18 days of induction, group A hasclear vacuoles 甲苯胺蓝染色结果 A组为阴性胞质不着色。B组胞质染色很淡,无颗粒,细胞核着色,细胞和轮廓清晰。D组胞质染成均一的暗蓝色。C组为强阳性,胞核和胞质均染成深蓝色,细胞质染色更深,细胞轮廓清晰(图3)。 阿利新蓝染色结果 A组为阴性不着色。B组大多数细胞染成淡蓝色,细胞核不明显,少数细胞胞内有深染颗粒。D组细胞核轮廓可以分辨,胞质呈现天蓝色,细胞分支部分染色略淡。C组几乎所有细胞均染成浓蓝色,染色较D组深,细胞和轮廓明显,胞质内可见大块状深染部分(图4)。 型胶原免疫荧光结果 A组为阴性,B组荧光微弱。C,D两组细胞质中有红色荧光,细胞外也有细颗粒状淡染色荧光区域(图5)。 GAG含量检测 用标准硫酸软骨素C绘制GAG浓度-光密度(490 nm)标准曲线,求得直线回归方程。根据各孔光密度得到GAG含量。测得4组GAG含量分别为:()g/孔、() g/孔、() g/孔、()g/孔。C,D组高于B组(P),C组高于D组(P)。B,C,D组均高于A组(P) 3 讨论 骨髓间充质干细胞(mesenchchymal stem cells,MSCs)是骨髓中一类来源于中胚层的具有自我增殖

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