福林酚法检测多肽含量资料

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1、估计你的福林酚浓度存在问题,导致显色反应不充分。建议在检测前标定你的福林酚。方法:取福林酚(相当于一元酸)1.0ml,精密移取,加水100ml,加酚酞指示剂数滴,用 0.1mol/LNaOH 滴定,按滴定体积对福林酚浓度进行换算。药典方法配制的浓度为 2.0mol/L。http:/ 冻干制剂以甘露醇做骨架测多肽含量,制剂用同浓度甘露醇液做空白测吸光度后,按原方法 标准曲线计算即可。http:/ 这种蛋白质测定法是最灵敏的方法之一。过去此法是应用最广泛的一种方法,由于其试剂乙 的配制较为困难(现在已可以订购),近年来逐渐被考马斯亮兰法所取代。此法的显色原理 与双缩脲方法是相同的,只是加入了第二种

2、试剂,即Folin酚试剂,以增加显色量,从而 提高了检测蛋白质的灵敏度。这两种显色反应产生深兰色的原因是:在碱性条件下,蛋白 质中的肽键与铜结合生成复合物。Folin酚试剂中的磷钼酸盐一磷钨酸盐被蛋白质中的酪 氨酸和苯丙氨酸残基还原,产生深兰色(钼兰和钨兰的混合物)。在一定的条件下,兰色深 度与蛋白的量成正比。Folin酚试剂法最早由Lowry确定了蛋白质浓度测定的基本步骤。以后在生物化学领域得 到广泛的应用。这个测定法的优点是灵敏度高,比双缩脲法灵敏得多,缺点是费时间较长, 要精确控制操作时间,标准曲线也不是严格的直线形式,且专一性较差,干扰物质较多。对 双缩脲反应发生干扰的离子,同样容易干

3、扰Lowry反应。而且对后者的影响还要大得多。 酚类、柠檬酸、硫酸铵、Tris缓冲液、甘氨酸、糖类、甘油等均有干扰作用。浓度较低的尿 素(0.5%),硫酸纳(1%),硝酸纳(1%),三氯乙酸(0.5%),乙醇(5%),乙醚(5%), 丙酮(0.5%)等溶液对显色无影响,但这些物质浓度高时,必须作校正曲线。含硫酸铵的 溶液,只须加浓碳酸钠氢氧化钠溶液,即可显色测定。若样品酸度较高,显色后会色浅, 则必须提高碳酸钠氢氧化钠溶液的浓度12倍。进行测定时,加F olin酚试剂时要特别小心,因为该试剂仅在酸性pH条件下稳定,但上 述还原反应只在pH=10的情况下发生,故当Folin一酚试剂加到碱性的铜一

4、蛋白质溶液中时, 必须立即混匀,以便在磷钼酸磷钨酸试剂 被破坏之前,还原反应即能发生。 此法也适用于酪氨酸和色氨酸的定量测定。此法可检测的最低蛋白质量达5mg。通常测定范围是20250mg。(二)试剂与器材1. 试剂( 1 )试剂甲:(A)10克Na2CO3, 2克NaOH和0.25克酒石酸钾钠(KNaC4H4O64H2O)。溶解于 500 毫升蒸馏水中。(B)0.5克硫酸铜(CuSO45H2O)溶解于100毫升蒸馏水中,每次使用前,将50份(A) 与1份(B)混合,即为试剂甲。( 2)试剂乙:在2升磨口回流瓶中,加入100克钨酸钠(Na2WO4 2H2O),25克钼酸钠(Na2MoO4 2H

5、2O) 及 700 毫升蒸馏水,再加 50 毫升 85% 磷酸,100 毫升浓盐酸,充分混合,接上回流管,以 小火回流10小时,回流结束时,加入150克硫酸锂(Li2SO4), 50毫升蒸馏水及数滴液 体溴,开口继续沸腾15分钟,以便驱除过量的溴。冷却后溶液呈黄色(如仍呈绿色,须再 重复滴加液体溴的步骤)。稀释至 1 升,过滤,滤液置于棕色试剂瓶中保存。使用时用标准 NaOH滴定,酚酞作指示剂,然后适当稀释,约加水1倍,使最终的酸浓度为1N左右。( 3)标准蛋白质溶液:精确称取结晶牛血清清蛋白或g球蛋白,溶于蒸馏水,浓度为250 mg/ml左右。牛血清清 蛋白溶于水若混浊,可改用0.9 % N

6、aC 1溶液。2. 器材(1)可见光分光光度计 (2)旋涡混合器 (3)秒表 (4)试管 16支(三)操作方法1. 标准曲线的测定:取16支大试管, 1 支作空白, 3支留作未知样品,其余试管分成两组, 分别加入0,0.1,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0毫升标准蛋白质溶液(浓度为250mg/m1)。用水 补足到1.0毫升,然后每支试管加入5毫升试剂甲,在旋涡混合器上迅速混合,于室温(20 25)放置10分钟。再逐管加入0.5毫升试剂乙(Folin酚试剂),同样立即混匀。这一步 混合速度要快,否则会使显色程度减弱。然后在室温下放置30分钟,以未加蛋白质溶液的 第一支试管作为空白对照,于

7、700nm 处测定各管中溶液的吸光度值。以蛋白质的量为横座 标,吸光度值为纵座标,绘制出标准曲线。注意:因Lowry反应的显色随时间不断加深,因此各项操作必须精确控制时间,即第1支 试管加入5 毫升试剂甲后,开始计时, 1 分钟后,第2支试管加入5 毫升试剂甲, 2分钟后 加第3支试管,余此类推。全部试管加完试剂甲后若已超过10分钟,则第1支试管可立即 加入0.5毫升试剂乙, 1分钟后第2支试管加入0.5毫升试剂乙, 2分钟后加第3支试管,余 此类推。待最后一支试管加完试剂后,再放置30分钟,然后开始测定光吸收。每分钟测一 个样品。进行多试管操作时,为了防止出错,每位学生都必须在实验记录本上预

8、先画好下面的表格。 表中是每个试管要加入的量(毫升),并按由左至右,由上至下的顺序,逐管加入。最下面 两排是计算出的每管中蛋白质的量(微克)和测得的吸光度值。2. 样品的测定:取1 毫升样品溶液(其中约含蛋白质20250微克),按上述方法进行操作, 取1毫升蒸馏水代替样品作为空白对照。通常样品的测定也可与标准曲线的测定放在一起, 同时进行。即在标准曲线测定的各试管后面,再增加3个试管。如上表中的8、9、10试管。 根据所测样品的吸光度值,在标准曲线上查出相应的蛋白质量,从而计算出样品溶液的蛋白 质浓度。注意,由于各种蛋白质含有不同量的酪氨酸和苯丙氨酸,显色的深浅往往随不同的蛋白质而 变化。因而

9、本测定法通常只适用于测定蛋白质的相对浓度(相对于标准蛋白质)。http:/ 4&lanmu=12实验三福林一酚法测定蛋白质含量一基本原理福林-酚试剂(Folinphenol reagent)的显色原理是:首先在碱性条件下蛋白质与铜作用生成蛋白 质-铜复合物,该复合物随之将磷钼酸-磷钨酸还原成蓝色复合物。在一定条件下,蓝色强度与蛋白质含量 成正比,测量范围约在25250 ug/ml蛋白质浓度。虽然该法是测定蛋白质浓度应用最广泛的方法之一, 但其缺点也很明显,专一性较差,干扰物质多(如Tris缓冲剂,蔗糖、硫酸铵、巯基化物、酚类、柠檬酸 等),标准曲线的直线关系不特别严格。因此在其应用过程中有很多

10、新的修正。(一)LOWRY基本法1试剂(1) 试剂甲:(A) lOgNaCO, 2gNaOH和0.5g酒石酸钾钠(或钠盐或钾盐)溶于500ml蒸馏水。(B)23O.5gCuSO 5HO溶于100ml蒸馏水。每次使用前将两溶液以A: B = 50 :1混合,此为试剂甲。42(2) 试剂乙:在1.5升的磨口回流瓶中加入100g钨酸钠(NaWO2H O), 25g钼酸钠(NaMoO2H O)2 4 2 2 4 2 及700ml蒸馏水,再加50ml85%磷酸,100ml浓盐酸,充分混合,接上回流冷凝管以小火回流10小时。回 流结束后加入150g硫酸锂,50ml蒸馏水及数滴液体溴,开口继续沸腾15min

11、以便驱除过量的溴,冷却后 溶液呈黄色(如仍呈绿色,须再重复滴加液体溴的步骤)。将溶液稀释至1升,过滤,滤液置棕色瓶中保存 使用时用标准氢氧化钠滴定,以酚酞为指示剂,然后适当稀释(约加1倍水),使最终的酸浓度为1mol/ L。(3) 标准蛋白质溶液:取结晶BSA溶于蒸馏水,浓度为250 ug/m1o(4) 未知蛋白质溶液: 取动物血清,使用前稀释100倍,2操作步骤取试管编号按下列顺序加入各试剂123456789蛋白质含量(口g)02550100150200250一一一一250 ug/ml BSA(m1)00.10.20.40.60.81.0一一一一待测蛋白(m1)一一一一一一一一一一一一一一0

12、.51.0HO(m1)21.00.90.80.60.40.2一一0.5一一试剂甲均加入5ml摇匀,室温下放置10min试剂乙(1mol/L)均加入0.5m1,立即混匀,室温放置30min后比色A650计算:以光吸收值(A )对蛋白质含量作图,求其蛋白质含量。650在原始文献中的试剂甲配方如下:20g Na CO溶于0.1mo1 / LNaOH 1000ml中;0.5g硫酸铜溶于1%酒23石酸钾钠中,使用前将按:= 50: 1(V/V)混和。酒石酸盐可用1%柠檬酸三钠代替,更易于保存。比 色测定时的波长可选650nm或660nm,若蛋白质浓度在20T00ug.可选用750nm(在660nm所读取

13、的光吸收为750nm的90%),若在125ug以上可采用500nmhttp:/ 17:07:57福林-酚试剂法是生化中广泛使用的蛋白质定量方法,在国家药品标准中也普遍采用此法测定不同的蛋白质的含量。现将标准中执行的几点总结如下:1、酚试剂A及酚试剂B的浓度和用量不同:具体见下表。Folin-酚试剂AFolin-酚试剂B牛血清白蛋白标准曲线 浓度(gg/ml)反应过程及测定 波长方法一氢氧化钠10g,碳酸钠50g,加水400ml 使溶解,作为甲液;取酒石酸钾0.5g, 加水50ml使溶解,另取硫酸铜0.25g, 加水30ml使溶解,两液混合,作为乙 液,合并上述甲、乙液,加水至500ml。 取

14、1.0ml4.0ml (贮备液116)30、 90、 150、 210 和 27055 C准确反应5 分钟,冷却,在650nm测定方法24%无水碳酸钠溶液25ml,0.2mol/L氢 氧化钠溶液25ml,2%酒石酸钾钠溶液 0.5ml, 1 %硫酸铜溶液0.5ml,上述四 液合并,取4.0ml0.5ml(1mol/L)20、 40、 60、 80 和 10037 C水浴保温30 分钟,冷却,在 750nm测定标准中最常见上述两种方法(其他的略有不同),有的标准中B的配制浓度会有错误, 应仔细核对,一般加入量折算为0.5mmol为宜。2、不同样品中含有的辅料(或赋形剂)的影响:大多数多肽样品的制剂均添加赋形剂,例如冻干制剂一般添加甘露醇作为赋形剂。甘露 醇在福林-酚试剂中亦显色,严重的会干扰样品的测定,据笔者多次试验结果观察,同一浓 度不同试剂级别的甘露醇显色后的吸光度也会不同。3、在具体操作中的几个细节

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