实验十四糖化酶活力的测定.doc

上传人:夏** 文档编号:544299292 上传时间:2023-03-23 格式:DOC 页数:3 大小:33.01KB
返回 下载 相关 举报
实验十四糖化酶活力的测定.doc_第1页
第1页 / 共3页
实验十四糖化酶活力的测定.doc_第2页
第2页 / 共3页
实验十四糖化酶活力的测定.doc_第3页
第3页 / 共3页
亲,该文档总共3页,全部预览完了,如果喜欢就下载吧!
资源描述

《实验十四糖化酶活力的测定.doc》由会员分享,可在线阅读,更多相关《实验十四糖化酶活力的测定.doc(3页珍藏版)》请在金锄头文库上搜索。

1、实验十四 糖化酶活力的测定一、实验目的1、 学习糖化型淀粉酶(或液体曲)酶活力的测定方法。2、 了解糖化型淀粉酶活力大小对工艺生产的指导意义。二、实验原理糖化型淀粉酶可催化淀粉水解生成葡萄糖。本实验在一定条件下用一定量的糖化型淀粉酶作用于淀粉,然后用碘量法测定所生成的葡萄糖的含量来计算淀粉酶的活力。碘量法定糖原理:淀粉经糖化酶水解生成葡萄糖,葡萄搪具有还原性,其羰基易被弱氧化剂次碘酸钠所氧化:I2+2NaOH=NaIO+NaI+H2ONaIO+C6H12O6=NaI+CH2OH(CHOH)4COOH+NaI体系中加入过量的碘,氧化反应完成后用硫代替硫酸钠滴定过量的碘,即可推算出酶的活力。I22

2、Na2S2O3 = Na2S4O6 2NaI三、仪器、原料和试剂仪器吸管(25mL,5mL,2mL,10mL)、定碘瓶(500mL)、 碱式滴定管、烧杯、恒温水浴锅、分析天平。原料:AS3.4309黑曲霉斜面试管菌;麸皮、稻壳。试剂1. 2可溶性淀粉溶液:准确称取2克可溶性淀粉(预先于100105烘干至恒重约2小时),加少量蒸馏水调匀。倾入80毫升左右的沸蒸馏水中,继续煮沸至透明,冷却后用水定容至100毫升。2. 0.05 mol/L碘液:称取25克碘化钾溶于少量水中,加入12.7克碘,溶解后定容至1000毫升。3. pH4.5的1mol/L醋酸缓冲液:称取8.204克无水醋酸钠,先在少量水中

3、溶解,定容至1000毫升。取分析纯冰醋酸5.78毫升定容至1000毫升。以上两种溶液按醋酸和醋酸钠的体积比为25:22混合即为所要求之缓冲液。4. 0.1 mol/L氢氧化钠溶液:称取分析纯氢氧化钠4克溶解并定容至1000毫升。5. 1 mol/L硫酸 :吸取分析纯浓硫酸(比重1.84)55.5毫升,缓缓如入944.5毫升水定容至1000毫升。6. 0.01 mol/L硫代硫酸钠:称取26克硫代硫酸钠(Na2S2O35H2O)和0.4克碳酸钠,用煮沸冷却的蒸馏水溶解并定容至1000毫升,配制后放置三天再标定。四、操作步骤1糖化曲制备(以浅盘麸曲为例) (1)菌种的活化 无菌操作取原试管菌一环接

4、入察氏培养基斜面,或用无菌水稀释法接种,31保温培养47天,取出,备用。 (2)三角瓶种曲培养 称取一定量的麸皮,加入70%80%水,搅拌均匀,润料1h,装瓶,料厚约1.01.5cm,包扎,在9.8104Pa压力下灭菌40min。冷却后接种,3132培养,待瓶内麸皮已结成饼时,进行扣瓶,继续培养34天即成熟。要求成熟种曲孢子稠密、整齐。 (3)糖化曲制备a配料 称取一定量的麸皮,加入5%稻皮,加入原料量70%水,搅拌均匀。b蒸料 园气后蒸煮4060min。时间过短,料蒸不透对曲质量有影响;过长,麸皮易发粘。c接种将蒸料冷却,打散结块,当料冷至40时,接入0.250.35%(按干料计)三角瓶种曲

5、,搅拌均匀,将其平摊在灭过菌的瓷盘中,料厚约12cm。(4)前期管理将接种好的料放入培养箱中培养,为防止水分蒸发过快,可在料面上覆盖灭菌纱布。这段时间为孢子膨胀发芽期,料醅不发热,控制温度30左右。约810h,孢子已发芽,开始蔓延菌丝,控制品温3235。若温度过高,则水分蒸发过快,影响菌丝生长(5)中期管理这时菌丝生长旺盛,呼吸作用较强,放热量大,品温迅速上升。应控制品温不超过3537。(6)后期管理这阶段菌丝生长缓慢,故放出热量少,品温开始下降,应降低湿度,提高培养温度,将品温提高到3738,以利于水分排除。这是制曲很重要的排潮阶段,对酶的形成和成品曲的保存都很重要。出曲水分应控制在25%以

6、下。总培养时间约24h左右。(7)糖化曲感官鉴定要求菌丝粗壮浓密,无干皮或“夹心”,没有怪味或酸味,曲呈米黄色,孢子尚未形成,有曲清香味,曲块结实。2.糖化酶活力测定(1)浸出液的制备称取5.0g固体曲(干重),置入250ml烧杯中,加90ml水和10mlpH4.6乙酸-乙酸钠缓冲液,摇匀,于40水浴中保温1h,每隔15min搅拌一次。用脱脂棉过滤,滤液为5%固体曲浸出液。(2)糖化酶活力的测定取2可溶性淀粉溶液25毫升加pH4.5醋酸缓冲液5毫升混匀,在40恒温水浴中预热510分钟加入待测酶液2毫升(空白以蒸馏水代替酶液)准确计时1小时。取出加入4滴20NaOH终止酶反应,冷却至室温。取上述

7、反应液5毫升于定容瓶中,先加入0.05mol/L碘液10毫升,再加0.1 mol/LNaOH 10毫升,摇匀暗处静置15分钟。加入 2N硫酸 2毫升。用 0.05硫代硫酸钠滴定至无色。其与空白消耗硫代硫酸钠毫升数的差值应在46之间,否则要适当调整酶液的稀释倍数。五、计算:A空白所消耗的Na2S2O3的毫升数;B样品所消耗的Na2S2O3的毫升数;90.051毫升1N的Na2S2O3相当的葡萄糖毫克数;V1酶液的体积(2毫升);V2反应液总体积(32.20豪升);V3吸取反应液样品体积(5毫升);N酶液稀释倍数;NNa2S2O3的当量浓度(0.01mol/L)。六、结果1.记录制曲过程中观察到的现象。 2. 酶活力测定结果列表记录。七、思考题1.固体曲和液体曲相比,各有何优缺点?2糖化酶活力测定中应注意哪些因素?

展开阅读全文
相关资源
相关搜索

当前位置:首页 > 生活休闲 > 社会民生

电脑版 |金锄头文库版权所有
经营许可证:蜀ICP备13022795号 | 川公网安备 51140202000112号