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1、猪病诊断技术规范一、致病性大肠杆菌的检测1 引用标准参考NT 55-200(动物产品大肠杆菌、粪大肠菌群和大肠杆菌的检测方法）. 范围适用于猪大肠杆菌病的诊断。3 检测方法。 材料3。 营养肉汤3.。2营养琼脂3.1。 EB1.4 TSI3。. IViC生化鉴定管3.1.6小白鼠3.2 分离培养a) 将采集的肝、脾、心血或肠内容物等分别接种伊红美兰琼脂平板(同时接种营养肉汤增菌备用)，置3 培养824 h。b) 观察培养特性，挑取黑色有金属光泽的菌落,用该菌落涂片,革兰氏染色，镜检.c) 如可见到两端钝圆并多以单个存在的革兰氏阴性粗短杆菌，应取个典型菌落再接种于TSI琼脂。d) 同时挑取典型菌
2、落接种营养琼脂,37 培养61h的菌液用于生化特性鉴定。3.3生化鉴定挑取上述菌落纯培养物接种以下生化培养基和乳糖发酵管，(361) 培养2后观察结果.3。1 靛基质试验：a) 滴加ovcs氏靛基质试剂.1 mL于靛基质试验培养基中混合，观察结果。b) 出现红色环的为反应阳性；出现黄色环的为反应阴性。.3。2 甲基红（MR)试验a) 滴加甲基红指示剂0.2 mL于MR-V培养基中混合，观察结果.b) 出现红色为阳性反应;出现黄色为阴性反应。3.3.3 VP试验a) 滴加VP试剂甲液02 mL于MV培养基中混匀，再滴加VP试剂乙液0。1 mL混匀，静置，观察结果。b) 在1 mn内出现红色的为阳
3、性反应;无颜色变化的为阴性反应.阴性结果1 h后再观察一次，出现红色也为阳性反应。3。 枸橼酸盐试验：观察培养基颜色变化,出现蓝色为阳性反应；不变色为阴性反应.3.4 大肠杆菌鉴定结果应符合表1要求。表 大肠杆菌鉴定结果靛基质MRVP枸橼酸盐鉴定+典型大肠埃希氏杆菌-非典型大肠埃希氏杆菌+-+典型柠檬酸盐杆菌-+非典型柠檬酸盐杆菌-+典型产气杆菌+-+非典型产气杆菌出现表1的生化反应类型时，如果为组织样品，由此可初步报告为致病性大肠杆菌。如果为粪便,尿液,饲料，饮水，应进一步做致病性试验.34致病性试验a) 取经营养肉汤37 培养168 h后的纯化菌株培养液，分别腹腔接种体重0g左右的小白鼠,
4、每株接种3只，每只0.3 m（含菌量约为1102 cumL）,同时用相同数量的小白鼠接种无菌肉汤作对照。b) 饲养观察、记录死亡数，并从死亡鼠的心、肝中回收接种菌。在2小时内出现死亡的可报告为致病性大肠杆菌.4 药敏试验a) 挑选琼脂平板上典型菌落接种营养肉汤培养中，37 培养118 ，菌液用于药敏试验。b) 将肉汤培养物（用标准比浊管比较达相同浊度）稀释至含菌量为10 cf/m，摇匀后蘸取菌悬液均匀涂布于琼脂平板上，然后用无菌镊子将药敏片贴附其上,每纸片25张，置7 培养24 h后观察.c) 根据抑菌圈大小来判定其对药物的耐受性，选择敏感药物。二、沙门氏菌的检测 引用标准 参考/50-22（
5、动物和动物产品沙门氏菌检测方法)。2 范围适用于猪沙门氏菌病的诊断。3 检测方法3。材料3.1。1 SC3。1.2H.1.TI。14 赖氨酸脱羧酶（LD）.1. 邻-硝基酚D-半乳糖苷（DNPG）1.6 甘露醇糖发酵管3.2分离培养a) 采集疑似病例的肝、脾、心血或肠内容物样品.b) 无菌剪取肝、脾样品1g，投入10 mL SC增菌液中（血液、粪便样品可以采适量直接投入0 mL增菌液）,61 培养1824 。c) 取一接种环增菌液划线接种于HL琼脂平板上,361 培养84 h.观察平板上菌落生长形态。沙门氏菌在DHL平板上呈无色半透明，产硫化氢（H2S），菌落中心黑色或几乎全黑色。3.3 生化
6、鉴定a) 挑取DHL平板上可疑菌落3个，每个菌落先洗入S培养基冷凝水中，继而在斜面上划线接种并高层穿刺接种。b) 再挑取同一菌落依次接种氨基酸脱羧酶发酵试验（D）和ONPG，甘露醇糖发酵管三支生化管，若菌落偏小,二次挑取菌落有困难,可用接种环醮取TSI培养基中冷凝水接种其余生化管，3 培养14 h（挑取菌落后的平板，应置于4 冰箱保留48h以备复查）.c) 按表记录反应结果，对照表2进行判定。d) 凡符合表2生化反应模式，可报告为沙门氏菌。表1 生化反应结果判定生化管SILDONPGAN底a斜面硫化氢第一次颜色记录符合黄+黄+黑+紫+深黄+黄+第二次颜色记录符号红红无黑色-黄无色或淡黄紫 “底
7、”观察葡萄糖反应.b “斜面”观察乳糖和蔗糖反应。表2 生化检测沙门氏菌属判定表序号TSIDONAN判定底斜面硫化氢ABCbEcFd+-+-+-+-+-沙门氏菌亚种、沙门氏菌亚种b、5沙门氏菌亚种a、1%b、15%少数沙门氏菌亚种少数沙门氏菌亚种甲型副伤寒沙门氏菌非沙门氏菌a含1%硫化氢阳性的大肠埃希氏菌,可加试靛基质加以鉴别，其中大肠杆菌阳性,沙门氏菌阴性。b赖氨酸阴性的沙门氏菌主要有：甲型副伤寒、伤寒、猪霍乱沙门氏菌孔成道夫变种、鸡等。c 硫化氢阴性的沙门氏菌主要有：甲型副伤寒、伤寒、猪霍乱、猪伤寒、仙台、贝塔、巴布亚、鸡、马流产、山夫登堡、都柏林登。.d可直接用()单因子血清证实,以排除
8、雷极氏普罗菲登斯菌登.4药敏试验a) 挑选DH平板上典型菌落接种营养肉汤培养中，61 培养1618h,菌液用于药敏试验。b) 将肉汤培养物（用标准比浊管比较达相同浊度）稀释至含菌量为109 cfumL，摇匀后蘸取菌悬液均匀涂布于琼脂平板上，然后用无菌镊子将药敏片贴附其上,每纸片25张，置361 培养24 后观察。c) 根据抑菌圈大小来判定其对药物的耐受性，选择敏感药物。三、产气荚膜梭菌的检测 引用标准 自定标准.2 范围适用于猪产气荚膜梭菌病的诊断。3 材料3。 绵羊血琼脂3。 牛乳培养基。4 组织染色镜检对疑似病例的肠道黏膜涂片，魏氏梭菌呈+,直杆状，两端钝圆，单在或成双，无鞭毛，不运动.芽
9、孢大而卵圆，位于菌体中央或近端,多数菌株可形成荚膜.5 分离培养可将肠道内容物接种血平板,37 厌氧培养84 h后观察.菌落特点:魏氏梭菌在血平板上可形成直径5 m、圆形、边缘整齐、灰色至灰黄色、表面光滑半透明、圆屋顶状菌落,有双层溶血环。可通过镜检对形态进一步确定.6 生化鉴定对牛乳培养基的“暴烈发酵”。7肠内毒素检查采集空肠后段或结肠前段内容物,加适量生理盐水稀释，经离心沉淀后取上清液分成两份，一份加热（6 30min）.两份上清液分别静脉注射家兔（13m）或小鼠(0。10。ml）.如有毒素存在，不加热组动物常于数分钟至数小时内死亡,而加热组动物不死亡。8报告因为正常人畜肠道内存在此菌，并
10、且发病菌主要靠在肠道内产生毒素致病，细菌本身并不侵入机体。因此只有细菌分离和肠毒素检查都符合,并结合临床症状才能报告产气荚膜梭菌感染。鉴别型和C型要靠中和保护试验.四、猪痢疾诊断1引用标准参考NY/T 545202。2 范围适用于猪痢疾（S）的实验室诊断。3粪便中Sh显微镜检查。1材料3。1器材：显微镜，暗视野镜头，玻片及盖玻片，酒精灯等3.。 染色液：结晶紫染色液或稀释的石炭酸复红.。3 样品:病猪新鲜粪便(含粘)或直肠拭子或大肠内容物及黏膜32 操作方法3。1 染色样品制作:取样品直接抹片，干燥，火焰固定，以1.22结晶紫液或稀释复红染色 i3 n，水洗,吸干后待检.3。23 悬滴样品制作
11、：取样品少许悬于生理盐水,待检。每份样品最少制片张3.2.显微镜检查:染色样品以油镜直接观察，悬滴样品在暗视野41000倍镜头下观察。3结果判定典型Sh菌体长685 m,呈25个密螺旋体，两端尖锐,呈蛇样活泼运动。当视野中有数量（35条以上)h样菌体时,在获培养前，可作为诊断的重要参考. 分离培养和鉴定4。1 材料准备41。1 器材：厌氧培养装置及使用方法，细菌学实验常规器材，外科手术器材，微孔滤器和0。65m滤膜。.1。试验动物：小鼠(20左右）.1。3 试剂：PBS（0。01M,pH7.2),生理盐水,多粘菌素,SA。1. 样品：病猪新鲜粪便或大肠粘膜刮取物（含粘液)。对死猪或扑杀猪大肠分
12、段结扎（每段1），分离取出。样品应尽早分离培养，也可4 保存47 d。. 操作方法。. 样品种h镜检将样品少许摸片染色或作成悬滴标本，镜检,观察S有无活力.含菌量少且无活力者，则难以分离成功。4。2。2 分离培养4。2。2.1 直接划线分离法：即取样品直接在TSA上划线接种若干皿。4。2。2。 集菌法：先将样品以生理盐水或PBS作1：5稀释，mi，弃去沉淀。将上清液再以6000000min离心20n.取沉淀划线接种TSA若干皿.4。2。2.3 稀释法:将样品或集菌法的沉淀物作10倍梯度稀释至1060-8。取各梯度稀释液各滴，分别划线接种于TS上，(每梯度稀释液最少接种3皿）。接种后的培养皿置厌
13、氧罐内进行厌氧培养。若上述稀释液中加入多粘菌素200 UmL00 U/L,可提高分离率。4.3 结果判定4。31 观察每隔24开罐检查一次,共次，观察有无溶血区及溶血菌落。致病性S呈强溶血,一般看不见菌落。当培养条件适宜时,再溶血区可见到云雾状菌苔。无害蛇样螺旋体等呈弱溶血.4。3。2 移植纯化先作溶血区内物质涂片，染色镜检。如见Sh样菌体，可在无菌落溶血区内移取小块琼脂划线于TSA若干皿。如此每隔2天移植一次，一般2次后即可纯化和保存.33猪蛇样螺旋体鉴定43.1溶血试验将猪蛇样螺旋体、无害蛇样螺旋体或毛肠蛇样螺旋体及被检菌株,分别划线于同一TS上不同区内，经4 培养后，观察比较其溶血程度。4.33。2 肠致病性试验每菌株至少接种6只小鼠,将小鼠停饲24 h后,每只每次灌服1 mL（含菌3亿），次日再灌服一次,15 d后剖检观察盲肠病变。感染后0出现腹泻和病变者，则为致病性Sh。五、猪巴氏杆菌病诊断技术1 引用标准参考NY/T5642002。范围适用于猪巴氏杆菌病的检测。3材料3。1改
