毛囊组织DNA提取方法的研究.doc

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1、药物性耳聋线粒体12S rRNA基因1555G点突变基因检测的实验室技术体系人头发毛囊组织DNA提取方法的研究技术保障与研发部 魏宏泉摘要 本研究以人头发的毛囊组织为材料,在动物组织总DNA提取的经典技术方案基础上,兼顾效率、成本和产率等三方面因素,对毛囊组织DNA提取方法进行了优化,并设计了实用有效的取样方法。研究结果显示,可以以少至一根带毛囊的头发为材料,在40分钟时间内获得约0.5mg组织DNA,其产量和质量可以满足基因检测工作后续流程的需要。同时,一次提取过程所耗药品试剂的成本约为0.3元,大大低于以微量血为材料的试剂盒提取法的成本。在以RFLP法对线粒体12s rRNA基因1555位

2、点进行基因检测的技术体系中,组织DNA提取是实验室工作的第一步,该工作的效率、质量、成本等因素对整体检测流程具有至关重要的影响。在此之前的研究工作中,我们确定了以微量血为材料提取组织DNA的技术方法,但为了使基因检测项目的实施具有更强的可操作性,设计多样化的组织样本采集形式则是必需的。为此,本研究以人头发毛囊组织为材料,旨在建立适用的取样方法和DNA提取方法的技术体系。1. 材料与方法人头发毛囊组织取自健康成年人。取样方法:用镊子夹住头发根部的部位,顺着毛发生长方向用力一拔即可,此时在毛发根部应明显可见白色或半透明的毛囊组织。然后用剪刀剪去大部分的毛干部分,将毛根带有毛囊组织的部分置于1.5m

3、l Eppendorf管内。试剂配制(1) Proteinase K Proteinase K用去离子水溶解,浓度20mg/ml。(2) 组织消化液 10mM Tris-HCl,pH7.5 10mM EDTA 10mM NaCl 0.5 SDS(3) LiCl溶液 无水LiCl用去离子水溶解,浓度为7.5M。(4) TE溶液 10mM Tris-HCl,pH7.5 0.1mM EDTA,pH8.0参考操作程序(1) 加入60ml消化液,再加入1ml蛋白酶K溶液,用涡旋混合器震荡5秒钟。(2) 于55水浴2小时。(3) 加入60ml LiCl溶液,用涡旋混合器震荡5秒钟,冰浴10分钟。(4) 1

4、3 000rpm离心15分钟,将上清移入一个新的离心管中。(5) 加入240ml无水乙醇,颠倒混匀后室温放置10分钟。(6) 13 000rpm离心10分钟,弃上清,用70乙醇将沉淀洗一次。(7) 13 000rpm离心5分钟,弃上清,并将残留乙醇吸干净,室温干燥20分钟。(8) 加入20ml TE缓冲液溶解DNA。(9) 用1琼脂糖凝胶电泳进行检测。头发数量对DNA提取结果的影响将拔取的头发分为6组,分别为1、2、3、4、5、6根头发,按1.3中的参考操作程序进行操作,提取DNA并用电泳检测结果。蛋白酶K消化对DNA提取结果的影响(1) 将拔取的头发分为4组,每组1根,在操作程序中加入蛋白酶

5、K后,55水浴时间分别为15分钟、30分钟、45分钟、60分钟,其余步骤按参考操作程序进行。(2) 将拔取的头发分为6组,每组2根,在操作程序中加入蛋白酶K后,55水浴时间分别为0分钟、10分钟、20分钟、30分钟、60分钟,其余步骤按参考操作程序进行。(3) 将拔取的头发分为6组,每组2根,其中5组在操作程序中加入的蛋白酶K浓度分别为20mg/ml、10mg/ml、5mg/ml、2.5mg/ml、1.25mg/ml,最后一组不加蛋白酶K,其余步骤按参考操作程序进行。(4) 将拔取的头发分为5组,每组1根,在操作程序中不进行加入蛋白酶K及水浴步骤,其余步骤按参考操作程序进行。优化操作程序的多样

6、本比较实验以五个人为对象,各拔取两根头发作为样本分为两组,每组一根头发,共计10组,以下列操作程序提取DNA:(1) 加入60ml消化液,再加入1ml蛋白酶K溶液,用涡旋混合器震荡5秒钟。(2) 于55水浴10分钟。(3) 加入60ml LiCl溶液,用涡旋混合器震荡5秒钟,冰浴10分钟。(4) 13 000rpm离心10分钟,将上清移入一个新的离心管中。(5) 加入240ml无水乙醇,颠倒混匀后室温放置10分钟。(6) 13 000rpm离心10分钟,弃上清,用70乙醇将沉淀洗一次。(7) 13 000rpm离心5分钟,弃上清,并将残留乙醇吸干净,室温干燥20分钟。(8) 加入20ml TE

7、缓冲液溶解DNA。(9) 用1琼脂糖凝胶电泳进行检测。(10) 各取2ml DNA溶液作为模板进行PCR,PCR反应体系及程序设置按照“药物性耳聋易感基因检测的RFLP标准操作程序”进行。2. 结果与分析2.1 头发数量对DNA提取结果的影响 以1-6根头发为材料,每组都可以有效提取出基因组DNA,1-3根头发组的DNA产量有较为明显的随头发数增多而产量也增多的变化,3-6根头发组的DNA产量则没有明显差别。如图1所示。Lane1:一根头发提取DNA的结果Lane 2:二根头发提取DNA的结果Lane3:三根头发提取DNA的结果Lane 4:四根头发提取DNA的结果Lane5:五根头发提取DN

8、A的结果Lane 6:六根头发提取DNA的结果Lane M: MW marker DL 2000 ( 20ng / band )1 2 3 4 5 6 M 2000bp图1 头发数量对DNA提取结果的影响在图1显示的电泳结果中,第1、2、3条带的亮度逐渐增加,说明随着头发数的增加其相应的DNA产量也随之增加,而第3、4、5、6条带的亮度差异不明显,说明所获得的DNA产量基本相同注注1:DNA条带的亮度差异包含因不同样本的毛囊大小不同而导致的DNA产量差异这一因素,本研究中对此差异忽略不计。本研究中各实验都存在此现象,在此一并说明,后文不再一一注解。而事实上1-6根头发中所含DNA的量应该是随头

9、发数量增加而递增的,出现这种矛盾现象的可能原因是:相同的消化液和蛋白酶K使用量并不适用于处理不同数量头发。在本实验中,所使用的60ml消化液和1ml蛋白酶K可能是对应于1-3根头发的合适用量,可以达到完全裂解细胞膜和细胞核并释放DNA的效果,而4-6根头发可能造成了蛋白酶反应底物的过量,这些过量的组织细胞并没有被裂解,因此所释放出的总DNA量仍与1-3根头发释放的DNA量相当。从电泳结果显示的条带亮度来看,由于所使用的DNA分子量标准每条带的亮度约为20ng,因此可以估测认为,本实验从一根头发中提取出的基因组DNA约为400-600ng,该产量对于基因检测的技术实施来说已经足够,完全可以满足后

10、续工作的需要。2.2 蛋白酶K消化对DNA提取结果的影响在蛋白酶K反应体系中,组织样本中细胞的裂解率是受酶促反应时间和酶与底物比例影响的。本实验中各组均以一根头发为材料提取DNA,同时所使用的蛋白酶K适度过量,结果DNA产量出现了随时间而变化的梯度上升。(1)蛋白酶K消化时间对DNA提取结果的影响。1 2 3 4 M Lane1:水浴15分钟所提取的DNALane 2:水浴30分钟所提取的DNALane3:水浴45分钟所提取的DNALane 4:水浴60分钟所提取的DNALane M: MW marker DL 2000 ( 20ng / band )2000bp图2 蛋白酶K消化时间对DNA

11、提取结果的影响(1)1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 M 2000bpLane1-2: 未进行水浴所提取的DNALane 3-4:水浴10分钟所提取的DNALane5-6:水浴20分钟提取的DNALane 7-8:水浴30分钟提取的DNALane 9-10:水浴60分钟提取的DNALane M: MW marker DL 2000 ( 20ng / band )图3 蛋白酶K消化时间对DNA提取结果的影响(2)从图2可以看出,蛋白酶K消化时间与DNA产量之间的对应关系是:在30分钟之内,细胞裂解率与消化时间成正比,而超过30分钟之后,DNA产量不再增加。产生这一现象的原因可能是:在60

12、ml消化反应体系中加入1ml蛋白酶K已经达到过量的水平,虽然参考程序中建议消化2小时,但本反应体系在反应进行到30分钟时已经将组织细胞全部裂解。进一步的计算结果表明,该反应体系中蛋白酶K的实际工作浓度为333ng/ml,而哺乳动物组织DNA提取的经典技术方案中推荐的蛋白酶K工作浓度一般是100ng/ml,本实验中蛋白酶K过量2.3倍,因此,原本应该会产生的随消化时间(30-60分钟时间段)而变化的DNA释放效率因酶的过量而被弥补了。在图3中可以看出,在进一步的实验结果中也显示了同样的现象:即10-30分钟时,细胞裂解率与消化时间成正比,而超过30分钟之后,DNA产量不再增加。同时我们也可以看到

13、,不进行水浴是无法得到DNA产物的,这也进一步说明了蛋白酶K在消化液成分中的重要性,以及适宜温度对酶促反应的重要性。(2)蛋白酶K用量对DNA提取结果的影响1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 M Lane1-2: 20mg/ml蛋白酶K组Lane 3-4:10mg/ml蛋白酶K组Lane5-6: 5mg/ml蛋白酶K组Lane 7-8: 2.5mg/ml蛋白酶K组Lane 9-10:1.25mg/ml蛋白酶K组Lane 11-12:无蛋白酶K组Lane M: MW marker DL 2000 ( 20ng / band )2000bp图4 蛋白酶K用量对DNA提取结果的影响

14、(1)1 2 3 4 5 M Lane1-5:无蛋白酶K的平行实验组 Lane M: MW marker DL 2000 ( 20ng / band )2000bp图5 蛋白酶K用量对DNA提取结果的影响(2) 如图4所示,当使用的蛋白酶K的浓度为20mg/ml、10mg/ml、5mg/ml时,DNA产量大致相当,其中5mg/ml组较其它两组为少。当使用的蛋白酶K的浓度为2.5mg/ml、1.25mg/ml时,DNA产量较前三组明显减少。无蛋白酶组中只有一个样本有少量DNA产物。将使用的蛋白酶K用量换算成终浓度,则各组中蛋白酶K的工作浓度分别为333.3ng/ml、166.7ng/ml、83.

15、3ng/ml、41.6ng/ml、20.8ng/ml,如果以100ng/ml做为反应体系中蛋白酶K的标准工作浓度,可以在发现2.5mg/ml组和1.25mg/ml组中,蛋白酶K用量显然不足,因此DNA产量较前三组明显减少。图5显示的是无蛋白酶K及其55水浴步骤时DNA提取的结果。将这一结果和图4显示的结果相比较,我们可以发现消化液与蛋白酶K在释放DNA过程中有效反应条件的差异:当无蛋白酶K参与反应时,55水浴处理可以增强消化液的作用效果,其结果是也可以释放部分DNA,但如果减去了水浴处理步骤,在室温条件下,消化液则不能起到有效释放DNA的作用。参照图3显示的酶促反应条件结果,即便消化液与蛋白酶K同时存在,如果不进行55水浴处理仍然不能起到应

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