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1、实验13药物对离体豚鼠回肠的作用目的观察acetylcholine 、histamine和BaCI2等药物对离体豚鼠回肠平滑 肌的作用，以atropine及chlorpheniramine 两药为工具，初步分析上述三药作 用原理。材料豚鼠；小剪刀，小镊子，培养皿，麦氏浴槽，胶管，通气钩，气泵，棉 线，木槌；气泵，张力换能器，超级恒温器，PcLab生物信号采集处理系统；台氏溶液，acetylcholine chloride 溶液(1:10 万，0.1% atropine sulfate 溶 液，histamine phosphate 溶液(1:10 万(临用时新鲜配制、chlorpheniram
2、ine 溶 液(1:100 万、1%BaCl2 溶液。方法和步骤1 离体肠管描记装置的准备(见图10-13-1 o(1) 麦氏浴槽中充以台氏液至固定水平面，调节超级恒温器的温度至 37C,保证麦氏浴槽内37C 0.5 C恒温。(2) 胶管的一端接气泵出口，胶管的另一端连接通气钩。2. PcLab参数设置：(1) 按图10-13-1连接装置。将张力换能器固定于铁支柱上，换能器输出线 接微机生物信号处理系统第二通道(亦可选择其它通道)，选择直流耦合方式(DC。(2) 微机生物信号处理系统参数设置：采样间隔2ms连续记录显示模式， 压缩比100:1，第二通道放大倍数200500、高频滤波选择“无”。
3、3. 取豚鼠一只，用木槌击其头部处死，立即剖开腹腔，找到回盲部，然后，在离回盲部1cm处剪断，取出回肠约10cm左右一段，置于盛有充以空气的台氏液 培养皿中，沿肠壁除去肠系膜，然后将回肠剪成数小段(每小段1-1.5cm)，用5ml注射器吸取台氏液将肠内容物冲洗干净，换以新鲜台氏液备用。注意操作时勿牵拉肠段以免影响收缩功能4 取一小段肠管置于盛有台氏液的培养皿中，在其两端对角壁处，分别用缝 针穿线，并打结。注意保持肠管通畅，勿使其圭寸闭。肠管一端连线系于通气钩钩 上，然后放入37C麦氏浴槽中。用螺丝夹调节气泵出气口的胶管，通气速度以麦 氏浴槽中的气泡一个个逸出为宜。再将肠管的另一端加于拉力换能器
4、，并调节肌 张力至适度(图10-13-1。通气管顒柚口热柚口 Uil图10-13-1离体肠管描记装置图观察项目1 待离体回肠稳定1030分钟后，记录一段正常收缩曲线后，依次于麦氏浴 槽中滴加下列药物。加入一种药液后，接触2分钟，并观察收缩幅度，然后用台氏液连续冲洗二次，待基线恢复到用药前的水平，随后记录一段基线。再加入第 二种药液。浴槽液体的容量每次都应一致。2. 加入1:10万acetylcholine(Ach0.2ml(2 卩g，观察并记录其收缩幅度(若 肠段未达到痉挛收缩则适当增加药量，23分钟后换液。3. 重复以上Ach剂量，待收缩达最高点时，加入 0.1 % atropine 0.2
5、ml，观察结果如何。不换液，待曲线恢复至基线或基本稳定后，再加入相同浓度的 Ach，并与结果相比较。4. 加入1:10万histamine 0.3ml（3卩g,待作用明显时（12分钟，迅速换液。使肠肌恢复正常。5 .加入1:10万chlorpheniramine 溶液0.2ml 5分钟后（不换液，加入同量 histamine，观察其反应，并与比较。此结果说明什么（必要时可再加chlorphe niramine 的剂量重复之？6.加入1%BaCI2溶液1ml,观察其反应，当作用达最高点，肠段持续于痉挛 收缩状态时，加入0.1%atropine溶液0.2ml（或更大剂量，对肠肌收缩有何影 响？此结果说明什么？结果1. 记录各药物作用前后肠肌收缩曲线（包括正常对照曲线）。测量各药物作 用前后肠肌的收缩张力并进行统计处理。2. 分析和探讨各药物对肠肌收缩的影响及机制。
