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1、单克隆抗体的制备、纯化及鉴定一、实验目的：单克隆抗体制备是细胞免疫学的一个重要里程碑，它涵盖了细胞培养、细胞融合、 免疫动物和抗体效价检测等各个方面内容。二、实验原理：骨髓瘤细胞在体外培养能大量无限增殖，但不能分泌特异性抗体；而抗原免 疫的B淋巴细胞能产生特异性抗体，但在体外不能无限增殖。将免疫脾细胞与 骨髓瘤细胞融合后形成的杂交瘤细胞， 继承了两个亲代细胞的特性，既具有骨髓 瘤细胞能无限制增殖的特性，又具有免疫 B细胞合成和分泌特异性抗体的能力。 经在HAT培养基含有次黄嘌呤（H）、氨基喋呤（A）和胸腺嘧啶核苷（T）中进行选 择性培养，未融合的脾细胞因不能在体外长期存活而死亡； 未融合的骨髓
2、瘤细胞 合成DNA的主要途径被培养基中的氨基蝶呤阻断，又因缺乏次黄嘌呤-鸟嘌呤-磷酸核糖转移酶（HGPRT），不能利用培养基中的次黄嘌呤完成 DNA的合成过 程而死亡。只有融合的杂交瘤细胞由于从脾细胞获得了次黄嘌呤-鸟嘌呤-磷酸核糖转移酶，因此能在HAT培养基中存活和增殖。经过克隆选择，可筛选出能产 生特异性单克隆抗体的杂交瘤细胞， 在体内或体外培养，即可无限制地大量制备 单克隆抗体。三、试剂与器材：细胞培养板、解剖器械、平皿、酶标仪、加样器、细胞计数板、C02培养箱、倒置显微镜等。四、操作方法：1、抗原制备；一般而言，抗原的纯度不很重要，特别是免疫原性较强的抗原。A 可溶性抗原（蛋白质）以1
3、mg/ml5mg/ ml的溶液加等量的弗氏完全佐剂乳化，分多点小鼠皮下注射，总量为 0.3ml0.6ml，间隔35周再同样注 射一次，10天后，断尾取血一滴，测抗体效价，选滴度高的小鼠做融合试验。 一个月后可以经静脉（尾静脉）给予无佐剂抗原 0.2ml0.4ml,34天后，杀 死小鼠取脾做融合用。B. 颗粒性抗原 如抗原来源方便， 可以不加佐剂而增加免疫次数， 缩短间隔 时间。例如用羊红血球免疫小白鼠，以1%浓度每只皮下注射0.2 ml，每周2次，共免疫58次，取脾前3天，再免疫一次即可。有人认为最后一次免疫剂 量要大，大到近于免疫耐受的程度更好。2、免疫动物；目前应用最广的是小白鼠和大白鼠，
4、尤以小白鼠为好。品系以Balb/c小白鼠应用最广，因为所有的小白鼠骨髓瘤系均从Balb/c小白鼠系诱导出来。Balb/c系小白鼠必须用纯系的，雌雄均可，以 812周龄为宜。免疫程序、剂量和方法关系到能否得到所需要的单克隆抗体的关键之一。 正常小鼠脾脏含有能产生各种不同抗体的 B 淋巴细胞，一只纯种小白鼠能 产生1.0X1075.0X107种不同的抗体。因此一只正常的小白鼠的脾细胞与小鼠 骨髓瘤融合， 只能有千万分之一的机会获得某一种特定抗体。 所以为了提高得到 某种杂交瘤的机会，必须加强免疫，使产生特异性抗体的 B 淋巴细胞大量增加。B 淋巴细胞的不同发育阶段对获得阳性杂交瘤也有很大影响。 有
5、人认为处在 转化时期的 B 淋巴细胞可能更易于融合，而免疫以后 78 天，虽然是抗体产生 的高峰时期， 但形成有活力的杂交瘤细胞的可能反而减少。 故一般认为加强免疫 后的第三天应杀鼠取脾做细胞融合。3、免疫脾细胞和骨髓瘤细胞的制备；脾细胞制备 免疫过的血清抗体滴度高的 Balb/c鼠，拉颈或用C02处死小白鼠。(2) 将小鼠放于 70%酒精中浸泡消毒，取出固定于板上，在无菌条件下取脾。把脾放入5ml含有2.5% FCS的1640液中，冰浴下轻轻洗去脾上的红血球。(4) 用镊子轻轻挤压脾，做成脾细胞悬液，用毛细管将悬液移入小试管中。(5) 直立小试管3min，使大块的结缔组织下沉，把细胞悬液移入
6、离心管中。 以2.5%FCS1640充满离心管，并以400g离心7min10min (与此同时应 开始制备骨髓细胞)。(7) 把沉淀用约10ml的新鲜培养液再悬浮。(8) 重复、步骤。(9) 计算细胞，以台盼兰染色用相差显微镜检查，活细胞数应高于80%为合格。骨髓瘤细胞制备骨髓瘤细胞能产生并分泌大量的免疫球蛋白， 这样的瘤细胞融合后， 可能影 响或降低所分泌抗体的滴度， 所以 必须选育出非分泌免疫球蛋白缺陷型的骨髓瘤 细胞。选择骨髓瘤细胞的条件： 该瘤细胞系的来源应与制备脾细胞小鼠为同一品 系，以便两者的组织相容性抗原一致； 骨髓瘤细胞必须是静息状态，不产生丫 球蛋白或不分泌到细胞外；骨髓瘤细
7、胞生长需要一个较高的细胞密度，最好106个细胞/ml;生长速度快，繁殖时间短。目前常用的Balb/c小鼠产生的骨髓瘤细胞株有：S194/5XXO BU1; SP2/ 0 Ag14 （简称 SP2）; P2 X ? Ag8 6 5 3 （简称 653）; FO 以653最为常用，它是由矿物油4甲基一15烷（Pristane,降植烷）诱发出来 的一种浆细胞瘤（Minerol Oil plasmacy toma，MOPC）并经过培育形成一株 8- 氮鸟嘌呤有抵抗力的亚系。骨髓瘤细胞一般由有关单位直接引入，保存于-195C液氮罐中，试验时复苏、 增殖、传代即可。由于骨髓瘤细胞是半贴壁状态，很容易脱落，
8、因此不需要胰酶 处理。为了防止出现返祖现象，在融合前，可将培养基内加入15卩g/ml 8-氮鸟 嘌呤。取约1X 1076X107对数生长期（即培养15h20h）的骨髓瘤细胞，在 室温离心（400g） 10min，沉淀以2.5% FCS1640液再悬浮并计数。 饲养细胞在体外的细胞培养中， 单个的或数量很少的细胞不易生存与繁殖， 必须加入 其它活的细胞才能使其生长繁殖，加入的细胞称之为饲养细胞（ Feeder cell）。 在细胞融合和单克隆的选择过程中， 就是在少量的或单个细胞的基础上使其生长 繁殖成群体， 因此在这一过程中必须使用饲养细胞。 许多种类的动物细胞都可以 做饲养细胞，如正常的脾细
9、胞、胸腺细胞、腹腔渗出细胞等，常选用腹腔渗出细 胞，其中主要是巨噬细胞和淋巴细胞。 应用腹腔渗出细胞的好处是： 一方面做饲 养细胞，另一方面巨噬细胞可以吞噬死亡的细胞和细胞碎片， 为融合细胞的生长 造成良好的环境。 腹腔细胞的来源可以是与骨髓瘤细胞同系鼠。 也可以是其他种 类的小鼠，女口 C57鼠，昆明小白鼠等。(1) 拉颈处死小鼠。(2) 70%酒精浸泡消毒10min。(3) 用手术剪将小鼠腹部剪开一小口，剥开皮肤，露出腹腔。(4) 用注射器将4ml 11.6%蔗糖溶液注入腹腔，用手指轻揉 1min仍用该 注射器回抽腹腔液体，加入离心管。(5) 1 000ry min 离心 10min。(6
10、) 取上清，以HAT选择培养液将细胞制成悬液。台盼蓝染色计数活细胞， 使每毫升含40万个活细胞。(7) 以1ml吸管将细胞种入微量培养皿，每孔 0.05ml，含2万个细胞，放 入CO2培养箱培养，即可供细胞融合和克隆化之用。如果在融合后发现在培养 孔中饲养细胞数量少，则可以在细胞换液时再加入一些。4、细胞融合；小鼠骨髓瘤可以在体外培养液中生存并大量繁殖。 经过用某种抗原免疫的小 鼠及淋巴细胞能分泌某种抗体，但小鼠的 B淋巴细胞在一般培养某中不易存活。 如将小鼠的骨髓瘤细胞与分泌霜种抗体的B淋巴细胞在融合因子(聚乙二醇，PEG)作用下产生融合，则融合的细胞既具有肿瘤细胞易分裂增殖的特性，又具 有
11、B淋巴细胞分泌特异性抗体的能力，在 HAT选择培养基中可以选择得到杂交 细胞。这种融合的被称为淋巴细胞杂交瘤的细胞可以在体外培养液中大量繁殖生 长，从培养液上清中可以收集到大量某 B淋巴细胞产物一一单克隆抗体。(1) 取末次免疫后的第3天小鼠脾细胞悬液，将108小鼠脾细胞与1-5X107SO 2/O小鼠骨髓瘤细胞混合于50毫升刻度离心管中，经1000转/分离心7分钟；(2) 弃上清液，尽可能除得干净，用手指轻叩离心管底部，使沉淀混匀如糊状， 离心管置37r水中进行水浴(一小烧杯中)，准备融合；(3) 将37C水浴中保温的50%PEG1.0毫升(实际应用0.7毫升)用滴管缓慢滴 入离心管中，在6
12、0秒钟内滴完，在37E水浴中边滴边摇边离心管，使细胞保存 在混匀状态；(4) 加完PEG后，将细胞悬液放在37C水浴中静置90秒钟，立即在2 4分 钟内加入15毫升无血清的RPMI-1640培养基(37C)，开始要一滴一滴地加， 由于稀释使PEG停止作用。注意尽可能不搅动细胞；(5) 再经100转/分离心10分钟。弃去上清液，加25毫升HAT培养液，轻轻 混匀，将混悬液分装已有巨噬细胞的两个 24孔培养板中，每孔 0.5毫升；(6) 将培养板放在水蒸汽饱和 C02孵箱中，37 C孵育。C02含量为5%;(7) 每 2-3天换一次 HAT 培养液，连续 2周观察杂交瘤细胞是否出现。 2周后 使用
13、 HT 培养基。5、单克隆抗体检测 用检测抗体的方法从杂交细胞中筛选出生产指定抗体的杂交株是很重要的。 检测 抗体的方法很多， 从沉淀反应到放射免疫测定。 由于细胞培养液中的抗体浓度通 常是很低的， 而且传统的检测方法多是以多价抗原与多克隆抗血清相反应。 杂交 瘤产生的抗体则是单克隆的， 所以并不是每项方法都能适用。 一定要选择敏感的、 快速的、一次又能检测多份样品的方法。如：膜荧光检测法(1) 材料：培养液HEM或RPMI 1640;荧光试剂：异硫氰酸荧光素(FI TC)标记的抗小鼠免疫球蛋白；50%甘油缓冲液：1份甘油加1份体积0.05 Mol/L pH 7.2 PBS液混合即成；荧光显微
14、镜、载玻片、盖玻片、吸管等。(2) 操作方法：用培养液洗涤二次细胞，悬浮成 2.0X107/ml :50 pl细胞 悬液加50 p l培养上清液混合，置4C30min,用培养液洗涤3次，1 000r/min 离心；以50PFITC 抗小鼠免疫球蛋白重新悬浮压积细胞，水浴30min60m in :用冷培养液洗3次细胞，重新悬浮；取一滴细胞悬液滴在玻片上，复盖 片，用甘油缓冲液封固，置荧光显微镜下观察。着色细胞也可以在固定后观察， 一滴细胞悬液，涂片、风干，用 95%酒精固定10min，固定后的载玻片用PBS 洗涤，盖上盖玻片，进行观察。免疫球蛋白和亚类球蛋白的检测 以琼脂双扩散试验法进行，此法简
15、单易操作， 特异性好。注意必须将培养液浓缩 1 0 50倍，否则做双向琼扩不出现沉淀线。 其检测方法为：(1) 制备各种兔抗小鼠lgG14、 lgM12、lgA12和K、入抗血清,也可直接 购买。( 2)取 5ml 培养物的上清液缓慢加入 0.5ml 的饱和硫酸铵溶液， 混匀，静置 3h， 离心沉淀，去上清，沉淀加 0.05ml 蒸馏水溶解。(3) 制成1 %琼脂糖凝胶板，打孔。中间孔加 20卩l浓缩上清液，周围孔加20卩I特异性抗血清，以10卩l正常小鼠血清作对照。也可以采用酶联免疫吸附试验 ELISA、间接血凝试验以及放射免疫等方法检测。6、克隆化经过抗体测定的阳性孔， 可以扩大培养， 进行克隆， 以得到单个细胞的后代分泌 单克隆抗体。 克隆的时间一般说来越早越好。 因为在这个时期各种杂交瘤细胞同 时旺盛生长， 互相争夺营养和空间， 而产生指定抗体的细胞有被淹没和淘汰的可 能。但克隆时间也不宜太早，太早细胞性状不稳定，数量少也易丢失。克隆化的 阳性杂交瘤细胞， 经过一段时期培养之后， 也还会因为细胞突变或特定染色体的 丢失，使部分细胞丧失产生抗体的能力， 所以需要再次或多次克隆化培养。 克隆 化次数的多少由分泌能力强弱和抗原的免疫性强弱而决定。 一般说，免疫性强的 抗原克隆次数可少一些，但至少要 35次克隆才能稳定。克隆化的方法很多， 包括有限稀
