《2023年动物科学实习报告(3篇)》由会员分享，可在线阅读，更多相关《2023年动物科学实习报告(3篇)（10页珍藏版）》请在金锄头文库上搜索。
1、2023年动物科学实习报告(3篇) 书目 第1篇动物科学学院学生生产实习报告 第2篇猪场实习报告（动物科学专业实习报告） 第3篇3600字动物科学实习报告范文 动物科学学院学生生产实习报告 崇左市宁明县水产畜牧局，该单位主要负责全县动物疫病防疫工作，包括动物免疫物资的选购、保管和发放，动物免疫工作的技术培训、指导、督办、检查，动物疫病监测、疫病普查、调查报告、疫情处置，制定并组织实施疫病防控措施等;负责畜禽品种资源开发、利用、改良和爱护，组织开展动物疫病及寄生虫病调查、普查、预防，组织实施和管理全县畜禽产品产地、运输、屠宰环节的检疫工作。 我在去猪场实习的同时,还到当兽医站进行屠宰加工检疫.因
2、为工作的特别性质,每天都是凌晨进行,在这期间我都能准时到位上岗严格遵守检疫的工作守则,仔细的做好每一项该做好的事.遇到不明白或不懂的,就向师傅虚心的请教,为能更好的驾驭生猪的屠宰检疫技术. 生猪的屠宰检疫基本程序为头部、皮肤、内脏、胴体和旋毛虫检验五个环节。1、头部检验：头部检验分两步进行，第一步在放血后，烫毛前，用刀将杀口向下颌间隙扩大，在下颌骨支内侧长到左右颌下淋巴结，视察其状态及其四周组织有无胶样浸润，有无出血、化脓、结节等，主要检验炭疽、结核病及化脓性炎症;其次步检验在割头后，在左右侧下颌骨平行处切开咬肌，检查有无囊尾蚴寄生，然后检验咽喉黏膜、会厌软骨和扁桃体，主要检验猪瘟、猪肺疫。2
3、、皮肤检验：猪在脱毛后开膛前，对带皮猪进行皮肤检验，主要视察皮肤的完整性和色泽的改变，留意耳根、四肢内处侧、胸腹部及背部等处有无点状、斑状、充满性发红和出血改变等。3、内脏检验：视检内脏形态、大小及色泽有无改变，有无出血、水肿、糜烂及溃疡等，触检其硬度、弹性及有无结节等改变。4、胴体检验：视检胴体色泽、浅血管内血液滞留状况、肌肉切口的潮湿状况，以判定放血程度;然后细致检查皮肤、皮下组织、肌肉、脂肪、腹膜、关节、筋腱、骨及骨髓等组织，视察有无出血、水肿、脓肿、蜂窝织炎及肿瘤等病变;剖检具有代表性的淋巴结，视察其有无充血、出血、水肿、坏死及化脓等改变。5、旋毛虫检验：主要是目检胴体两侧的横膈膜肌，
4、表面有无针尖大半透亮乳白色或灰白色隆起的小点，如发觉有，再用显微镜进行压片镜检。经检验合格的胴体加盖验讫印章，在运输或销售前，再出具动物产品检疫合格证明。 在实习这段时间里,我学到了课本和课堂上学不到的学问，基本上驾驭了生猪屠宰检疫的要点，相识其检疫的意义.这不但提高了我的专业学问水平，还熬炼了我的动手实力。原来我对猪只的各个部位和组织都不相识，经过实习，我熟识了猪只各部位的构造，学会剖检各个淋巴结，这些实际操作是课本上学不到.眼下社会变革快速，对人才的要求也越来越高，社会是在不断改变、发展的。所以我要用发展的眼光看问题，自身还有许多的缺点和不足，要适应社会的发展，还要不断提高思想相识，自我增
5、值。 猪场实习报告（动物科学专业实习报告） 在这三个月的实习过程中，我深深感觉到，自己在去年的实习中没有把基础的技能学好。量体温的操作不规范，稀释药物和抽药的水平不够专业，打针的速度太慢，打针的位置不太精确。 量体温时，先把体温计甩几下，让它在35°c一下，然后用酒精棉球擦一下，一是起到了消毒的作用，二是体温计潮湿了，便利插进猪的肛门里。插体温计要旋转的插进去，这样会削减阻力，让猪觉得不是很疼。测体温的时间是3分钟，拔出体温计，用酒精棉球擦一下，然后读取温度所在的刻度。 去年的实习，始终以为只要把瓶中液体的药物抽完就可以了，忽视了细微环节。稀释青霉素，须要用复方氨基比林稀释，有时候用氯
6、化钠生理盐水也可以的，但是不行以用葡萄糖注射液，虽然也有氯化钠，但是这样稀释了，会影响到药物的效果。将10毫升的氨基比林抽完，打到青霉素瓶，注射器不用拔出来，固定好，将瓶子来回的摇摆，等到瓶中看不到固体的青霉素粉末，说明已经稀释好了，抽的时候尽量不要来回的抽，这样会产生许多的泡沫。稀释速克（头孢噻呋），可以用黄芪多糖，也可以用生理盐水。速克的瓶子都是真空的，将稀释液打到瓶中，然后拔出，摇摆瓶子，使其溶解。先在注射器抽一些空气，然后将针头插到瓶子的凹口中，将空气打到瓶中，再抽药，抽到最终，将瓶子甩一下，使其中的药液全部汇合到一处再抽，这样抽的比较干净。 打针不够快、准。在刚起先的一段时间里，对于
7、猪栏里乱跑的猪感到无从下手，总是跑来跑去，不好打，当时很厌烦打针，总是打不好，不想打。后来驾驭了一些窍门和技巧，打的多了，娴熟了。比如猪睡在靠近栏位旁边，可以在外面打，这样好打又省时间，假如进去打，没打好，猪跑来跑去，就有不必要的麻烦了。有时候猪在乱跑，你可以停一下，让它跑累了，自己就会停下来了，抓住时机，立刻打，就省力多了。刚起先打针，知道该打在哪个部位，可是打了之后就看出有偏差了。正确的注射部位是在一个劲部等边三角形内，以大猪为例：三角形的底边于肩前2厘米，顶角距耳后2厘米，上边于劲韧带下，注射点最好在三角形中部。注射部位太高，腰围会注于劲韧带、脂肪层，汲取不良，药效较差；注射点太低，药液
8、会注入腮腺、刺伤劲椎。注射点偏后会刺伤肩胛骨，不仅药效较差，还会产生炎症、肿胀。针打多了，还出现了一个问题，就是常常把针头给打弯了。虽然知道该怎么做，但是常常有没做到。在注射时将针头全部刺入猪体内，且用力向畜体方向推注射器，使针头底座与畜体紧靠，并使针管与猪体呈垂直，当猪骚动时猪体能带动针体与猪体同时向前移动，这样猪体内的针头和针管移动是同步的，针头就自然不会因猪体骚动而弯折。 我自己觉得，给猪看病是很重要的。现在的我，可以给猪看病了，看的是症状明显的，拐角的大猪，一般第一次打针运用青霉素+氨基比林，其次次可以增加地塞米松，还有可以加链霉素。脚肿的小猪，可以用头孢曲松、林可霉素。呼吸道疾病，可
9、以用氟苯尼考、卡那霉素、卡那霉素+林可霉素、青霉素+卡那霉素。仔猪拉稀，可以用氧氟沙星，大一些的猪，则可以用乙酰甲喹，还有可以联合用药，乙酰甲喹+庆大霉素。皮肤出现烂皮的，可以运用青霉素+氨基比林、阿莫西林、头孢噻呋、多西环素。退烧的，可以运用安乃近、氨基比林。倒地不起的、四肢呈划水样的，疑是伪狂犬、副猪嗜血杆菌、脑炎，一般第一次运用磺胺间甲氧嘧啶，其次次可以运用头孢曲松或则青霉素。 在猪场还学到了赶猪的技巧，要学会用最小的力气把事情做好。猪赶到栏口的时候就是不下来，因为栏口与地面有一段的高度，猪不敢往下跳，必需要有人来赶一下，可以用木板往前一推，很省力，猪就下去了。对于不好赶的猪可以套头，只
10、要把猪的尾巴对准出口，就省力多了，好赶多了。 在这段实习的时间里，老板常常有找我谈话的，告知我一些猪场管理的方法，管理好猪场有四大因素：饲料、温度、湿度和空气。还有把专业学问的书科学养猪与猪病防制原色图谱借给我看，让我多学点专业学问，这本书很好，内容很丰富，图片很美丽。还有一本羊皮卷，主要写了一些做人的、为人处世的道理。我的师傅在忙完活之后，常常闲聊的，聊到自己从事兽医这个职业有四十年了，有着丰富的专业学问，大大小小的病基本上都有实力可以把它治好。也有聊到过做人的道理，使我受益匪浅。师傅很耐性的教了我许多技能，很感谢师傅。 特别感谢猪场给我这个实习的机会，让我学到了许多技术，我会在以后的工作中
11、学以致用的，努力学好技术，做好一位合格的兽医。 3600字动物科学实习报告范文 3600字动物科学实习报告范文 试验项目 1、羊的体尺测量 2、鸡的体尺测量、翅静脉采血、红细胞计数 3、鸡的屠宰测定和体内器官的视察 4、猪的精液品质检查 试验一：羊的体尺测量 试验目的：鉴别羊的生长发育速度和生产性能凹凸，往往要依据羊身体各部位的体尺来推断，测量项目的多少视测量的目的而定。 试验对象与材料：羊，皮尺 试验操作方法： (1)体高 由看甲最高点至地面的垂直距离。 (2)体长 由肩端至坐骨结节后端的直线距离。 (3)胸围 由肩胛骨后缘绕胸1周的长度。 (4)胸深 由看甲最高点到胸骨底面的距离。 (5)
12、胸宽 由肩胛骨后端的左右肋骨间的宽度。 (6)管围 由管骨上13处的周长。 试验结果：体高：53cm 体斜长：49cm 胸围：64cm 胸宽：13.9cm 胸深：24.5cm 管围：7.3cm 留意事项：测量时，场地要平坦，站立姿态要端正；因为羊的力气比较大，所以在测量各项指标时应当留意将羊保定，以防止损害到同学。 试验二：鸡的体尺测量、本文由实习报告收集整理翅静脉采血、红细胞计数 1.鸡的体尺测量 试验目的：学会家禽体尺测量的方法。 试验对象与材料：鸡、皮尺、圆形测定器 试验操作方法： 体斜长：沿体表测量肩关节至坐骨结节间距离（厘米） 胸宽：测量两肩关节之间的体表距离（厘米） 胸深：第一胸椎
13、到龙骨前缘的距离（厘米） 龙骨长：体表龙骨突前端到龙骨末端的距离（厘米） 胫长：从胫部上关节到第三、四间的直线距离（厘米） 试验结果：体斜长：21cm 胸宽：7.5cm 胸深：8.5cm 龙骨长：10.5cm 胫长：9.5cm 2.鸡翅静脉采血 试验目的： 为了了解鸡的正确的翅膀采血方法和操作技巧 试验对象与材料：鸡，针头，酒精，棉花 试验操作方法： 1.保定 2.在上鸡翅的骨间找寻血管 3.然后用酒精棉签檫拭消毒 4.下针，需慢抽并深度约为13针头 5.抽完血后需干棉签堵住伤口防止流血 3.红细胞计数 原理：肯定量的血液经肯定量等渗性稀释液稀释后，冲入血细胞计数池中显微镜下计数肯定容积内的细
14、胞，再换算成每升标本的细胞数报告。 试验试剂与材料： 1.红细胞稀释液，枸橼酸钠1.0 g，36%甲醛液 1.0 ml， 氯化钠 0.6 g，加蒸馏水至100 ml ,混匀、过滤两次后备用。 2. 其他 显微镜、改良neubauer血细胞计数板等。 试验操作方法： 1.取红细胞稀释液2.0ml，放入一小试管内。 2.用血红蛋白吸管吸血至10ul处。 3.擦去管尖外部余血将血液快速轻轻吹入盛有红细胞稀释液的试管内，吸上清液漱洗吸管2-3次，摇匀。 4.用玻棒取悬混液少量，冲入计数池内。 5.待2-3分钟，让红细胞完全下沉后，将计数板放在显微镜台上，用低倍镜视察，如红细胞分布匀称即可换高倍镜进行计数。 红细胞技术区域：中心大方格中的5个中方格（正中一个和四角各一个）。 计数原则：数上不数下，数左不数右的计数原则即凡压在中方格边线上的红细胞，只计上侧与左侧线上的细胞，而压在下侧与右侧线上的不计入。 试验结果： 计算：红细胞数/l=5个中方格内红细胞数÷100×1012 =158÷100×1012 =1.58×1012 留意事项 1.吸管、试管要留意清洁、干燥以防溶血，操作快速避开血液凝固，如有血凝块应重新采血。 2.充液前，红细胞
