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1、-医院人感染H7N9禽流感病毒核酸检测标准操作程序一、目的确保人感染H7N9禽流感病毒核酸检测过程标准化、规化，降低人为不规操作对检测结果造成的影响，保证结果的准确性和可重复性。二、适用围医疗机构临床基因扩增检验实验室按照?关于医院开展人感染H7N9禽流感病毒核酸检测有关工作的通知?卫办医政函2021383号和?关于做好医疗机构人感染H7N9禽流感检测试剂供应保障工作的通知?卫创造电202129号有关要求，使用国家疾病预防控制中心制备或商品化试剂盒开展人感染H7N9禽流感病毒核酸检测工作。三、样本采集、运送和保存尽量采集病例发病早期的呼吸道样本(上呼吸道样本包括咽拭子、鼻拭子、鼻咽抽取物、咽漱
2、液和鼻洗液, 下呼吸道样本包括痰液、气管吸取物、肺洗液、肺组织等)。可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中，以便提高检出率。患者有下呼吸道样本时，应优先采集。根据试剂说明书对样本采集方法有关要求，制订样本采集标准操作程序SOP，并组织样本采集人员进展培训及考核。样本的采集应当严格按照SOP进展。样本采集后，按照?人间传染病的病原微生物名录?中高致病性禽流感病毒的相关规定进展包装，用密封容器立即送往实验室。假设气温高时，需放入冰块降温。样本抵达实验室后，应尽快进展检测，24小时能检测的样本可置于28暂时保存，24小时无法检测的样本则应置于-70状态保存。如无-70保存条件时，可于-20冰箱暂存。样本防
3、止反复冻融。样本采集、处理、运输及保存不当时，可因病毒RNA降解出现假阴性结果，也可因为样本“污染出现假阳性结果。四、PCR检测一样本处理样本的核酸提取应当在样本处理区进展。按所采用的商品化试剂盒说明书要求，取适量待检样本、阳性及阴性对照进展核酸提取。样本应尽可能新鲜，提取过程应严防RNA酶污染及操作不当导致的RNA降解。提取过程如涉及离心步骤，应采用低温冷冻离心机；在生物平安柜进展加样、提取过程中，为防止RNA降解，可将试管架置于托盘平铺的碎冰上。提取好的RNA应及时用于检测，否则应当-70保存。如无-70保存条件，可于-20冰箱暂存。二试剂准备试剂准备应当在试剂准备区进展。根据所用的试剂盒
4、，样本可进展甲型流感病毒核酸、禽流感H7亚型或H7N9病毒核酸的检测。试剂的配制按所用商品化试剂盒说明书进展。除酶混合物外，其它试剂在使用前应当在室温充分复融，混匀并瞬时低速离心。反响液分装时尽量防止产生气泡，上机前注意检查各反响管是否盖紧，以免管溶液泄露污染仪器。分装有扩增反响液的反响管应当扣盖或装入密实袋再转移至样本处理区。三加样加样应当在样本处理区进展。加样时应当使样品完全落入反响液中，不应有样品粘附于管壁上，加样后应尽快盖紧管盖。按试剂、仪器说明书完成加样和PCR反响管准备。四PCR扩增检测PCR扩增检测在扩增区进展。待检PCR管转移至扩增区，按顺序置于PCR仪上，编辑样本信息，按试剂
5、和仪器说明书设定循环参数。五结果分析根据所用试剂盒说明书设置基线值baseline。荧光阈值threshold设定以阈值线刚好超过阴性对照品扩增曲线无规则的噪音线的最高点为原则，且Ct值应大于所设置的扩增循环数或显示为undet。使用仪器配套软件自动分析结果。六质量控制检测过程对可能出现的假阳性和假阴性进展质量控制，除了检测商品试剂盒所提供阳性和阴性对照外，每次临床样本检测时，至少应当有1份弱阳性和3份阴性质控样本多份阴性质控样本设置对实验室“污染所致假阳性的监控更为有效，随机放在所检测标本的中间。弱阳性质控样本可为检测阳性的灭活稀释后保存的临床样本、灭活病毒或假病毒颗粒等，如所采用的商品化试
6、剂盒有“标控制假阴性，或弱阳性质控样本来源困难，可暂不设弱阳性质控。阴性质控样本采用标本采集管溶液即可。质控样本应与临床标本同等对待，参与样本核酸提取和扩增检测全过程。试剂盒中的阳性和阴性对照用于判断实验室的有效性，按试剂盒说明书进展。七实验结果的判定与解释。按照试剂盒说明书进展。对于出现弱阳性结果的样本应进展重复检测，并注意与可能的实验室轻度或样本穿插“污染所致假阳性结果区别。五、检测结果报告按照试剂盒说明书进展。六、其它本卷须知一人感染H7N9禽流感病毒实验室活动、样本采集和运输按照?人间传染的病原微生物名录?中高致病性禽流感病毒进展管理。从事人感染禽流感检测的技术人员必须经过生物平安培训
7、并具备相应的实验技能，在检测过程中必须采取生物平安防护措施使用眼罩、N95型口罩等。样本核酸提取必须在级生物平安实验室，经过年检合格的二级生物平安柜进展。实验室应具有良好的通风。二注意仪器设备的日常和定期维护，加样器、扩增仪和温育设备应进展定期校准。试剂盒及一次性使用的无DNA酶和RNA酶PCR反响管、离心管、带滤芯吸头等应进展每批质检。三实验应严格分区操作；各区物品、工作服等均应当专区专用，不得穿插使用。实验后应及时清洁工作台，以防污染。四每批实验室后，可采取实验室通风、10%次氯酸钠溶液擦洗地台面、紫外照射等措施，消除可能存在的扩增产物气溶胶污染。五使用中国疾控中心制备试剂开展检测工作时，
8、可参考相应试剂盒说明书见1、2有关要求。：1.H7N9亚型禽流感病毒RNA检测试剂盒荧光PCR法说明书2.H7N9禽流感病毒核酸检测试剂盒PCR-荧光探针法说明书H7N9亚型禽流感病毒RNA检测试剂盒荧光PCR法说明书【产品名称】通用名称：H7N9亚型禽流感病毒RNA检测试剂盒荧光PCR法英文名称：Diagnostic Kit for H7N9 subtype avian flu virus RNAFluorescence PCR【包装规格】48人份/盒。【预期用途】本试剂用于对咽拭子样本中H7N9亚型禽流感病毒RNA进展定性检测，用于H7N9禽流感病毒感染的辅助诊断及流行病学监控。【检验原理
9、】根据荧光PCR技术原理，针对H7N9亚型禽流感病毒的HA基因和NA基因设计特异性引物和Taqman探针，通过荧光PCR检测仪进展检测，从而实现对H7N9亚型禽流感病毒RNA的定性检测。试剂盒以正常人上皮细胞中广泛存在的核糖核酸酶PRNase P的mRNA为正常人体细胞对照，对提取和检测过程进展监控。【主要组成成分】名称成分规格数量(管)H7反响液含标RNP 、H7亚型特异基因的引物探针混合液1.0ml/管1N9反响液含标RNP 、N9亚型特异基因的引物探针混合液1.0ml/管1DNA聚合酶DNA聚合酶，不可用其他同类DNA聚合酶替代60l /管1逆转录酶逆转录酶，不可用其他同类逆转录酶替代6
10、0l /管1阳性对照RNP、H7、N9 RNA假病毒混合物1.0ml/管1阴性对照DEPC水1.0ml/管1本品各组成成分均不得与其他产品或不同批号产品中的相应组成成分进展互换。本品不包含，但对试验必须的设备和试剂：生物平安柜、台式离心机、旋涡震荡器、拭子、采样管、无菌病毒采样液、1.5 ml无核酸酶的离心管、全自动荧光PCR检测仪专用PCR扩增管和核酸别离试剂盒(硅胶膜吸附法，金豪制药股份，Cat：BJH101)。【储存条件及有效期】-20冷冻保存，有效期2个月，阳性对照反复冻融次数不得超过5次。【适用仪器】RG3000、LightCycler、ABI Prism 7500、ABI Pris
11、m 7000型全自动荧光PCR检测仪。【样本要求】1. 样本类型：咽拭子。推荐使用金豪公司生产的微生物采样及运送管12人份/盒。2. 拭子、采样管和保存液：2.1拭子选择：应使用头部为合成纤维例如，聚酯纤维，杆部为铝或塑料的拭子。2.2采样管：外螺旋口、耐-70冻存，可容纳3 ml病毒采样液。2.3无菌病毒采样液：应含有蛋白质稳定剂，阻止细菌和真菌生产的抗生素，缓冲液，经无菌处理。3.样本采集、运输和保存：由于H7N9亚型禽流感病毒为呼吸道传播病毒，有关生物平安应按照“?人间传染的病原微生物名录?中高致病性禽流感病毒进展管理。3.1采集：采集病人发病3日的咽拭子标本，用于病原检测。用微生物采样
12、及运送管的采样棉签，适度用力拭抹咽后壁和两侧扁桃体部位，应防止触及舌部；迅速将棉签放入装有3ml保存液的15ml外螺旋盖采样管中，在靠近顶端处折断棉签杆，旋紧管盖并密封，以防枯燥，外表贴上带有唯一识别的标签。4暂存并在48小时送达实验室。3.2保存和运输：新鲜采集样本应在4条件下48小时运送到检测实验室。保存样本可在-20以下低温冷冻保藏，需长期保存的标本存于-70冰箱。冷冻样本应在冷冻条件下送至实验室。运输时在包装箱填充吸水材料，运输过程中保持标本采集管直立状态，不能倾斜。样本送至实验室后，立即进展处理和分装，防止反复冻融。临床样本保存在4不能超过4天。4.咽拭子标本的处理咽拭子要在标本保存
13、液中充分搅动至少 40 下，以洗脱拭子上粘附的病毒及含有病毒的细胞等，用于病毒别离时，需要冻融一次防止屡次冻融，使细胞破裂，释放病毒颗粒。然后在4条件下，10000rpm离心20分钟，用上清接种细胞或直接提取RNA。如果发现有细菌污染，须用滤器过滤除菌。【检验方法】1. 核酸提取：取200l咽拭子样本进展核酸提取。采用金豪制药股份的核酸别离试剂盒 (硅胶膜吸附法)，该试剂盒可用于对呼吸道悬浮液样本中的病毒RNA提取，并按试剂盒说明书要求操作。本品的阳性对照和阴性对照均参与核酸提取。1.1. 准备及本卷须知：1.1.1 分别在洗液A瓶和洗液B瓶中参加16ml和60ml无水乙醇，颠倒充分混匀，并在
14、瓶身上加以标识。吸取所需的洗脱液，加至一无核酸酶的eppendorf管中，于70预热。冷冻样本应室温融化，轻微震荡混匀后使用。区分操作中的离心设置rpm和g，本产品操作过程均为室温离心。助沉剂在低温保存时可能呈胶状，吹打混匀即可使用。1.2. 样本裂解及核酸吸附在1.5ml无核酸酶的离心管中参加10l助沉剂和400l裂解液，参加200l待处理样本，剧烈震荡2分钟，室温静置10分钟。注：如样本体积小于或大于200l，需按比例改变助沉剂、裂解液以及无水乙醇体积。体积大于400l样本应分屡次进展处理。参加480l无水乙醇，颠倒混匀，吸取600l裂解混合物转移到核酸吸附柱中。注：如样本体积小于或大于2
15、00l，需按比例改变乙醇用量。1.2.3 3500g离心2分钟，取下套管，倒掉套管中的液体。将剩余裂解混合物转移至核酸吸附柱，重新离心一次，弃套管中的液体。将核酸吸附柱重新装入套管，6000g离心1分钟，倒掉套管中的液体。1.3. 核酸纯化将核酸吸附柱重新装入套管，在核酸吸附柱中参加500l洗液A，6000g离心1分钟，将核酸吸附柱装入一个干净套管中。在核酸吸附柱中参加500l洗液B，静置1分钟，6000g离心1分钟。倒掉套管中的液体，将核酸吸附柱重新装入套管。重复一次步骤(本步骤不用静置1分钟)。将核酸吸附柱换一新套管，13000rpm离心3分钟。1.4. 核酸洗脱将核酸吸附柱装入一无核酸酶1.5ml离心管，小心在吸附膜中央参加50l预热洗脱液，室温静置4分钟。1.4.2 10000 rpm离心2分钟，离心管中液体即待测样本RNA。2. PCR扩增：2.1 实验设计：待检样本检测：每份样本分别使用2种反响液H7和N9反响液进展检测，综合2种反响液的检测结果对样本进展判定。
