常用作物生理指标测定方法

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1、SOD,POD,CAT,MDA可溶性蛋白用同一提取液。磷酸缓冲液配制:A 液(Na2HPO4 0.2M) :Na2HPO4.2H2O=35.61g(或 Na2HPO4.12H2O=71.64g)定容 1000MLB 液(NaH2PO4 0.2M) :NaH2PO4.H2O=27.6g(或 NaH2PO4.2H2O=31.21g)定容到 1000ml浓度mol/lPH值A液体积mlB液体积ml定容体积ml0.057.891.58.54000.17.584162000.17.061392000.16.012.387.72001/157.06139300130mmol/l甲硫氨酸(Met)溶液:称1

2、.9399gMet用磷酸缓冲液定容至100ml0.75mmol/l氮蓝四唑(NBT)溶液:称0.06133gNBT用磷酸缓冲液定容至100ml避光保存0.1mmol/LEDTA-N电溶液:取0.03721gEDTA-N程用磷酸缓冲液定容至1000ml0.02mmol/l核黄素溶液:取0.00753g核黄素定容至1000ml避光保存反应液组成 水:磷酸: Met: NBT: EDTA-Na2: FD=5: 30: 6: 6: 6: 6150ml 反 应 液 的 组 成 是 水 12.7ml+ 磷 酸 (0.05M,PH=7.8)76.3ml+Met15.25ml+NBT15.25ml+EDTA=

3、Na215.25ml+FD15.25mlSOD:称取0.5g鲜样,加1ml磷酸缓冲液(0.05mol/L PH=7.8),冰浴研磨,研磨后再加入1ml缓 冲液倒入离心管,再用2ml缓冲液冲洗研钵,倒入离心管中,平衡后低温(0-4D 10000rpm离心 后10min冷藏保存。取相同型号的试管,加入20卩1上清液(2支对照管加缓冲液),分别加3ml反应 液,其中一支对照放于暗处,其余在4000lux下反应20-30min (温度高时时间短,温度低时时间长) 后再560nm下进行比色。计算公式:SOD 总活性(units.gFW) =(Ack-A)*V/Ack*0.5*W*a(V 酶液总体积 4m

4、l, w 样品重=0.5g, a测定是的酶液体积=0.02ml)POD:取上清液20卩1加入比色杯中(对照加磷酸),加3ml反应液,马上读470nm下的OD值并计 时,每个1min读1次(读0, 1,2, 3min)的OD值。反应液:0.1mol/L,PH=6.0的磷酸50ml,加入愈创木酚28卩1,于磁力搅拌器加热溶解,加入30%的 H2O219g1存于冰箱内。计算公式:POD 总活性( OD470/Min.gFW) -OD470*V/a*W(V=4ml,a=0.02ml,W=0.5g)CAT:取上清液100卩1加入比色杯中(对照加磷酸),加3ml反应液,马上读240nm下的OD值并计 时,

5、每个lmin再读一次(读第0, lmin的OD值)。反应液:O.lmol/L PH=7.0 磷酸缓冲液 20ml,加入 0.1mol/LH2O2(5.68ml30%H2O2 定容至 1000ml)5ml。 计算公式:CAT总活性( OD /Min.gFW) =AOD *V/a*W(V=4ml,a=0.1ml,W=0.5g) 数值下降。MDA:取上清液1ml(对照加1ml水),加2mlTBA (硫代巴比妥酸),封口沸水浴15min,迅速冷却 (用冷水冲泡),倒入指形管中,4000转下离心20min,取上清液于600nm,532nm,450nm下比色。0.67%TBA:称0.67gTBA加少量1m

6、ol/LNAOH溶解,再用10%三氯乙酸定容100ml。MDA(卩g/gFW)=C*V/W=0.1548(D -D600)+0.013D450(V=0.012L,W=0.5g)可溶性蛋白:取上清液20卩1 (对照加水),加3ml考马斯亮蓝放置2min,立即于595nm比色。G-250:称取100mgG-250溶于50ml90%乙醇中,加入85% (v/v)磷酸100ml,定容至1000ml,常 温可保存一个月。计算公式:蛋白质含量(mg/gFW) =3*Y*V/5*1000*a*W标准曲线Y=143.15OD+3.6 (生理组)或Y=143.56OD+1.28 (园艺系)V酶液总体积=4ml,

7、a=0.02ml,W=0.5g, 3/5由于标线是5ml中的含量,而本方法用3ml,1000将聘 变为 mg)可滴定酸:1.取一彩椒,称重,放入高速组织捣碎机内,加入等量水,捣碎12min。每2g 匀浆折算为 1g 试样。2.称取25-50g,用无CO2水100ml,洗入250ml容量瓶,在80度水浴中30min,取出冷却,用无 CO2 水定容过滤。3取滤液50ml或100ml加入三角瓶中。加酚酞5-10d,用NaOH标液滴定,呈微红色,当滴定接近 终点时,若溶液仍呈橙黄色,可再加2d酚酞,CK空白滴定。记下所消耗的体积。结果计算(1) 试样的可滴定酸度以每 100g 或 100mL 中氢离子

8、毫摩尔数表示,按下式计算:可滴定酸度mmol/100g(mL)= (cxV/ /VQx250/m(V)x100式中:c氢氧化钠标准溶液摩尔浓度V滴定时所消耗的氢氧化钠标准溶液体积(mL)V0吸取滴定用的样液体积(mL)m(V)试样质量(g)或体积(mL)250试样浸提后定容体积(mL)(2) 试样的可滴定酸度以某种酸的百分含量表示,按下式计算:可滴定酸度()=(cxVXk)/V0x250/m(V)x100式中:k换算为某种酸克数的系数,O.lMol/LNaOH标液:50gNaOH加入500ml蒸馏水,溶解贮于塑料瓶中,吸取5.4ml加入1000ml容 量瓶中,用刚煮沸冷却的蒸馏水稀释至刻度。0

9、.5%酚酞:0.5g酚酞加入100ml90%乙醇。 本试验用水应是不含二氧化碳的或中性蒸馏水,可在使用前将蒸馏水煮沸、放冷,或 加入酚酞指示剂用0.1mol/L氢氧化钠溶液中和至出现微红色。植物组织中游离氨基酸总量的测定:(茚三酮溶液显色法)水合茚三酮试剂:称取0.6g再结晶的茚三酮置烧杯中,加入15ml正丙醇,搅拌使其溶解。再加入 30ml正丁醇及60ml乙二醇,最后加入9mlPH5.4的乙酸-乙酸钠缓冲液,混匀,贮于棕色瓶中,置4C 下保存备用, 10d 内有效。乙酸-乙酸钠缓冲液(PH5.4):称取乙酸钠54.4g加入100ml无氨蒸馏水,在电炉上加热至沸,使体 积蒸发至60ml左右。冷

10、却后转入100ml容量瓶中加30ml冰醋酸,再用无氨蒸馏水稀释至100ml。标准氨基酸:称取80C下烘干的亮氨酸46.8mg,溶于少量10%异丙醇中,用10%异丙醇定容至100ml。 取此液5ml,用蒸馏水稀释至50ml,即为含5卩g/ml氨基酸之标准液。0.1%抗坏血酸:称取50mg抗坏血酸,溶于50ml无氨蒸馏水中,随配随用。1.样品制备:取干样,混匀后,迅速称取0.05-0.1g,于研钵中加入5ml10%乙酸,研磨匀浆后,用蒸 馏水稀释至100m l。混匀,并用干滤纸过滤到三角瓶中备用。2制作标准曲线:取6支20ml刻度试管,按下表操作:试剂123456标准氨基酸/ml00.20.40.

11、60.81.0无氨蒸馏水/ml2.01.81.61.41.21.0水合茚三酮/ml3.03.03.03.03.03.0抗坏血酸/ml0.10.10.10.10.10.1每管含氮量/ml012345加完试剂后混匀,盖上大小适中的玻璃球,置沸水中加热15min,取出后用冷水迅速冷却并不时摇 动,使加热时形成的红色被空气逐渐氧化而褪去,进而呈现蓝紫色,用60%乙醇定容至20ml。混匀 后再 570nm 下测定吸光度。3.样品测定:吸取样品滤液1.0ml,放入20ml干燥试管中,加无氨蒸馏水1.0ml,向每管中加入3.0ml 水合茚三酮,0.1ml抗坏血酸。加完试剂后混匀,封口,置沸水中加热15m i

12、n,取出后用冷水迅速冷却并不时摇动,使加热形成的 红色被逐渐氧化而褪去,进而呈现蓝紫色,用60%乙醇定容至20ml。混匀后再570nm下测吸光度。根据标准曲线查得含氮量。计算公式:100g样品中氨基态氮含量=(C*Vt/Vs*W) *100 (C为从标准曲线查得的氨基态氮含量, yg; Vt为样品稀释总体积,ml; Vs为测定时样品体积,ml; W为样品干重,g)注意:(1)因为茚三酮与氨基酸反应所生成的Ruhemans自在1h内摆出稳定,故稀释后尽快比色;(2)严格掌握加入抗坏血酸的量;(3)在80C水浴中加热,应该适当延长反应时间,效果良好。 可溶性糖:0.3g鲜样品(或0.03g干样)加

13、入10ml蒸馏水,封口沸水浴30min (2次),滤纸漏斗过 滤入50ml容量瓶中,冲洗残渣,定容。吸提取液1ml加入蒸馏水1ml (对照加2ml蒸馏水),加蔥 酮乙酸乙酯0.5ml,加浓硫酸5ml,振荡,沸水浴1min,自然冷却后与630nm下比色。计算公式:可溶性糖() =100*Y*V/(a*n*W*106) (Y 由 Y 糖(卩g)=322.58OD-0.96774 查得 V 提取 液体积=50ml a测定时吸取的体积=1mln为稀释倍数W鲜样品重=0.3)叶绿素测定:取新鲜叶片,擦净表面污物,去掉中脉,用打孔器取叶圆片,混匀,称取叶圆片0.2g, 加20ml 80%的丙酮(80ml丙

14、酮定容于 100ml),封口,置于暗处 24-36h,到叶片变白,于 663nm,646nm,470nm下比色(对照是80%丙酮)。公式: Ca(mg/L)=12.21D663-2.81D646Cb=20.13D646-5.03D663Cx.c=(1000D470-3.27Ca-104Cb)/229叶绿体色素含量(mg/gFW) =C*V*n/W(V=0.02L,n=1,W=0.2g)根系TTC活力:根系去掉根尖和上部老根,取根0.4-0.5g,剪成2cm长的段,放入试管中,对照先加 入1mol/LH2SO4,其余试管中加入0.4%TTC和磷酸缓冲液(1/15mol/L,PH=7.0)等体积混

15、合液10ml, 封口,放入37C恒温箱4h,取出,除对照外其余加1mol/L H2SO42ml中止反应,放置15min后取出 根,吸干,再放回原试管,各试管中加入10ml 95%乙醇,封口,提取24h至根变白,根据颜色稀释 3-5倍后,于485nm下比色。40个样用量:0.4%TTC称1gTTC,溶于250ml蒸馏水中。1/15mol/L PH=7.0 取 A=61ml+B 液=39ml 稀释到 300ml1mol/L H2SO4:先在烧杯中加入100ml水,再加入浓硫酸11ml,冷却后定容200ml。计算公式:四氮唑还原强度(卩g/gFW.h) =(0D+0.0035)/4*h*W*0.0022 (h=4 W=0.4-0.5g)茎粗(为第一叶痕茎基部的粗度,用游标卡尺测量,每处理随机取5株,取其平均数); 测定方法 茎粗为用游标卡尺测量地上部第三节间的直径。分3次对茎粗进行观测(5-6片叶之间)。株高(茎基部到生长点的长度,卷尺测量,每处理测5次,取其平均数); 节间长度(为最终一次采收时,测分枝以上五个节间的长度之和除以5)。辣椒:叶面积、冠幅、株高

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