质粒DNA提取纯化及验证

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1、word【实验目的】1、掌握碱变性提取质粒DNA法的原理、过程与各种试剂的作用。2、掌握凝胶电泳对DNA别离纯化的原理和方法。【实验原理】1、提取、纯化质粒DNA碱变性提取法提取和纯化质粒DNA的方法很多,目前常用的有:碱变性提取法、煮沸法、羟基磷灰石柱层析法、EB一氯化铯密度梯度离心法和Wizard法等。其中,碱变性提取法最为经典和常用,适于不同量质粒DNA的提取。该方法操作简单,易于操作,一般实验室均可进展。提取的质粒DNA纯度高,可直接用于酶切、序列测定与分析。碱变性提取质粒DNA一般包括三个根本步骤:培养细菌细胞以扩增质粒;收集和裂解细胞;别离和纯化质粒DNA。在细菌细胞中,染色体DN

2、A以双螺旋结构存在,质粒DNA以共价闭合环状形式存在。细胞破碎后,染色体DNA和质粒DNA均被释放出来,但是两者变性与复性所依赖的溶液pH值不同。在pH值高达120的碱性溶液中,染色体DNA的氢键断裂,双螺旋结构解开而变性;共价闭合环状质粒DNA的大局部氢键断裂,但两条互补链不完全别离。当用pH值46的KAc(或NaAc)高盐溶液调节碱性溶液至中性时,变性的质粒DNA可恢复原来的共价闭合环状超螺旋结构而溶解于溶液中;但染色体DNA不能复性,而是与不稳定的大分子RNA、蛋白质一SDS复合物等一起形成缠连的、可见的白色絮状沉淀。这种沉淀通过离心,与复性的溶于溶液的质粒DNA别离。溶于上清液的质粒D

3、NA,可用无水乙醇和盐溶液,使之凝聚而形成沉淀。由于DNA与RNA性质类似,乙醇沉淀DNA的同时,也伴随着RNA沉淀,可利用RNase A将RNA降解。质粒DNA溶液中的RNase A以与一些可溶性蛋白,可通过酚氯仿抽提除去,最后获得纯度较高的质粒DNA。2、琼脂糖凝胶电泳电泳electrophoresis)是带电物质在电场中向着与其电荷相反的电极方向移动的现象。各种生物大分子在一定条件下,可以解离成带电荷的离子,在电场中会向相反的电极移动。凝胶是支持电泳介质,它具有分子筛效应。含有电解液的凝胶在电场中,其中的电离子会发生移动,移动的速度可因电离子的大小、形态与电荷量的不同而有差异。利用移动速

4、度差异,就可以区别各种大小不同的分子。因而,凝胶电泳可用于别离、鉴定和纯化DNA片段,是分子生物学的核心技术之一。凝胶电泳技术操作简单而迅速,分辨率高,分辨X围极广。此外,凝胶中DNA的位置可以用低浓度荧光插入染料如溴化乙锭(EB)或SYBR Gold染色直接观察到,甚至含量少至20 Pg的双链DNA在紫外激发下也能直接检测到。需要的话,这些别离的DNA条带可以从凝胶中回收,用于各种各样目的的实验。分子生物学实验中,常用的两种凝胶为琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶。这两种凝胶能灌制成各种形状、大小和孔径,也能以许多不同的构型和方位进展电泳。琼脂糖凝胶电泳易于操作,适用于核酸电泳,测定DNA的相对分子质量

5、,别离经限制酶水解的DNA片段,进一步纯化DNA等。琼脂糖凝胶电泳是一种常用的方法。在溶液中,由于核酸有磷酸基而带负电荷,在电场中向正极移动。DNA在琼脂糖凝胶中的电泳迁移速率主要取决于下面6个因素:1)样品DNA分子的大小:电泳时,线性双螺旋DNA分子是以头尾位向前迁移的,其迁移速度与相对分子质量(所含碱基)的对数值成反比,这是因为大分子有更大的摩擦阻力。2)DNA分子的构象:相对分子质量一样而构象不同的DNA分子,其迁移速率不同。在抽提质粒DNA过程中,由于各种因素的影响,使超螺旋的共价闭合环状结构的质粒DNA(covalently closed circular DNA,cccDNA)的

6、一条链断裂,变成开环DNA(open circle DNA,oeDNA)分子,如果两条链发生断裂,就转变为线状DNA(1iner DNA,L DNA)分子。这三种构型的分子有不同的迁移率。一般情况下,超螺旋型迁移速度最快,其次为线状分子,最慢的是开环状分子。3)琼脂糖浓度:琼脂糖浓度直接影响凝胶的孔径,一定大小的DNA片段在不同浓度的琼脂糖凝胶中的泳动速度不同。通常凝胶浓度越低,如此凝胶孔径越大,DNA电泳迁移速度越快,因此,相对分子质量越大,选用的凝胶浓度应越低。4)电泳所用电场:低电压条件下,线性DNA片段的迁移速率与所用电压成正比,电压越高,带电颗粒泳动越快,但随着电场强度的增加,不同长

7、度DNA泳动的增加程度不同,因此凝胶电泳别离DNA的有效X围随着电压上升而减少。为了获得DNA片段的最优别离效果,电场强度应小于5 Vcm。5)缓冲液:缓冲液的组成和离子强度直接影响迁移率。当电泳液为去离子水(如不慎误用去离子水配制凝胶),溶液的导电性很少,带电颗粒泳动很慢,DNA几乎不移动;而在高离子强度下(如错用10电泳缓冲液),导电性极高,带电颗粒泳动很快,产生大量的热,有时甚至熔化凝胶或使DNA变性。电泳时常用的缓冲液有乙酸盐TAE、硼酸盐TBE)和磷酸盐TPE几种不同的缓冲液,通常配制成10或5的浓度母液保存于室温下,用时稀释至工作浓度。TAE缓冲液缓冲能力弱,长时间电泳缓冲能力逐渐

8、丧失阳极变碱性,阴极变酸性,长时间电泳需要更换缓冲液。TAE缓冲液可以别离数KB长度的DNA,在精致DNA片段以与染色体DNA进展杂交时经常使用。 6)温度:琼脂糖凝胶电泳时,不同大小DNA片段的相对电泳迁移率在430内无变化,一般琼脂糖凝胶电泳多在室温下进展,而当琼脂糖含量少于05时,凝胶很脆弱,最好在4下电泳以增加凝胶强度。【实验仪器、材料与试剂】1、 仪器和材料接种环,培养皿,酒精灯,恒温振荡培养箱,高速冷冻离心机,漩涡振荡器,微量移液器与多型号枪头,微波炉,电泳仪等菌体: DH5受体菌,具有Ampr标记的质粒pUC19。Maker: /Hind III DNA Maker DL2000

9、 DNA Maker 点样对照组: pUC19/ Hind II双链线性DNA PUC19商品 DNA2、 实验试剂LB培养基,抗生素氨苄青霉素,溶液,溶液,溶液,3mol/L NaAc溶液,预冷无水乙醇,70%乙醇溶液,RNase A母液,TE缓冲液,饱和酚,氯仿/异戊醇混合液,酚/氯仿/异戊醇(PCI)混合液,TAE电泳缓冲液10,溴化乙锭EB),上样缓冲液6。溶液:50mM葡萄糖,25mM Tris-HCl(pH 8.0),10mM EDTA(pH 8.0。(1M Tris-HCl,12.5ml pH 8.0;0.5M EDTA 10ml pH 8.0 ,葡萄糖4.730g,加ddH2O

10、至500ml。在121高压灭菌15min ,贮存于4)。溶液:0.2M NaOH,1% SDS。(使用前用10M的NaOH和10%的SDS母液配置,防止NaOH吸收空气中的H2O和CO2而减弱了碱性。溶液:5M醋酸钾KAc缓冲液60ml,冰醋酸11.5ml,重蒸水28.5ml,溶液中浓度K+3M,Ac-5M。【实验步骤】1、扩增质粒菌体培养 1在LB平板上划线培养具有Ampr标记的E.coli DH5菌,37恒温倒置培养16-18hr;之后,挑取单菌落,接种于20ml LB液体培养基含Ampr80ug/ml中,37,220rpm振荡培养过夜12-14hr;再转接一次,进展50或100倍稀释,同

11、样37,220rpm振荡培养4-6hr。2对50mL的离心管称重记为m1,取菌液30ml配平,6000rpm离心5min,弃去上清液;参加5ml溶液混匀,6000rpm离心5min,弃去上清液。取离心管称重记为m2),可测得菌体重量W=m2-m1。2、提取质粒 1向离心管中参加溶液1.0ml/100mg菌体,漩涡混匀后,冰浴5min; 向离心管中参加溶液2.0ml/100mg菌体,轻柔颠倒混匀后,冰浴5min; 向离心管中参加溶液1.5ml/100mg菌体,轻柔颠倒混匀后,冰浴5min;离心管配平,12000rpm离心15min,取上清至新50ml离心管记体积为v1) 2参加2v1冰乙醇,颠倒

12、混匀,-20保存30min,12000rpm离心15min,弃上清液,将离心管倒置于纸巾上,以使所有液体流出。向沉淀中参加5mL70%乙醇进展洗涤,12000rpm离心2min,弃去上清液,重复洗涤一次; 37下保存5min,至离心管内枯燥,参加1mlTE缓冲液溶解,得粗提物,将粗提物转移至新EP管,参加100ugRNase A10ug/ul),将EP管放置于37下,保温1-2小时。3、 纯化质粒 1将提取物等分为500ul置于EP管中,加等体积酚液,混匀后,12000r离心5min,将上清液转移至新EP管;参加等体积酚/氯仿/异戊醇(PCI)混合液,混匀后,12000rpm离心5min,转上

13、清至新EP管;参加等体积氯仿/异戊醇混合液,混匀后,12000rpm离心5min,将上清液转移至新EP管; 2参加1/10体积的3mol/L NaAc,混匀后,参加2倍体积包括上清液和1/10体积的NaAc)的冰乙醇,颠倒混匀,-20保存30min,12000rpm离心15min,弃去上清液;参加5mL70%乙醇进展洗涤,12000rpm离心2min,弃去上清液,重复洗涤一次; 37下保存5min,至沉淀枯燥,每管参加25ul TE溶液,温和振荡几秒钟,至沉淀溶解。将2管整合到一管,得到50ul质粒DNA组,放置-20下保存。4、凝胶电泳别离质粒 1制胶:1% 琼脂糖凝胶:称取0.4g琼脂糖于

14、300ml三角烧瓶中,加40ml 1TAE,微波炉加热至完全溶化,冷却至60左右,三角瓶放在手面可坚持1min即可,缓缓倒入架有梳子的电泳胶板中,勿使有气泡,静置冷却30min以上,轻轻拔出梳子,放入电泳槽中电泳缓冲液1TAE,即可上样。l上样缓冲液,混合,进展点样。点样完毕后,100V,200mA条件下电泳30min。电泳完毕后,进展EB染色,用凝胶成像仪拍照,得到实验结果。【须知事项】1、在接菌时,注意无菌操作,物品应在酒精灯火焰上方无菌区域内。将挑有菌体的接种环在三角瓶壁上轻轻接触,然后轻轻摇动三角瓶,让液体的LB培养基轻轻冲刷菌体,当观察到附近的LB培养基有轻微浑浊现象时,接菌成功,再

15、轻轻震荡三角瓶,使全部菌体进入培养基中。2、注意离心机的使用,离心管要配平,以防错误操作损坏离心机。离心完毕后,将离心管从离心机取出时应保持其倾斜状态,防止沉淀重新进入上清液中。3、为获得高纯度质粒DNA,必须彻底除去杂蛋白、染色体DNA和RNA。在整个提取过程中出去染色体DNA的关键步骤是参加溶液、溶液的变性和复性环节,应控制好变形和复兴的时机。参加溶液时,可剧烈震荡,使菌体沉淀转变成均匀的菌悬液,此时细胞尚未破裂,染色体不会断裂;参加溶液时,菌液变粘稠、透明,无菌块残留;参加溶液时,会立即出现白色沉淀。参加溶液和溶液后,应缓慢上下颠倒离心管数次,切忌在漩涡振荡器上剧烈震荡,否如此,染色体DNA会断裂成小片段,不会形成沉淀,而溶解在溶液中,与质粒DNA混合在一起,不利于质粒DNA提纯。因此,操作时一定要缓慢柔和,采用上下颠倒的方法,既要使试剂与染色体DNA充分作用,又不破坏染色体的结构。4、酚具有腐蚀性,能损伤皮肤和衣物,使用时应小心。皮肤如不小心沾到酚,应立即用碱性溶液、肥皂或大量清水冲洗。5、沉淀DNA通常使用预冷无水乙醇,在低温条件下长时间放置可使DNA沉淀完全。除用乙醇沉淀DNA外,还可使用06倍体积的异丙醇,但异丙醇也能将盐等杂质沉淀,所以沉淀需要在常温下进展,并且时间不宜

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