EMT对NSCLC细胞侵袭和迁移影响

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1、miRNA-375通过MYC/EMT对NSCLC细胞侵袭和迁移影响简要:摘要 目的 探究miRNA-375(miR-375)通過MYC/上皮间质转化(EMT)对非小细胞肺癌(NSCLC)侵袭和迁移的影响。 方法 将未做任何处理的NSCLC细胞A549作为空白组,转染空载慢病毒的A549细胞作为对照组摘要 目的 探究miRNA-375(miR-375)通過MYC/上皮间质转化(EMT)对非小细胞肺癌(NSCLC)侵袭和迁移的影响。方法 将未做任何处理的NSCLC细胞A549作为空白组,转染空载慢病毒的A549细胞作为对照组,转染表达miR-375慢病毒的A549细胞作为实验组。采用实时荧光定量P

2、CR(qRT-PCR)技术检测miR-375在NSCLC组织和癌旁组织中的表达量,以及miR-375在正常肺组织细胞(BEAS-2B细胞)和A549细胞中的表达量;通过Transwell实验检测3组细胞的侵袭、迁移能力;采用Western blot检测3组细胞中MYC蛋白和EMT相关蛋白(E-钙黏蛋白、波形蛋白)的表达量。结果 miR-375在NSCLC组织中的表达量显著高于癌旁组织(t=16.88,P结论 上调miR-375可以通过MYC/EMT影响NSCLC的侵袭和迁移能力。关键词 微RNAs;癌,非小细胞肺;基因,myc;上皮-间质转化;细胞运动?东方食疗与保健?OrientalDiet

3、-TherapyandHealthCare(月刊)是我国目前唯一的一份以介绍药膳食疗内容为主的科普性期刊,它填补了我国药膳食疗刊物的空白。肺癌是最常见的恶性肿瘤之一,同时也是全球恶性肿瘤死亡的主要原因1-2,其中非小细胞肺癌(NSCLC)占所有肺癌的80%以上3。NSCLC目前的主要治疗方法是手术、放疗和化疗,尽管放疗和化疗的应用使NSCLC预后得到很大改善,但其生存率还是很低4,所以NSCLC的靶向研究显得尤为重要。近年来研究结果发现,miRNA对肺癌的进展、诊断以及治疗起着关键作用,其在肺癌的治疗研究中备受关注5。miRNA是一类长约20个氨基酸的小RNA,它可以与特定的靶点结合,影响靶位

4、点的mRNA翻译,进而影响相关蛋白的表达6。有研究说明,miRNA-375(miR-375)与肿瘤的侵袭、转移和凋亡有着密切的联系,而且miR-375的表达与癌症病人的总生存率相关,所以推测miR-375可能是一种有用的临床预后生物标志物7-8。JUNG等9研究发现,MYC可以受miR-375的调节进而影响肿瘤的进展和表型。MYC家族包括C-MYC、N-MYC和L-MYC,对肿瘤细胞的侵袭、迁移都有很重要的作用10-11。已有研究说明,一些药物可以通过抑制MYC通路的激活来抑制人宫颈癌细胞的增殖、迁移和上皮间质转化(EMT)12;hsa-miR-24那么可以通过调节c-MYC/EMT轴来抑制鼻

5、咽癌细胞的转移能力13;MYC还可以通过抑制RPS19/EMT信号传导的激活来抑制癌细胞的转移14。本研究旨在探讨miR-375是否可通过MYC/EMT对NSCLC的侵袭和迁移产生影响。1 材料与方法1.1 细胞与样本所用NSCLC细胞(A549)和正常肺组织细胞(BEAS-2B)由青岛大学博雅楼实验室冻存。A549细胞用RPMI-1640(HyClone,美国)培养液培养,BEAS-2B细胞用LHC-9(HyClone,美国)培养液培养,培养细胞时两种培养液都参加体积分数0.10胎牛血清(索莱宝,北京)。含EDTA的胰蛋白酶(索莱宝,北京)用于消化贴壁细胞。NSCLC组织和癌旁组织的新鲜样本

6、各30例,来自青岛市市立医院。本研究的组织来源病人均签署了书面同意书,研究获青岛大学附属医院伦理委员会批准。1.2 细胞转染将A549细胞接种于96孔板中,每孔10 000个,置于含体积分数0.05 CO2的37 培养箱中培养24 h。实验共分3组,在96孔板中未做任何处理的A549细胞作为空白组,将转染含空载体慢病毒(吉凯基因公司,上海)的A549细胞作为对照组,将转染表达miR-375慢病毒(吉凯基因公司,上海)的A549细胞作为实验组。将3组细胞置于培养箱继续培养10 h后,移除96孔板中的培养液,更换新的培养液,每孔100 L。然后继续培养72 h,应用实时荧光定量PCR(qRT-PC

7、R)技术检测3组细胞中miR-375的表达量。1.3 qRT-PCR收集长势良好的细胞,按照iso plus RNA提取试剂盒(Takara,日本)的说明书提取3组细胞的总RNA,用PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)(Takara,日本)将RNA反转成cDNA,使用SYBR Premix Ex Taq RR420A(Takara,日本)进行qRT-PCR,检测细胞中miR-375的表达。反响条件:95 、30 s;95 、5 s,60 、30 s,40个循环;60 、15 s。实验所用引物均购自上海生工,

8、其中U6作为miRNA-375的内源性参照。引物序列见表1。1.4 Transwell小室实验迁移实验:向24孔板(康宁,美国)的3个孔中参加含体积分数0.15胎牛血清的培养液,每孔500 L,将3个Transwell小室(康宁,美国)分别放入3个孔中。取3组细胞各5104个分别接种于以上3个Transwell小室内,置于细胞培养箱中培养24 h后取出,用棉签擦拭3个Transwell小室的内膜,之后小室用甲醇溶液固定10 min,用甲紫染色10 min,PBS洗3次,拍照,在显微镜下计数细胞。侵袭实验:将基质胶(康宁,美国)与完全培养液按19的比例稀释,将稀释后的混合液按每孔100 L参加T

9、ranswell小室中,置于37 培养箱中4 h,其余实验步骤同迁移实验。1.5 Western blot檢测取3组细胞,用PBS洗2次后参加1 mL的PBS,使用细胞刮刀将细胞刮下分别放入3个离心管中,以5 000 r/min离心5 min。去上清留细胞沉淀,在细胞沉淀中参加细胞裂解液和蛋白酶抑制剂,冰上裂解30 min,以12 000 r/min离心10 min,上清即为总蛋白。将提取的蛋白质参加上样缓冲液SDS-Loading Buffer,沸水浴煮5 min。取45 g蛋白置SDS-PAGE凝胶中电泳,电泳结束后将胶中的蛋白条带转移到PVDF膜上(Millipore,美国)。用脱脂奶粉封闭2 h,在4 下与MYC(11 000,CST)、-actin(13 000,Bioss)、E-钙黏蛋白(E-cadherin,11 000,CST)、波形蛋白(Vimentin,11 000,CST)的一抗一起孵育过夜;参加二抗(11 000,Abcam)低速振荡60 min。用超敏型化学发光底物试剂(ECL)进行蛋白条带成像,分析条带灰度值,计算各蛋白相对表达量。

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