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1、蛋白质的表达、别离、纯化实验的实验原理和操作步骤携带有目标蛋白基因的质粒在大肠杆菌BL21中，在 37，IPTG诱导下，超量表达携带有6个连续组氨酸残基的重组氯霉素酰基转移酶蛋白，该蛋白可用一种通过共价偶连的次氨基三乙酸NTA使镍离子Ni2+固相化的层析介质加以提纯，实为金属熬合亲和层析MCAC。蛋白质的纯化程度可通过聚丙烯酰胺凝胶电泳进行分析。一、试剂准备1. LB液体培养基：Trytone 10 g， yeast extract 5 g，NaCl 10 g，用蒸馏水配至1000 mL。2. 氨苄青霉素：100 mg/mL。3. 上样缓冲液：100 mM NaH2PO4，10 mMTris，
2、8M Urea，10 mM 2-ME，pH8.0。4. Washing Buffer：100 mM NaH2PO4，10 mMTris，8 M Urea，pH6.3。5. Elution Buffer：100 mM NaH2PO4，10 mMTris，8M Urea， 500 mM Imidazole， pH8.0。6. IPTG：100mM IPTG异丙基硫代-D-半乳糖苷：2.38g IPTG溶于100ml ddH2O中,0.22m滤膜抽滤，-20保存。二、获得目的基因1. 通过PCR方法：以含目的基因的克隆质粒为模板，按基因序列设计一对引物在上游和下游引物分别引入不同的酶切位点，PCR循
3、环获得所需基因片段。2. 通过RT-PCR方法：用TRIzol法从细胞或组织中提取总RNA，以mRNA为模板，逆转录形成cDNA第一链，以逆转录产物为模板进行PCR循环获得产物。三、构建重组表达载体1. 载体酶切：将表达质粒用限制性内切酶同引物的酶切位点进行双酶切，酶切产物行琼脂糖电泳后，用胶回收Kit或冻融法回收载体大片段。2. PCR产物双酶切后回收，在T4DNA连接酶作用下连接入载体。四、获得含重组表达质粒的表达菌种1. 将连接产物转化大肠杆菌DH5，根据重组载体的标志抗Amp或蓝白斑作筛选，挑取单斑，碱裂解法小量抽提质粒，双酶切初步鉴定。2. 测序验证目的基因的插入方向及阅读框架均正确
4、,进入下步操作。否那么应筛选更多克隆，重复亚克隆或亚克隆至不同酶切位点。3. 以此重组质粒DNA转化表达宿主菌的感受态细胞。五、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的诱导1. 接种含有重组氯霉素酰基转移酶蛋白的大肠杆菌BL21菌株于5 mL LB液体培养基中含100 ug/mL 氨苄青霉素，37震荡培养过夜。2. 按150或1：100的比例稀释过夜菌，一般转接1 mL过夜培养物于100 mL含100 ug/mL 氨苄青霉素LB液体培养基中，37震荡培养至OD600= 0.6 - 0.8最好0.6，大约需3 h。取10 ul 样品用于SDS-PAGE 分析。3. 对照组不加诱导剂，实验组参加IPTG至终浓度
5、0.5 mmol/l，37继续培养1-3h。4. 12 000 rpm 离心10 min，弃上清，菌体沉淀保存于-20或-70冰箱中。六、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的别离、纯化1. NTA层析柱的准备：在层析柱中参加1 mL NTA介质，并分别用8 mL 去离子水，8 mL上样缓冲液洗涤。2. 重组蛋白的变性裂解：在冰浴中冻融菌体沉淀，参加5 mL上样缓冲液， 用吸管抽吸重悬，超声波破裂菌体，用振荡器等轻柔的混匀样品60 min，4 12000 rpm 离心 30 min，将上清吸至一个干净的容器中，并弃沉淀。取10 ul 上清样品用于SDS-PAGE 分析。3. 上清样品以10-15 mL/h 流速上Ni2+-NTA柱，收集流出液，取10 ul样品用于SDS-PAGE 分析。4. 洗脱杂蛋白：用Washing Buffer以10-15 mL/h流速洗柱，直至OD280= 0.01分步收集洗脱液，约3-4 h，取10 ul洗脱开始时的样品用于SDS-PAGE 分析。5. 洗脱目标蛋白：用Elution Buffer洗柱，收集每1 mL 级分，分别取10 ul样品用于SDS-PAGE 分析。
