EP7.02.6.12非无菌产品的微生物限度检查

上传人:hs****ma 文档编号:474750134 上传时间:2023-02-12 格式:DOC 页数:7 大小:186.50KB
返回 下载 相关 举报
EP7.02.6.12非无菌产品的微生物限度检查_第1页
第1页 / 共7页
EP7.02.6.12非无菌产品的微生物限度检查_第2页
第2页 / 共7页
EP7.02.6.12非无菌产品的微生物限度检查_第3页
第3页 / 共7页
EP7.02.6.12非无菌产品的微生物限度检查_第4页
第4页 / 共7页
EP7.02.6.12非无菌产品的微生物限度检查_第5页
第5页 / 共7页
点击查看更多>>
资源描述

《EP7.02.6.12非无菌产品的微生物限度检查》由会员分享,可在线阅读,更多相关《EP7.02.6.12非无菌产品的微生物限度检查(7页珍藏版)》请在金锄头文库上搜索。

1、欧洲药典6.02612非无菌产品的微生物限度检查:微生物计数试验1. 简介:该法所描述的是在需氧条件下生长的嗜温性细菌和真菌类微生物的定量检测。设计该试验的最初目的是为了确定一种物质或制剂是否符合微生物质量的既定标准。如果是这种目的, 则需要遵从下面的说明,包括所需样品数,从而根据下 面所提到的方法来进行结果解释。该法不适用于包含微生物作为活性成分的产品。如果与药典的等效性作了相关说明,可以使用自动 收集法作为替代法。2. 一般步骤设计方法时所用条件要避免外在微生物对待测产品的污染。必须釆取措施,使其不影响任何待测微生物。 如果待测产品有抗菌活性,必须将这种活性去除或中和掉。如果因此使用了灭活

2、剂,必须证明它们对微生 物的高效性和无毒性。如果在样品制备中加了表面活性剂,必须证明它们 对微生物的无毒性和与灭活剂的兼容性。3. 计数方法按规定用微孔滤膜法或平板计数法。MPN法对微生物测定来说是最不精确的方法,但是,如果某些产品 所含极少的微生物量,该法是最合适的。方法选择基于下列因素:如产品的特性和所要求的 微生物量。所选方法必须能够测定充足的样品从而来判 断其是否符合标准。所选方法的适用性必须建立。4. 促生长实验、计数法的适用性和阴性对照4-1总则在不加产品的条件下该试验检测微生物的能力必须已确定。如果测试条件改变或产品改变,必须证实方法的适 适用性,因为这些改变可能影响试验的最终结

3、果。4-2试验菌株的准备使用测试菌株标准稳定的悬浮液或按下面方法制 备。使用批种子培养技术(seed-lot systems )使得 用于接种的微生物从最初的主批种子传代不多于5次。细菌和真菌试验株的生长分别见表2.6.12-2。使用氯化钠蛋白胨(pH 7.0 )缓冲液或pH 7.2的 磷酸缓冲液制作试验用悬浮液。对于黑曲霉菌需要加入 0.05 %聚山梨醇酯80到缓冲液中。在两小时内使用该 菌悬液或2-8 C下可保存24小时。作为一种可替代的 制备方法,稀释含有黑曲霉菌或枯草芽孢杆菌的新鲜悬 浮液,该悬浮液中加有营养细胞,从而可以制得一种稳 定的孢子悬浮液,对于接种试验来说需要将该孢子悬浮 液

4、调整到一个合适的体积下。该孢子悬浮液可以在 2-8 C保存至已经验证的期限。4-3阴性对照为了验证试验条件,必须使用可选用的稀释液作为 阴性对照来替代测试液。在该阴性对照品中必须没有微 生物生长。4-4促生长培养基测试每一批准备好的培养基和每一批培养基,要么 为脱水培养基要么含有所述成分。用表2.6.12-1中所描述的少量微生物(不多于100CFU )接种到含有大豆蛋白胨消化肉汤的液体/平板和大豆蛋白胨消化琼脂上,对每一种使用各自的含有培 养基的液体/平板。用表2.6.12-2中所描述的少量微生物(不多于100CFU )接种到沙氏葡萄糖琼脂平板, 对每一种微生物使用含各自培养基的平板。接种条件

5、见 表 2.6.12-1。对固体培养基而言,以标准接种物来说,所得的生 长值不超过计算值的两倍。与用先前的测试方法和验证 的批培养基所得的测试结果相比,新制备的接种物将会 出现微生物的生长值。与用先前的测试方法和验证的批 培养基所得的测试结果相比,如果微生物生长清淅可见,则液体培养基是合适的。# of 6欧洲药典6.0表2612.-1- 微生物制备和使用微生物受试菌株制备促生长在产品存在的情况下的计数方法的适应性需氧菌总数总酵母菌和 霉菌数需氧菌总数总酵母菌 和霉菌数金黄色葡萄球菌 如:ATCC6538NCIMB9518CIP4.83NBRC13276酪蛋白大豆消化琼脂 或酪蛋白大豆消化肉 汤

6、30-35 C18-24 小时酪蛋白大豆消化 琼脂或酪蛋白大 豆消化肉汤 100CFU30-35 C3天酪蛋白大豆消化琼脂/MPN酪蛋白大豆消化肉汤 100CFU30-35 C3天铜绿假单胞菌如:ATCC 9027NCIMB 8626CIP 82.118NBRC13275酪蛋白大豆消化琼脂 或酪蛋白大豆消化肉 汤30-35 C18-24 小时酪蛋白大豆消化 琼脂或酪蛋白大 豆消化肉汤 100CFU30-35 C3天酪蛋白大豆消化琼脂/MPN酪蛋白大豆消化肉汤 100CFU30-35 C3天枯草杆菌如:ATCC 6633NCIMB 8054CIP 52.62NBRC 3134酪蛋白大豆消化琼脂

7、或酪蛋白大豆消化肉 汤30-35 C18-24 小时酪蛋白大豆消化 琼脂或酪蛋白大豆消化肉汤 100CFU30-35 C3天酪蛋白大豆消化 琼脂/MPN酪蛋 白大豆消化肉汤 100CFU30-35 C3天白色念珠菌如:ATCC 10231NCPF 3179IP 48.72NBRC 1594沙氏葡萄糖琼脂或沙 氏葡萄糖肉汤20-25 C2-3天酪蛋白大豆消化琼脂 100CFU30-35 C5天沙氏葡萄糖 琼脂 100CFU20-25 C5天酪蛋白大豆消化 琼脂 100CFU 30-35 C5天MPN :不能适用沙氏葡萄糖琼脂 100CFU20-25 C5天黑曲霉菌如:ATCC 16404IMI

8、149007IP 1431.83NBRC 9455沙氏葡萄糖琼脂或马 铃署葡糖萄糖琼脂20-25 C5-7天或能达到有很 好的芽孢形成酪蛋白大豆消化琼脂 100CFU30-35 C5天沙氏葡萄糖 琼脂 100CFU20-25 C5天酪蛋白大豆消化 琼脂 100CFU30-35 C5天MPN : 不适用沙氏葡萄糖琼脂 100CFU20-25 C5天# of 6欧洲药典6.04-5对于待测产品合适的计数方法4-5-1 样品制备:样品制备方法选择依赖于待测产 品的物理特性。如果下述方法均不合适的话,可选用替代方法。水溶性产品:溶解或稀释(通常 1 : 10的稀释液)待 测产品于氯化钠蛋白胨(pH 7

9、.0 )缓冲液,pH7.2 的 磷酸缓冲液或酪蛋白大豆消化肉汤。如有必要,调节 pH 6-8。如果必要可用相同稀释液进一步稀释。不溶于水的非脂类产品:使待测物(通常以1: 10稀 释制备)悬浮在 PH7.0 的缓冲氯化钠蛋白胨溶液, pH7.2 的磷酸缓冲液或酪蛋白大豆消化肉汤中。加入 如1g/l的聚山梨醇酯80表面活性剂使几乎能润湿的 物质悬浮。如有需要,调节pH为6-8。如果必要可用 相同稀释液进一步稀释脂类产品:将受检产品溶解在豆蔻酸异丙脂中,通过 过滤或把产品与最小需要量的无菌聚山梨醇酯80或与其他的非抑制表面活性剂混合进行灭菌,如果需要, 加热到不超过40 C,或者在特殊情况下不超过

10、45 C。仔细混合且如有必要在水浴中保温。加足量预热的所 选稀释液来制备原产品的1 : 10的稀释溶液。仔细混合同时在所需的最短时间内保温来形成乳状液。可以 使用含有合适浓度的无菌聚山梨醇酯80或其它的非抑制无菌表面活性剂来制备一系列的十倍稀释液。 液体或固体的气溶胶:将产品在无菌条件下转移到一 个膜过滤装置或者一个无菌容器中来进一步取样。或 使用总含量或使用每个容器剂量确定的量。透皮贴剂。去掉透皮贴剂的保护层(隔离衬垫 并把它 们向上贴在无菌玻璃或塑料盘上。用无菌多孔物质例如无菌纱布来覆盖粘贴面,避 免透皮贴剂粘在一起并把透皮贴剂转移到含有如聚山 梨醇酯80和/或卵磷脂的灭活剂的所选适当体积

11、的稀 释液中。至少用力振摇制备溶液30分钟。4-5-2 接种和稀释:加上述制备的样品(4-5-1 )到一个控制的(不含待测物质)足够量的微生物混悬溶 液中来获得一个不超过100CFU的接种液。接种液的体积不能超过稀释产品的体积的1%。为说明产品的可接受微生物回收率,实验中应该 使用制备样品的最低可能稀释因子。如果因为抗微生 物活性或者差的溶解性而不可能做到,需要进一步探 索合适的方案。如果样品的生长抑制不可避免,在中 和、稀释或过滤后可加入微生物混悬液。4-5-3 中和/去除抗微生物活性把根据4-5-2 所述稀释制备的样品和按照4-5-4中所述步骤培养的微生物数和与对照制备中回收的微 生物数作

12、比较。如果生长被抑制(抑制因子大于2 ),修改计数测试的方法来保证结果的有效性。修改可能包括,如,(1 )稀释液或培养基体积的增加,(2 )特殊的或一般的中和剂与稀释液的结合,(3)膜过滤,或(4 )上述措 施的组合。中和剂:中和剂可被用来中和抗菌剂的活性(表2.6.12.-2)。可在灭菌前加入到所选稀释液或更好的培养基中。如果使用的话,它们的功效和对微生物无 毒性必须通过使用中和剂而不使用产品的空白实验进 行说明。表2.6.12.-2干扰物质的一般中和剂干扰物质可能的中和方法戊二醛,汞硫酸氢钠(亚硫酸氢钠)酚,醇,醛,山梨酸酯稀释醛氨基乙酸季铵化合物(QACs),对羟 基本甲酸酯(对羟基本甲

13、酸 酯),二-二双胍类卵磷脂QACs ,碘,对羟基本甲酸 酯聚山梨醇酯汞剂硫乙醇酸盐汞剂,卤素,醛硫代硫酸盐EDTA (乙二胺四乙酸盐)Mg2 + 或 Ca2 +若没有合适的中和方法,可认为分离接种微生物 失败归因于产品的杀菌活性。这一信息说明产品不可 能被上述微生物污染。然而,产品可能只对其中一些 有抑制作用,但对其他一些测试菌株没有作用或菌株 没有代表性。然后,以微生物生长和标准所允许的最 高浓度系数进行试验。4-5-4.产品存在情况下微生物的回收率对以上列出的微生物进行单独的试验。仅对加入 的测试菌微生物进行计数。4-5-4-1.膜过滤:使用孔径不大于 0.45 ym的滤膜过滤。选择滤膜

14、材料类型时,要求滤膜对微生物的滞 留能力不受到待测样品成份的影响。每种上述微生物 使用一张滤膜。将适量按4-5-1至4-5-3制备的样品(含1g产 品,若预期 CFU较大,则小于1g )用膜过滤,立即 过滤并用适量稀释液冲洗滤膜。将膜转移到酪蛋白大豆消化琼脂表面上,以确定 厌氧菌总数(TAMC)。将滤膜转移到沙氏葡糖琼脂上, 以确定总酵母菌/霉菌数(TYMC )。按表2612-2接种,进行计数。4-5-4-2. 平板计数法:至少在对各培养基使用两次平 板计数法,对结果取平均值。4-5-4-2-1.倾注培养法在直径9cm 的培养皿中,加入1ml按4-5-1 至4-5-3 法制备的样品以及 15-20ml酪蛋白大豆消化 琼脂或沙氏葡糖琼脂。培养基温度均不超过45 C。若使用更大的培养皿,则琼脂的量也要相应增加。对于 表2.6.12.-2中列出的每种微生物,至少要使用2个培养皿。根据表 2.6.12.-2进行培养。取各培养基的菌落数的算术平均值计算原接种物的CFU。4-5-4-2-2.表面涂布法在各直径9cm的培养皿中加入 15-20ml 酪氨酸 大豆消化琼脂或沙氏葡糖琼脂,放置使其凝固。培养 基温度均不超过45 C。若使用更大的培养皿,则琼脂 的量也要相应增加。在层流通风柜或培养箱中干燥。对于表2.6.12.

展开阅读全文
相关资源
相关搜索

当前位置:首页 > 办公文档 > 解决方案

电脑版 |金锄头文库版权所有
经营许可证:蜀ICP备13022795号 | 川公网安备 51140202000112号