western的操作步骤

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1、Western Blot操作全过程一, 收蛋白a(如果要收集死细胞)1. 取冰,将4C离心机提前降温。2. 将死细胞收集到离心管:孔板内的细胞用PBS洗1-2遍,用适量的胰酶消化,用离心管内的原培养液将孔板内细胞吹打下来,收集到离心管,室温离心1000rpm,5min。3. 弃上清,将离心管倒扣在滤纸上,尽量吸尽残留上清。4. 视细胞量的多少加入细胞裂解液。(1Cell Lysis Buffer:PMSF=100:1,1Cell Lysis Buffer,PMSF-20C保存。PMSF常温易降解,拿出时间不得超过30min,必须放置冰上。)5. 冰上裂解15min,将裂解液转移至EP管离心,4

2、C,12000rpm,15min。6. 小心将上清转移至另一EP管,记下吸取的量。如:100L。7. 将收集好的蛋白保存与20C。(可长期保存)b (如果不收集死细胞)1弃上清,孔板PBS洗1-2遍,吸尽PBS。在孔板中视细胞量的多少加入相应细胞裂解液。(同上)2冰上裂解15min,用细胞刮在孔板里将细胞刮刮。(不同的孔不能用同一个刮子,刮前用水冲洗,擦干。)3将裂解液转移至EP管离心,4C,12000rpm,15min。4小心将上清转移至另一EP管,记下吸取的量。5将收集好的蛋白保存与20C。(可长期保存)二, 测蛋白浓度BCA法(或者按照自己的试剂盒说明操作)1. 需96孔板,测蛋白浓度的

3、A液,B液,标准蛋白,要测的样品蛋白。2. 按要测的样品蛋白的数量来配AB液,每孔需AB混合液80l(A:B=50:1)。例:有5个样品,加上5个标准蛋白和空白对照。共有11个孔。则A液取1180=880l,B液取88050=17.6两液混匀,加入96孔板,每孔80l。然后加入标准蛋白及样品蛋白4l。(标准蛋白先配好浓度125,250,500,1000,2000)3. 将孔板放入37C温箱孵育30min。4. 用酶标仪测蛋白浓度。5. 记下蛋白浓度,根据要上样的g量算出l量。例:蛋白浓度为1000,需上样15g。则需上样151000=?上样量不超过20l。三, 配胶1. 将薄板和厚板用洁净的布

4、擦干净,对齐,夹好。(板必须擦干净,下端对齐,否则容易漏胶。)2. 配分离胶,根据要跑的蛋白分子量,配相应浓度的胶。3. 快速将分离胶加入薄厚板之间,不能太满,留出浓缩胶的部分。(浓缩胶高度大约1CM)4. 在分离胶上灌水,要缓慢,为了让胶凝的更好。5. 30分钟左右,分离胶凝了,将水倒掉,滤纸吸干,找好梳子。制浓缩胶。6. 灌胶,快速插入相应的梳子。7. 约15min胶可以凝固。四, 煮蛋白1. 煮蛋白前将蛋白中加入6SDS+DTT(即上样缓冲液)。例样品蛋白共有100l,则需加1005=20l 6SDS+DTT。混匀。(加有DTT的SDS应-20C保存。DTT应-20C保存。SDS:DTT

5、=9:1)。2. 将蛋白沸水煮10min。煮过的蛋白在两周内有效。五,上样,跑胶,转膜1. 电泳巢内加入电泳液,夹好胶板。拔去梳子。2. 每孔上样量不超过20l,每块胶应上有Maker。剩余的孔里上1SDS。3. 蛋白上样前要震荡混匀。4. 浓缩胶80V,分离胶120V。5. 转膜半干法转膜 或者湿转 自己的试验条件决定。根据分子量的大小,按照Maker的位置裁胶,根据胶的大小,剪相应大小的NC膜。(NC膜要先用甲醇活化)。六,封闭5%牛奶(TBST稀释的脱脂牛奶)室温封闭1-2h, 七,封一抗摸清抗体要用的浓度。用TBST或5%牛奶加抗体。室温1-2h,或4C过夜。用过的抗体要回收,做记号,

6、用的第几次。放入-20保存。八,洗膜用TBST摇床上洗3遍,每次10min。(一抗不要摇的太剧烈)九,封二抗摸清二抗的浓度。室温45min-2h。抗体回收,做记号,用的第几次。放入-20保存。十,洗膜用TBST摇床上洗3遍,每次10min。(二抗可以摇的稍快些)十一,发光1. 在发光板内放入干净的可以夹住NC膜的薄膜,放好已经洗好的膜。用滤纸吸干膜上的水。2. 拿齐发光板,发光液,1ml的枪及枪头(至少两根),胶片,一张滤纸,一个离心管。3. 进入暗室,反锁好门,开红灯,在离心管内配发光液,A液:B液=1:1。先A后B。切记换枪头,打开薄膜,将AB液混匀,均匀的洒在NC膜上。盖上薄膜,将多余的发光液推开,以防水多膜移动。漏出薄膜外的可用滤纸吸干。4. 关灯,看见荧光,盖上胶片。胶片盖上之前先在左上角(个人习惯)折个角,好辨认方向。5. 根据荧光强度按压几秒或几分钟。将胶片放入洗片机冲洗。6. 等片子完全洗好,可开灯。或者DAB显色需要买试剂盒。十二,扫描保留结果

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