实验一 大豆叶片DNA提取(CTAB)

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1、实验一大豆叶片DNA提取(CTAB)一、实验目的1. 学习掌握从植物中提取DNA的方法;2. 学习掌握从CTAB法提取植物DNA原理、方法及过程。二、实验原理(CTAB)大豆DNA提取的方法很多,如提取质量高,得率较低的CTAB(溴化十六烷三甲基铵)法;提取得率高,质量较好的SDS(十二烷基磺酸钠)法;用于少量提取的SarcosylCTAB,SDS,Sarcosyl都是洗涤剂性质的化学药品,主要的破膜成份,可将细胞内的物质释放出来。大豆DNA提取所用的材料可以是种子、幼苗或叶片、根系、茎等各部分组织。在分子生物学上常用的材料是叶片,转基因检测或进口大豆检测时常用到子粒。利用叶片作为提取材料时,

2、若在田间种植材料,并做其它特性鉴定的情况下,多是在长出35片三片复叶时,取上部嫩叶,选用较嫩的叶片材料才可能显著提高提取的DNA浓度。但要保留生长点;若种植材料只是为取叶片提取DNA时,可在室内用营养钵种植,长出足够嫩叶即可取叶片。抽提DNA中主要杂质为碳水化合物,同时为了减少叶绿素对提取DNA纯度和颜色的影响,在采样前将取样植株在暗室放置23d,可以大大降低叶片中可溶性碳水化合物的含量,从而提高提取DNA的纯度。根据所用材料的不同而采取不同的提取方法,通常对于叶片DNA的提取采用SDS法,而大豆子粒或大豆粉采用CTAB法效果较好。大豆DNA提取无论采取传统的CTAB法、SDS法还是采用现在所

3、改良的一些方法,其步骤有繁有简,但归纳起来都要进行以下5个方面工作:破壁、破膜、抽提、沉淀和溶解。各提取方法有一些差异,但原理一致。1. 破壁(破坏细胞壁)植物DNA提取与动物不同,植物细胞与组织具有较硬的细胞壁,大量酚类、色素、多糖、单宁等物质,给DNA的提取与纯化带来许多困难。所以提取时必须先破坏细胞壁。用叶片作为材料破壁的方法最常用的是液氮研磨法,尽量取鲜嫩叶片,放入研钵,加入液氮研磨,一般要加入34次液氮。研磨好的特征是叶片粉末颜色由绿变白。如果研磨样品量非常少(如转基因植株检测),可将叶片放入1.50mL的Eppendorf离心管,将离心管放入液氮中,用塑料杆头的电钻研磨,效果较好。

4、一些实验室有使用玻璃匀浆器的,但效果不是很好。2. 破膜(破坏细胞膜,释放细胞内物质)破膜的主要成份是去污剂,如上面所列举的CTAB、SDS、Sarcosyl等。还有TrisCl、EDTA、NaCl等成份。TrisCl是缓冲液,提供一个pH值稳定的环境;EDTA可以螯合金属离子,而某些金属离子对酶类的活性是至关重要的,如Mg2+。如果酶不能与金属离子结合,酶就失去了活性,核酸酶类也是如此,所以EDTA可避免提取DNA时核酸酶类污染,造成DNA的降解;NaCl可以提供一个高盐的环境,为进一步去除蛋白质所必需的。而lmolL-的NaCl浓度是大豆新鲜叶片快速分离DNA的理想条件。DNA提取液要特别

5、注意pH值,因为在偏酸的条件下,RNA稳定,而DNA不稳定,在偏碱的条件下,DNA稳定,而RNA不稳定,因而DNA提取液pH值应在&0左右,pH值的调节应重点放在EDTA溶液的配制上。3. 抽提(去掉蛋白质及其它杂质)抽提的主要目的是去除蛋白质。去除蛋白质的试剂主要是苯酚和氯仿。苯酚应使用pH值为&0的Tris饱和酚,碱性环境可以保证DNA不被降解,因而不能使用pH值为5.0的水饱和酚。苯酚去除蛋白质的效果比较好,但苯酚与水相溶,二者不分层,不能很好地去除苯酚,而苯酚长时间存在会导致DNA降解。为了避免这种情况发生,常常用酚仿试剂,即苯酚:氯仿:异戊醇为25:24:1的混合液。氯仿也有抽提蛋白

6、质的作用,但效果不是太好。苯酚在氯仿中的溶解度比在水中的溶解度高,因而苯酚更易溶于氯仿中。氯仿与水不溶,二者分为两相,即会出现分层现象。通过离心,可以使分层更为彻底,从而除掉苯酚及氯仿。异戊醇主要是减少抽提过程中翻转产生的泡沫,达到较好的抽提效果。也有人采用氯仿异戊醇代替酚抽提,由于氯仿异戊醇易溶于异丙醇,并易于挥发,由此克服了由于酚等的残留带来的DNA降解及酶切上的困难。4. 沉淀(沉淀DNA)沉淀常用试剂为异丙醇和乙醇。大量DNA提取时,一般用预冷(-20C)的异丙醇进行沉淀,即根据DNA抽提后得到上清液的体积加入等体积预冷的异丙醇。有人在抽提前和抽提后分别用异丙醇进行沉淀,DNA得率提高

7、。这是因为用异丙醇反复沉淀,有利于特异性地沉淀核酸,提高核酸的产量。总的来讲,用异丙醇沉淀DNA的效果较好,但也有一个突出的缺点,就是异丙醇不容易挥发出去,这对后期DNA溶解有不良影响。无水乙醇的沉淀效果没有异丙醇好,沉淀时往往加入量大,即根据DNA抽提后得到上清液体积加入二倍体积的无水乙醇。无水乙醇的优点是易挥发,容易去除。为了解决这些矛盾,实验中常常先用异丙醇沉淀DNA,再用70%酒精清洗,这样70%洒精就可将异丙醇溶解出来,而酒精又可挥发出去。因此在精提DNA时,常只用无水乙醇沉淀,而不用异丙醇。沉淀要注意的另外一个问题是,当将抽提后的上清液加入异丙醇或乙醇时,不应太急,要缓缓地旋转地加

8、入,而且沉淀时要避免上下颠倒,以免导致DNA降解。5. 溶解(溶解DNA)溶解DNA一般采用两种方法。一种方法是用超纯水溶解,另一种是用TE缓冲溶液溶解。用超纯水溶解不利于DNA的长期保存,因为在水中DNA双链不很稳定,易降解。其优点是可以直接用于各种生物技术操作。TE缓冲溶液中含有TrisCl和EDTA,可以维持DNA双链的稳定性。EDTA是金属离子的螯合剂,可防止各种核酸酶的酶解,但也会抑制实验中各种酶的活性,影响实验结果,所以TE缓冲溶液溶解的DNA在使用时需要沉淀,用超纯水重新溶解。因此,DNA长期保存时,应用TE缓冲溶液溶解;而DNA提取后立即用于实验时,则应用超纯水溶解。小结对于D

9、NA的提取,进行各种试剂和方法的研究,在不同实验条件和不同操作人员效果不同。如能遵循上述基本原理,大豆DNA的提取将得到较好结果。在DNA提取时,不能简单地按照操作步骤中的时间或离心的转速,应注意各个步骤中的典型特征是最重要的。如破壁时叶片的由绿变白,抽提时的蛋白质沉淀析出等。只有掌握这些特征,实验才能做到有的放矢,及时调整实验中的不定因素,得到好的结果。二、药品耗材100mL1M的Tris-HCl(pH=8.0)的配制:称取12.114gTris碱固体溶于80mLddH2O中,加4.2mL的质量分数为37%浓盐酸,调节酸碱度到pH值为&0后,溶液定容至100mL。200mL的质量分数为2%的

10、CTAB提取液的配制:4g的CTAB固体,16.364g氯化钠(NaCl),1.48g固体EDTANa2H20,20mL的1MTris-HCl(pH=8.0),用ddH20定容至200mL,121C下灭菌20分钟。使用时每40mLCTAB提取液加10“L巯基乙醇。氯仿、异丙醇、异丙醇、酒精、液氮、ddH)、移液枪头、离心管。三、仪器设备离心机、涡旋仪、移液枪、水浴锅、离心管架。四、方法步骤(1) CTAB在65C水浴中预热,取大豆叶片在液氮中研磨成粉末状。(2) 取200mg样品(约在离心管0.1刻度线以下)放入1.5mL离心管中,加入600pLCTAB,颠倒混匀5-6次,65C水浴15分钟。

11、(3) 再加等体积的氯仿异戊醇(24:1)溶液轻轻摇晃30秒,在4C下12000rpm/分钟离心1分钟后,吸取上清液放置于干净的离心管中。(4) 加入同体积的预冷异丙醇溶液,充分颠倒混匀,用移液枪反复吹吸几次并重复一次,这时可见分散的絮状物,在4C下12000rpm/分钟离心2分钟后,弃上清液,保留下面沉淀。(5) 用600pL70%乙醇洗涤沉淀,用移液枪反复吹吸几次并重复一次,弃除乙醇(也可以低速离心1-2分钟),在室温下将离心管倒置于吸水纸上晾干。(6) 沉淀用TE溶液溶解DNA,再加入RNase至终浓度50pg/mL,在37C下保温半小时,将DNA样品放入冰箱长期保存。短期保存可直接用超

12、纯水溶解放在-20C下保存。五、实验注意事项(1) DNA二级结构易变性”。DNA的二级结构和双链易受多种因素(如强酸、强碱、加热、低盐浓度、有机溶剂、酰胺类、尿素等)的影响引起双链解开,即“变性”,因此抽提时避免使用变性的条件。(2) 抑制内外源DNase的活力。DNase就象一把刀,它能把大分子的DNA切成碎片,所以要加以杜绝,现可以通过多种途径来做到这一点:、低温操作;b、调节pH,使偏碱(pH8.0);c、抽提液中加表面活性剂;d、加螯合剂(EDTA)除去酶的铺助因子(Mg2+),使酶活性丧失。(3) 防止化学降解。如过酸或过碱以及其它化学因素,会使DNA降解,一般综合考虑,取pH8.

13、0左右为宜。(4) 防止物理因素降解。如温度太高或机械张力剪切等,DNA分子特别大,其分子量可达1012道尔顿,极易被机械张力拉断,甚至在细管中稍急一些的流动也会使DNA断裂,所以在抽提过程中要特别注意这一点,操作过程要尽量简便、温和、减少搅拌次数,也不要剧烈摇动。(5) 植物的次生代谢物(主要是胞质内的多酚类或色素类化合物)对核酸提取有干扰作用。因此,一般尽可能选幼嫩的、代谢旺盛的新生组织作为提取DNA的材料,这是因幼嫩的新生组织次生代谢物较少,DNA含量高,且易于破碎,植物材料最好是新鲜的。分离提取植物DNA的方法很多,本实验采用CTAB法提取DNA并通过紫外吸收法和电泳鉴定。六、思考题1

14、. CTAB方法原理是什么?答:植物组织中绝大部分是核DNA,它和组蛋白、非组蛋白结合在一起,以核蛋白(即染色质或染色体)的形式存在于细胞核内。CTAB是一种阳离子去污剂,可溶解细胞膜,它能与核酸形成复合物,在高盐溶液中(0.7mol/LNaCl)是可溶的,当降低溶液盐的浓度到一定程度(0.3mol/LNaCl)时从溶液中沉淀,通过离心就可将CTAB与核酸的复合物同蛋白、多糖类物质分开,然后将CTAB与核酸的复合物沉淀溶解于高盐溶液中,再加入乙醇使核酸沉淀。2. 异丙醇沉淀DNA是什么作用。答:异丙醇可以将DNA从溶液中溶液沉淀出来,减少蛋白质变性操作过程中产生的气泡,降低表面张力,从而减少气泡产生。另外,异戊醇有助于分相,使离心后的上层含DNA的水相、中间的变性蛋白相及下层有机溶剂相维持稳定。

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