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垂直式蛋白质电泳的操作步骤

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垂直式蛋白质电泳的操作步骤_第1页
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实验试剂和器材1•材料: 低分子量标准蛋白试剂盒:低分子量标准蛋白:兔磷酸化酶BMW=97,400兔肌动蛋白 MW=43,000MW=31,000牛血清白蛋白 MW=66,200牛碳酸酐酶胰蛋白酶抑制剂 MW=20,100鸡蛋清溶菌酶 MW=14,400 开封后溶于200川蒸馏水,置-20 °C保存,使用前室温融化,沸水浴中加热3-5分钟后上样样品1:称3mg样品1,加2 ml蒸馏水溶解2.实验试剂⑴ 30%丙烯酰胺(Acr):称Acr30g,甲叉双丙烯酰胺 (Bis) 0.8g,加蒸馏水至100ml,过滤后置棕色瓶中, 4C贮存可用1-2月2) 10%SDS (十二烷基磺酸钠)加入50ml水,用1mol/L盐酸入 50ml 水,用 1mol/L入50ml水,用1mol/L盐酸调(3) 1.5mol/L pH8.8 Tris-HCI 缓冲液:称取 Tris18.2g, 调pH8.8,最后用蒸馏水定容至100ml4) 1.0mol/LpH6.8Tris-HCl 缓冲液:称取 Tris12.1g,加 盐酸调pH6.8,最后用蒸馏水定容至100ml5) 0.05mol/LpH8.0Tris-HCl 缓冲液:称取 Tris0.6g,加 pH8.0,最后用蒸馏水定容至100ml。

7) 10%过硫酸铵(AP)(8) TEMED (四甲基乙二胺)(9) 样品溶解液:SDS(100mg) +巯基乙醇(0.1ml) + 溴酚蓝(2mg) +甘油(2g)+0.05mol/L pH8.0Tris-HCl (2ml),最后定容至 10ml10) 固定液:取50%甲醇454ml,冰乙酸46ml混匀11) 染色液:称取考马斯亮蓝R250 0.125g,加上述固定液250ml,过滤后备用12) 脱色液:冰乙酸75ml,甲醇50ml,加蒸馏水定容至1000ml13) 电极缓冲液(内含 0.1%SDS,0.05mol/LTris- 0.384mol/L 甘氨酸缓冲液 pH8.3): 称Tris6.0g,甘 氨酸28.8g,加入SDS1g,加蒸馏水使其溶解后定容至1000ml实验过程1•将玻璃板用蒸馏水洗净晾干,准备2个干净的锥形瓶.2.把玻璃板在灌胶支架上固定好.※固定玻璃板时,两边用力一定要均匀,防止夹坏玻璃板. 3•按比例配好分离胶,用移液管快速加入,大约5厘米左右,之后加少许蒸馏水,静置40分钟.※凝胶配制过程要迅速,催化剂TEMED要在注胶前再加入,否则凝结无法注胶•注胶过程最 好一次性完成,避免产生气泡.※水封的目的是为了使分离胶上延平直,并排除气泡※凝胶聚合好的标志是胶与水层之间 形成清晰的界面.4•倒出水并用滤纸把剩余的水分吸干,按比例配好浓缩胶,连续平稳加入浓缩胶至离边缘 5mm处,迅速插入样梳,静置40分钟.※样梳需一次平稳插入,梳口处不得有气泡,梳底需水 平.5•拔出样梳后,在上槽内加入缓冲液,没过锯齿时可拆去底端的琼脂糖.※要使锯齿孔内的气泡全部排出,否则会影响加样效果.6、加样三个。

1)取10口1标准蛋白溶解液于EP管内,再加入10口1 2倍样品缓冲液, 上样量为20口I2)取10口I样品1溶液,再加入10口I 2倍样品缓冲液,上样量分别为5口1和10口I7•用微量注射器距槽底三分之一处进样,加样前,样品在沸水中加热3分钟,去掉亚稳态聚合 ※注射器不可过低,以防刺破胶体,也不可过高,在样下沉时会发生扩散•※为避免边缘效应,最 好选用中部的孔注样.8.电泳槽中加入缓冲液,接通电源,进行电泳,开始电流恒定在10mA,当进入分离胶后改 为20mA,溴酚蓝距凝胶边缘约5mm时,停止电泳9•凝胶板剥离与染色:电泳结束后,撬开玻璃板,将凝胶板做好标记后放在大培养皿内,加 入染色液,染色1小时左右10.脱色:染色后的凝胶板用蒸馏水漂洗数次,再用脱色液脱 色,直到蛋白质区带清晰※剥胶时要小心,保持胶完好无损,染色要充分.以上是我实验课件,希望有所帮助!。

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