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1、本文格式为Word版，下载可任意编辑酵母单杂交 实验方法 酵母单杂分析 酵母单杂交技术是体外分析DNA与细胞内蛋白质相互作用的一种方法，通过对酵母细胞内报告基因表达状况的分析来鉴别DNA结合位点并察觉潜在的结合蛋白基因，或对结合位点举行分析。运用此技术能筛选到与DNA结合的蛋白质，并可直接从基因文库中得到编码该蛋白质的核苷酸序列而无需繁杂的蛋白质分开纯化操作，故在蛋白质研究中具有确定的优势；而且酵母属真核细胞，通过酵母系统得到的结果比其它体外技术获得的结果更能表达真核细胞内基因表达调控的处境。 【测验目的】 了解酵母单杂交的根本原理和应用，掌管酵母单杂交的主要步骤及留神事项，学会酵母感受态的制
2、作与转化，基因文库的构建及筛选。 【测验原理】 酵母单杂交方法是根据DNA结合蛋白（即转录因子）与DNA顺式作用元件结合调控报告基因表达的原理来克隆编码目的转录因子的基因（cDNA）。该方法也是细胞内分析鉴定转录因子与顺式作用元件结合的有效方法。如下图，将已知的特定顺式作用元件构建到最根本启动子（minimal promoter，Pmin）上游，Pmin启动子下游连接报告基因。举行cDNA融合表达文库时，编码目的转录因子的cDNA融合表达载体被转化进入酵母细胞后，其编码产物（转录因子）与顺式作用元件结合，就可以激活Pmin启动子，并促使报告基因表达。根据报告基因的表达，筛选出与已知顺式元件结合
3、的转录因子。 基因编码产物 cDNA 融合表达载体 酵母细胞 转录因子 顺式元件 顺式元件 Pmin 表达 报告基因 cDNA文库筛选 “Matchmaker Gold Yeast One-Hybrid Library Screening System”供给了一个简朴高效的构建cDNA文库并举行酵母单杂交筛选的方法，它使用aureobasidin A抗性基因作为报告基因，筛选效率高，背景低。单杂交筛选是从酵母双杂交筛选进展而来，利用单杂交筛选可以对cDNA文库举行筛选直接获得与目的顺式作用元件相结合的蛋白质。 图2 用Matchmaker Gold One-Hybrid System筛选pro
4、tein-DNA相互作用的原理 The Matchmaker Gold One-Hybrid Library Screening process主要包括以下步骤： 1 将已知序列（bait）克隆到pAbAi载体。 2 pBait-AbAi质粒转化Y1HGold酵母菌株，使其与酵母基因组发生重组，生成bait/reporter酵母菌株。 3 检测Y1HGold bait菌株AbAir基因的本底表达水平。 4 合成cDNA并通过cDNA和pGADT7-Rec载体共转化酵母举行细胞内同源重组筛选cDNA文库。 5 筛选结果的验证和分析。 【测验打定】 1 仪器设备 微量取液器（2.5 ?L；20 ?
5、L；50 ?L；100 ?L；200 ?L；1000 ?L）、PCR仪、低温离心机、台式离心机、CHROMA SPINTM+TE-400纯化柱、琼脂糖凝胶电泳系统、凝胶成像系统、恒温摇床、恒温孵箱、通风橱、制冰机、振荡器、恒温金属浴、酒精浴、无菌接种环、10 cm培养皿、15 cm培养皿等。 2 测验材料 Y1HGold酵母株、TOP10大肠杆菌菌株、各种方法提取的RNA、pGADT7-Rec质粒和pBait-AbAi质粒等。 3 主要试剂 （1） Advantage 2 PCR试剂盒、Easy Yeast Plasmid Isolation试剂盒、Matchmaker Insert Chec
6、k PCR Mix 1、Matchmaker Insert Check PCR Mix 2。 （2） 各种根基培养基和养分缺陷培养基：minimal SD base，minimal SD agar base，YPD medium，YPD agar medium，-Leu DO supplement，-Ura DO supplement，腺苷酸（adenine），PEG8000，carring DNA，aureobasidin A，LB培养基，氨苄西林。 （3） NaCl溶液（0.9%）、sodium acetate （3 mol/L）、50% PEG、10LiAc（1 mol/L）、10TE
7、buffer、DTT（100 mmol/L）、RNaseH、限制性内切酶。 【测验方法】 1 pBait-AbAi载体的构建（酵母报道子的构建） 注：酵母报道子（pBait-AbAi）包含目的顺式作用元件的一个或多个拷贝，且插入到pAbAi载体AbAir报告基因的上游。大量研究说明最有效的构建应包含目的DNA三个以上的首尾连接的拷贝。首尾连接的拷贝产生方式好多，但对于长度小于20 bp的调控元件，人工合成寡核苷酸是最便当稳当的途径。 （1） 设计并合成包含目的序列的两条反向平行的寡核苷酸序列，且两端加上与 pAbAi载体酶切产物一致的粘性末端（建议合成一个目的序列的突变序列作为对照，以摈弃可能
8、的假阳性）。 （2） 用TE buffer溶解寡核苷酸至终浓度100 ?mol/L。 （3） 将正向链和反向链按照1:1的比例混合（退火后的双链寡核苷酸最大浓度 为50 ?mol/L）。 （4） 95 ?C保温30 s，去除二级布局。 （5） 72 ?C保温2 min，37 ?C保温2 min，25 ?C保温2min。 注：缓慢退火，有助于双链寡核苷酸的形成。 （6） 冰上放置。退火后的产物可贮存在-20 ?C冰箱备用。 （7） 酶切1 ?L pAbAi载体，用凝胶回收纯化或柱纯化的方式纯化酶切产物。 注：回收前，可用琼脂糖凝胶检测是否酶切完全。 （8） 将退火后的寡核苷酸稀释100倍至终浓度
9、为0.5 ?mol/L。 （9） 在连接回响管中参与如下成分： pAbAi载体（50 ng/?L） 1.0 ?L annealed oligonucleotide （0.5 ?mol/L） 1.0 ?L 10T4 DNA ligase buffer 1.5 ?L BSA（10 mg/mL） 0.5 ?L Nuclease-free H2O 10.5 ?L T4 DNA ligase （400 U/?L） 0.5 ?L 总体积 15 ?L 注：假设有必要，可用1 ?L nuclease-free H2O代替寡核苷酸作为阴性对照。 （10） 将回响体系室温放置连接3 h，转化E coli，采用常规
10、方法检测阳性克隆。 注：可用酶切或测序举行检测。 2 质粒转化酵母细胞，生成Bait-Reporter酵母菌株（图） 图3 Bait-Reporter酵母菌株生成原理示意图 （1） 用BstB I或者Bbs I酶切2 ?L pBait-AbAi，pMutant-AbAi，p53-AbAi质粒， 使其在URA3基因处断开，纯化酶切产物。 （2） 按Matchmaker Yeast Transformation System 2的步骤用1 ?l酶切后的质粒 转化Y1HGold酵母。 （3） 稀释每个转化体系至1/10、1/100、1/1000，分别取每个稀释物平匀涂于 SD/-Ura琼脂平板上。3
11、 d后挑取5个单克隆，用Matchmaker Insert Check PCR Mix1举行PCR检测阳性克隆，用Y1HGold的单克隆做阴性对照。 （4） 在PCR管中加25 ?l PCR-grade H2O。 （5） 用明净的枪头轻轻接触酵母单克隆，以获得分外少量的酵母细胞。将枪头 伸进PCR-grade H2O中搅拌，使酵母细胞散开。 注：切忌挑取整个酵母单克隆，由于细胞过多会阻拦PCR回响的举行。假设参与细胞后水变浑浊，证明参与了过多的酵母细胞。 （6） 向每个管中参与25 ?l Matchmaker Insert Check PCR Mix，混匀，离心。每 个PCR管中现已含有如下回响物： Matchmaker Insert Check PCR Mix 25 ?l H2O/yeast 25 ?l 总体积 50 ?l （7） 按下述程序举行PCR回响； 95 ?C 1 min 98 ?C 10 s 55 ?C 30 s 30 cycles 68 ?C 2 min （8） 取5 ?l PCR产物，用1%的琼脂糖凝胶电泳分析。 注：引物与AbA基因以及URA3下游的Y1HGold基因组结合，扩增片段长约1.4 kb。 图4 PCR检测pBait-AbAi的插入处境 7
