酵母核糖核酸的提取及测定

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1、本文格式为Word版,下载可任意编辑酵母核糖核酸的提取及测定 酵母RNA的提取及测定 姓名:张弛 学号:202200140157 班级:生院2022级生物基地 时间:2022年3月18日 测验目的 1、掌管稀碱法提取酵母RNA 2、了解测量核酸浓度不同方法的原理 3、掌管紫外吸收法测核酸浓度的原理和技术 测验原理 酵母核酸中RNA含量较多,DNA那么少于2%。RNA可溶于碱性溶液,当碱被中和后,可加乙醇使其沉淀,由此即可得到粗RNA制品。 核酸具有吸收紫外线的性质,在波长260nm处有最大吸收,且在确定浓度范围内吸收值与浓度成正比(5-45g/mL),符合朗伯-比尔定律。优点:样品用量少,不用

2、显色,测完后样品可以持续使用。 试剂与仪器 材料:干酵母粉、0.2%氢氧化钠溶液、pH试纸(pH1-14)、标准核酸:200g/mL 仪器:紫外分光光度计、细致电子天平、烧杯、量筒、离心机、移液枪、试管 测验步骤 1.提取: 称取4g酵母,研钵中研磨成粉末,倒入200mL三角瓶中,然后参与40ml 0.2%NaOH溶液,混匀,沸水浴30分钟。 2.分开: 4000转/分,15min,留存上清液。 3.沉淀RNA: 在上清液中参与40mL酸性乙醇,边加边搅拌,静置5min左右,再4000转/分开心,5min,留存沉淀。 4.洗涤纯化: 用20mL95%乙醇分两次洗涤沉淀,每次洗后3000转/分开

3、心5min;再用20mL无水乙醇洗涤两次,每次洗后3000转/分开心5min;收集沉淀 5.含量测定(紫外分光光度法):切实称取0.2-0.25g样品核酸,加2mL0.2%氢氧化钠溶液和1mL水浸泡,再参与50mL左右的水调成糊状,转移至100mL烧杯中,用0.2%氢氧化钠溶液调pH至7,定容至100mL。 测定步骤: 取11支试管,编号,按下表参与试剂: 编号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 1 / 3 标准0.2 0.4 0.6 0.8 1.0 1.2 1.4 1.6 0 0 0 RNA/mL 水/mL 7.8 7.6 0 7.4 0 7.2 0 7.0 0 6.8 0 6

4、.6 0 6.4 0 4.0 4.0 4.0 4.0 4.0 4.0 待测液 0 摇匀,测定吸光值 测验结果 编号 1 吸光0.00值 1 2 4 3 3 4 5 5 9 6 9 7 4 8 5 9 8 10 8 11 0.274 0.140.240.300.410.510.600.710.270.26 样品RNA平均吸光值=0.273 由图可知样品RNA浓度(所测)=18.7g/mL 稀释前RNA浓度=18.7250=1870g/mL 100mL溶液中RNA=0.187g RNA含量=0.187/0.2411=77.6% 留神事项 1、沸水浴时,电炉下务必垫上大理石板,以防止桌面被烫坏。 2

5、、其次次洗涤时,按理应当用无水乙醚来洗,但是乙醚极易挥发,过多吸入会产生危害,所以从安好考虑改用无水乙醇。 3、离心时液体务必对称放置,相对的两个离心管所盛物体务必质量相等,用天平校准。 4、测RNA含量时,溶解样品先参与一片面NaOH调成糊状,再加溶液定容。 5、测吸光度时,以5g/mL的试管为参照。 6、计算时留神稀释度。 2 / 3 斟酌议论 1、RNA的吸光值与溶液的pH有关系,标准曲线是在确定pH下测出的,所以RNA溶解后要将pH调至7.0。 2、测验中会有屡屡转移、离心、沉淀、洗涤,期间不成制止地有样品损失,断定会造成RNA提取量降低。 3、核酸在260nm处有紫外吸光最大值,在R

6、NA浓度为5-45g/mL时,吸光值于浓度成正比,所以在溶解RNA后需要计算并稀释样品,使之浓度落在成正比的范围内,否那么会使测量结果不切实。 4、在测定RNA样液时,要制止假重复,不是取其次次定容后的样品连续测量三次,而是取第一次定容后的样液取三次,分别再定容,分别测定,这样可以消释定容、移液时的误差,假设分别测定的结果相差较大,可以再取第一次定容后的溶液持续定容。 5、在测量吸光度时要选择好比较,用于校正。可以选用蒸馏水或是5g/mL的标准RNA溶液来做对照。但考虑到吸光值与浓度成正比的范围是5-45g/mL,而蒸馏水RNA的浓度不在这个范围内,所以最好选择5g/mL的标准RNA溶液来最对照。 3 / 3 4

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